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        鹽藻固體培養(yǎng)基分離純化方法的建立

        2019-05-21 05:59:06王新磊李炳乾張云澤鄭秀潔艾日肯江庫爾班江辛乃宏
        鹽科學(xué)與化工 2019年5期
        關(guān)鍵詞:分離法微藻瓊脂

        王新磊,李炳乾,張云澤,鄭秀潔,艾日肯江·庫爾班江,辛乃宏

        (1.新疆湖鹽工程技術(shù)研究中心,新疆精河 833300;2.中鹽工程技術(shù)研究院有限公司,天津 300450)

        鹽藻是鹽生杜氏藻的簡稱,是一種真核藻類,可在飽和氯化鈉的極端高鹽環(huán)境下(NaCl濃度高于30%) 生長[1],在一定條件下,鹽藻體內(nèi)β-胡蘿卜素[2~3]可高達8%~10%(干重)[4],并富含30%左右甘油和30%~40%蛋白質(zhì)以及脂肪酸、葉綠素和四烯油等,β-胡蘿卜素營養(yǎng)價值極高,國內(nèi)外已廣泛用于醫(yī)藥、食品中[5-7]。鹽藻體內(nèi)營養(yǎng)物質(zhì)的積累不僅與培養(yǎng)條件有關(guān),而且與鹽藻的品系也有很大的關(guān)系。鹽藻在養(yǎng)殖一段時間后容易老化也容易感染其他生物,因此,需要定期進行鹽藻的分離純化才能滿足生產(chǎn)上的需要。目前,鹽藻的分離純化主要采用稀釋分離法、微細管分離法[8-11]。稀釋分離法操作比較簡單,但工作量大,成功率低。微細管分離法雖然成功率高,但因鹽藻有鞭毛一直處于游動狀態(tài),需要相對專業(yè)的人員操作才能完成。文章發(fā)明了一種采用固體培養(yǎng)基純化分離鹽藻的方法,在實際生產(chǎn)應(yīng)用中獲得了比較好的效果。

        1 材料與方法

        1.1 鹽藻來源

        待分離的鹽藻采自新疆精河縣精河鹽化有限責(zé)任公司鹽田儲鹵池。

        1.2 鹽藻密度

        以血細胞技術(shù)板在顯微鏡下計數(shù)。

        1.3 鹽藻培養(yǎng)

        篩選的鹽藻在采用Modified Johnsons Medium (J/l)[12]培養(yǎng)基,用1 000 mL三角瓶置于光照培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。

        1.4 試驗方法:

        將一定量的瓊脂(REGULAR AGAROSE G-10)放入不同鹽度的鹽藻培養(yǎng)基中,經(jīng)過高溫滅菌后冷卻至50 ℃~70 ℃,置于恒溫水浴鍋中保持一定溫度,然后加入一定量的待分離鹽藻藻液,混勻。無菌條件下將含有鹽藻藻液的瓊脂倒入已滅菌過的培養(yǎng)皿中,冷卻后用封口膜密封。倒置于光照培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。鹽藻由單個細胞生長成細胞團后,用鑷子或接種環(huán)挑取鏡檢,選擇純種的鹽藻培養(yǎng)。

        實驗分別從接種溫度、瓊脂濃度、培養(yǎng)基鹽度、接種鹽藻密度四個方面著手研究(表1)。

        表1 試驗項目及條件數(shù)據(jù)的選擇Tab.1 Selection of test items and conditional data

        2 結(jié)果與分析

        2.1 接種溫度的選擇

        鹽藻的溫度耐受范圍比較廣,最適生長溫度在25 ℃~32 ℃。試驗對接種溫度的選擇主要是考慮到瓊脂的凝固與溫度有關(guān)。試驗選用了35 ℃、40 ℃、45 ℃、50 ℃這四個溫度進行接種培養(yǎng),接種后觀察鹽藻的情況(圖1)。

        從圖1可見,鹽藻接種培養(yǎng)溫度在40 ℃以下時,細胞密度快速增長;接種培養(yǎng)溫度在45 ℃時,鹽藻密度變化不大,鹽藻活力降低;鹽藻接種培養(yǎng)溫度在50 ℃時,鹽藻細胞先停止運動后逐漸破裂死亡。因此,在選擇接種溫度時應(yīng)控制在45 ℃以下。

        圖1 鹽藻在不同接種培養(yǎng)溫度下的生長情況Fig.1 Growth of dunaliella salina under different inoculation and culture temperatures

        2.2 瓊脂濃度的選擇

        瓊脂濃度與溫度具有一定的對用關(guān)系,在一定的溫度下,瓊脂濃度越大,越容易凝固;在一定的瓊脂濃度下,溫度越低,越容易凝固。試驗根據(jù)鹽藻的接種溫度試驗選擇了35 ℃、40 ℃和45 ℃三個溫度用于確定對應(yīng)的瓊脂的凝固濃度(表2)。

        表2 不同濃度的瓊脂在不同溫度下的狀態(tài)Tab.2 The state of agars with different concentrations at different temperatures

        從表2可見在35 ℃時,試驗用瓊脂濃度均有不同程度的凝固;40 ℃時瓊脂濃度從1.0%開始出現(xiàn)凝固現(xiàn)象;45 ℃時瓊脂濃度從1.2%開始出現(xiàn)凝固現(xiàn)象。

        從上面兩組試驗的結(jié)果可以分析得出,適合用于鹽藻接種的溫度為40 ℃~45 ℃,瓊脂濃度為0.6%~1.0%。

        2.3 培養(yǎng)基鹽度的選擇

        鹽藻可在2%~39%鹽度的鹽水中存活,富集β-胡蘿卜素時鹽度應(yīng)在15%以上。單個鹽藻細胞在培養(yǎng)基內(nèi)生長20 d~30 d才能形成容易觀察的細胞團,該試驗的目的是為了找到既能保持鹽藻生長的鹽度環(huán)境,又不形成結(jié)晶的鹽度。試驗選取了五個培養(yǎng)基的鹽度進行試驗,分別是4%、6%、8%、10%和12%,結(jié)果見表3。

        表3 不同培養(yǎng)基鹽度在30 ℃條件下培養(yǎng)30 d的情況Tab.3 The condition of 30 days in cubation at 30 ℃ with different medium salinity

        從表3可見,培養(yǎng)基在30 ℃培養(yǎng)30 d的情況下,鹽度大于10%時,培養(yǎng)基表面形成鹽結(jié)晶,鹽度低于8%時不容易形成結(jié)晶。

        2.4 接種鹽藻密度的選擇

        根據(jù)密度計算及實際操作經(jīng)驗,選取了1×102個/L,1×103個/L,1×104個/L和1×105個/L四個梯度進行接種培養(yǎng)試驗,結(jié)果見表4。

        從表4可見,接種密度在1×102個/L時,固體培養(yǎng)基內(nèi)生長的細胞團較少;接種密度在1×105個/L時,細胞團密度大,相互之間有所接觸,挑選單個細胞團的難度非常大。

        表4接種不同密度的鹽藻的培養(yǎng)效果
        Tab.4 Culture effect of salina inoculated with different densities

        因此,鹽藻在培養(yǎng)基內(nèi)接種的密度不能過低,過低時可供篩選的細胞團數(shù)量少,容易失去目標(biāo)細胞;密度濃度過高,細胞團密度大,容易造成相鄰的細胞團之間接觸,失去了篩選的意義,因此,建議的接種密度在1×103個/L~1×104個/L為佳。

        2.5 新方法培養(yǎng)試驗

        新方法培養(yǎng)鹽藻的試驗是根據(jù)上面試驗中得到的接種溫度、瓊脂濃度、培養(yǎng)基鹽度、接種鹽藻密度的結(jié)果或分析,對其選取端值進行具體試驗,驗證試驗效果(見表5)。

        表5接種不同密度的鹽藻的培養(yǎng)效果
        Tab.5 Experiments on new method of solid culture medium for cultivating dunaliella salina

        從表5可見,在所選取的各條件下培養(yǎng)鹽藻,鹽藻細胞均能形成細胞團(細節(jié)見圖2、圖3)。接種密度為1×104個/L時的細胞團密度明顯高于接種密度為1×103個/L所形成的細胞團。

        3 討論

        3.1 目前常用的微藻分離方法在鹽藻分離純化應(yīng)用中的情況

        目前,常用的微藻分離方法有稀釋分離法、微吸管分離法、傳統(tǒng)固體培養(yǎng)基分離法,下面將分別討論其在鹽藻方面的應(yīng)用情況。

        稀釋分離法,即用滅菌后的培養(yǎng)液把待分離的藻液不斷梯度稀釋,稀釋到每一滴液體中只有一個微藻細胞為止。直接將稀釋后的藻液吸取一滴接入預(yù)先準(zhǔn)備好的裝有無菌的培養(yǎng)液中進行培養(yǎng),培養(yǎng)一段時間后鏡檢,若為單種則分離純化成功,若非單種則需要繼續(xù)純化直到分離出藻液為單種為止[8~9]。該方法操作簡單,但目的性較差,不一定能分離到所需的單種,需要進行大量重復(fù)操作培養(yǎng),目標(biāo)成功率極低。

        微吸管分離法是將玻璃滴管在酒精噴燈上加熱(或玻璃毛細管在酒精燈上加熱),用鑷子拉成的極細的微管。在顯微鏡下把目標(biāo)微藻吸入微吸管,然后接入到預(yù)先準(zhǔn)備好的裝有無菌的培養(yǎng)液中進行培養(yǎng)[9]。微吸管分離法是獲得單細胞藻類最常用并且是成功率最高的方法,也是當(dāng)前鹽藻分離純化中最常用的方法。但微吸管法對試驗儀器和操作人員的要求比較高,且鹽藻細胞有鞭毛可以游動,增加了操作的難度。

        傳統(tǒng)固體培養(yǎng)基分離法是在微藻培養(yǎng)基中加入1%~2%的瓊脂進行高壓蒸汽滅菌,滅菌后待培養(yǎng)液倒入無菌培養(yǎng)皿中制成固體培養(yǎng)基備用,然后將微藻以劃線、噴霧和涂布的方法接種到培養(yǎng)基表面。該方法是目前淡水藻、海洋微藻和細菌篩選最常用的方法。但該方法不適合鹽藻的篩選,主要是因為鹽藻培養(yǎng)液鹽度高,三種方法均是將鹽藻細胞置于瓊脂培養(yǎng)基表層,這會導(dǎo)致鹽藻在生長為細胞團前有鹽析出甚至干掉而導(dǎo)致失敗。

        3.2 固體培養(yǎng)基新方法在鹽藻分離純化應(yīng)用中的優(yōu)勢

        固體培養(yǎng)基新方法是在傳統(tǒng)固體培養(yǎng)基方法的基礎(chǔ)上針對鹽藻設(shè)計的一種分離純化方法,目前經(jīng)過試驗驗證其效果非常好。 固體培養(yǎng)基新方法是讓鹽藻在瓊脂內(nèi)部生長,既可以把鹽藻固定又不影響鹽藻生長繁殖,非常容易形成單細胞群落,該方法不僅可用于鹽藻的分離純化,還可用于其他微藻的分離純化使用。

        該方法可使單個的鹽藻細胞在瓊脂內(nèi)的立體空間中固定,在鹽藻細胞尚未分裂繁殖時加以處理或者引導(dǎo)(物理或化學(xué)刺激),可以使細胞發(fā)生定向性變異,然后根據(jù)變異的特征從細胞團中選取誘變成功的鹽藻細胞,進而挑選培養(yǎng)。

        微藻藻種保存時需要根據(jù)其繁殖生長情況定期進行更換培養(yǎng)基,硅藻通常在15 d左右更換一次培養(yǎng)基,綠藻通常在25 d左右更換一次培養(yǎng)基,鹽藻根據(jù)培養(yǎng)條件通常在40 d~50 d更換一次培養(yǎng)基。該方法培養(yǎng)微藻因接種密度低,瓊脂保水效果好,即可以延長保種時間并且每次接種都能對微藻進行純化。因此,該方法用于微藻藻種的保存,效果非常好。

        4 結(jié)論

        固體培養(yǎng)基分離純化鹽藻的新方法中,建議接種溫度為40 ℃~45 ℃;瓊脂濃度為0.6%~1.0%;培養(yǎng)基鹽度為6~8%;接種鹽藻細胞濃度為1×103個/L~1×104個/L。該方法操作簡單,不需要專業(yè)人員操作即可完成,可復(fù)制性強,分離純化效果非常好,特別適合類似于鹽藻等可游動的微藻進行分離純化。

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