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        環(huán)境中自由及結(jié)合態(tài)雌激素的酶降解轉(zhuǎn)化研究進(jìn)展

        2019-05-09 06:57:36余薇薇杜邦昊張敏訥萬巧玲楊碩趙晨菊
        生物技術(shù)通報(bào) 2019年4期
        關(guān)鍵詞:還原酶失活去除率

        余薇薇 杜邦昊 張敏訥 萬巧玲 楊碩 趙晨菊

        (1. 重慶交通大學(xué)河海學(xué)院 水利水運(yùn)工程教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,重慶 400074;2. 國家城市供水水質(zhì)監(jiān)測(cè)網(wǎng)重慶監(jiān)測(cè)站,重慶 400060)

        近年來,內(nèi)分泌干擾物(Endocrine disrupting chemicals,EDCs)環(huán)境問題引起全球范圍的密切關(guān)注和重視,是國際環(huán)境科學(xué)領(lǐng)域研究的前沿和熱點(diǎn)課題之一,美國、歐盟、日本、世界衛(wèi)生組織(WHO)、聯(lián)合國環(huán)境規(guī)劃署(UNEP)、經(jīng)濟(jì)合作與發(fā)展組織(OCED)等國家和組織已制定管理法規(guī)和管控措施,中國也在《水污染防治行動(dòng)計(jì)劃》(國發(fā)[2015]17號(hào))中提出嚴(yán)格控制環(huán)境激素類化學(xué)品污染并評(píng)估風(fēng)險(xiǎn),實(shí)施管控措施[1-3]。類固醇雌激素(Steroid estrogens,SEs)可分為天然和人工合成兩大類,是雌情活性最強(qiáng)、最受關(guān)注的一類EDCs,在環(huán)境中被廣泛檢測(cè)出,主要來源于城市污水處理廠和集約化畜禽養(yǎng)殖場[4-7]。環(huán)境中極其微量的SEs便可強(qiáng)烈干擾人類和動(dòng)物的內(nèi)分泌系統(tǒng),導(dǎo)致發(fā)育、生殖、神經(jīng)、免疫等問題[1],長期暴露于高濃度SEs環(huán)境中還會(huì)導(dǎo)致魚類雌性化、雌雄同體、植物生長損傷、微生物功能及群落多樣性變化等問題[8-9],而且不同SEs間存在著復(fù)合毒性協(xié)同效應(yīng),造成的危害更大[10]。酶具有催化效率高、活化能低、反應(yīng)條件溫和、環(huán)境友好等特點(diǎn),被譽(yù)為“綠色催化劑”,在SEs的去除中起到重要作用并廣受關(guān)注[11-17]。本文總結(jié)了環(huán)境中酶對(duì)自由及結(jié)合態(tài)SEs的去除作用及其反應(yīng)機(jī)理,闡明不同形態(tài)SEs的主要酶降解、轉(zhuǎn)化路徑,并對(duì)酶在環(huán)境中SEs去除的應(yīng)用進(jìn)行了展望,以期對(duì)環(huán)境中兩種形態(tài)雌激素的酶降解轉(zhuǎn)化的研究提供理論借鑒。

        1 環(huán)境中降解轉(zhuǎn)化SEs酶的基本性質(zhì)

        環(huán)境中天然SEs可分為自由態(tài)(Free estrogens,F(xiàn)Es) 和 結(jié) 合 態(tài)(Conjugated estrogen,CEs), 其結(jié)構(gòu)示意如圖1所示。天然SEs降解、轉(zhuǎn)化過程常用的酶主要分為兩大類:(1)氧化還原酶類(Oxidoreductases),通過催化氧化FEs形成聚合產(chǎn)物,如過氧化物酶(Peroxidases,PODs,EC 1.11.1.X)和漆酶(Laccase,Lac,EC 1.10.3.2)[18-21];(2)水解酶類(Hydrolases),通過解離結(jié)合基團(tuán)將CEs水解為相對(duì)應(yīng)的FEs,如芳基硫酸酯酶(Arylsulfatase,ArySTS,EC 3.1.6.1)和β-葡糖苷酸酶(β-glucuronidase,GUSB,EC 3.2.1.31)[22-25]。典型 SEs降解、轉(zhuǎn)化酶的物理化學(xué)性質(zhì)及三維結(jié)構(gòu),見表1和圖2。除以上幾種酶外,還有一些細(xì)菌產(chǎn)生的酶對(duì)SEs具有降解、轉(zhuǎn)化作用,如亞硝化單胞菌屬(Nitrosomonassp.)可產(chǎn)生單加氧酶(Monooxygenase)、諾卡氏菌屬(Nocardiasp.)及不動(dòng)桿菌屬(Acinetobactersp.)可產(chǎn)生雙加氧酶(Dioxygenase)、紅球菌屬(Rhodococcussp.)及鞘氨醇單胞菌屬(Sphingomonassp.)可產(chǎn)生單加氧酶、雙加氧酶、羥基類固醇脫氫酶(Hydroxysteroid dehydrogenase,HSD)等[26-27]。

        圖1 天然SEs結(jié)構(gòu)示意圖

        2 氧化還原酶對(duì)FEs的降解轉(zhuǎn)化作用

        FEs主要包括雌酮(Estrone,E1)、17α-雌二醇(17α-Estradiol,17α-E2)、17β-雌二醇(17β-Estradiol,17β-E2)、雌三醇(Estriol,E3)。氧化還原酶去除FEs的主要作用機(jī)制為氧化耦合反應(yīng),催化FEs A環(huán)酚羥基形成高氧化潛能、高活性的C2、C4位自由基與C3位苯氧自由基等自由基中間體(圖3),通過C-O-C、C-C共價(jià)鍵自耦合、相互耦合形成二聚體,同時(shí)受到溶劑類型、pH、A環(huán)取代位置等影響[14,18,21,31-32]。FEs A 環(huán) C3 位氧原子的電荷密度較高而自旋密度較低,因此與C-O-C鍵相比,在動(dòng)力學(xué)上更有利于形成C-C鍵聚合產(chǎn)物[33]。二聚體可繼續(xù)形成自由基,作為酶的底物繼續(xù)氧化耦合生成三聚體、低聚體,甚至高聚體,但聚合物的溶解度隨相對(duì)分子質(zhì)量增加急劇降低,難以進(jìn)一步耦合形成高分子量的聚合物[32,34]。氧化還原酶催化FEs生成的聚合產(chǎn)物溶解度較低,在污水處理過程中易于通過吸附、過濾、沉淀等作用被去除。氧化還原酶的催化能力通常與氧化還原電位(表1)和糖基化程度相關(guān),高氧化還原電位有利于酶對(duì)SEs的催化氧化,在一定范圍內(nèi),酶的穩(wěn)定性隨糖基化程度的增加而提高,其中LiP的糖基化程度較高,為20%-30%,高于HRP(18%-22%)、Lac(10%-20%)和MnP(5%-15%)[35-36]。PODs和 Lac催化機(jī)理的主要區(qū)別在于電子受體,通常PODs以H2O2作為電子受體催化其活性,同時(shí)還需要輔酶因子的參與,而Lac以空氣或水中的氧分子作為電子受體,不需額外添加氧化劑[17,34,37-39]。FEs在 Lac 催化體系中的去除速率低于PODs,但PODs不穩(wěn)定,在復(fù)雜基質(zhì)及過量H2O2條件下易于失活,而Lac的穩(wěn)定性更強(qiáng)[34]。另外,與A環(huán)C3位相結(jié)合的CEs(如E1-3S、17β-E2-3S、E1-3G、17β-E2-3G)受到硫酸鹽或葡糖苷酸鹽基團(tuán)的保護(hù),不易被氧化還原酶催化氧化形成自由基[22]。不同基質(zhì)中氧化還原酶對(duì)FEs的去除效率如表2所示。

        表1 典型SEs降解、轉(zhuǎn)化酶的主要物理化學(xué)性質(zhì)[28]

        圖2 典型SEs降解、轉(zhuǎn)化酶三維結(jié)構(gòu)示意圖[30]

        2.1 過氧化物酶的降解作用

        PODs在自然界中分布廣泛,可由動(dòng)植物、真菌、細(xì)菌產(chǎn)生,根據(jù)是否含血紅素分為血紅素(Heme-peroxidases)及非血紅素過氧化物酶(Nonheme peroxidases)[51-52]。在 FEs的 催 化氧化中應(yīng)用較多的PODs主要為血紅素過氧化物酶,包括兩大類:(1)真菌分泌的胞外木質(zhì)素降解酶(Lignin modifying enzymes,LMEs),如 LiP、MnP、VP。(2)植物產(chǎn)生的HRP[51]。PODs的催化機(jī)理為:血紅素蛋白被H2O2或小分子過氧化物氧化為化合物I(卟啉π陽離子自由基氧鐵基團(tuán),F(xiàn)eIV=O·+),隨后化合物I從底物得到一個(gè)電子還原為化合物Ⅱ(氧鐵基團(tuán),F(xiàn)eIV=O),再氧化底物得到一個(gè)電子將酶還原為基態(tài)FeIII,其中最后一步為限速步驟[13,53],F(xiàn)Es被催化氧化生成自由基后通過耦合反應(yīng)生成聚合產(chǎn)物。

        表2 氧化還原酶對(duì)不同基質(zhì)中FEs的去除

        2.1.1 木質(zhì)素降解酶 LiP在酸性條件下催化去除FEs效果較好,Wang等[41]實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,在pH3,0.2 mol/L H2O2條件下,120 U/L LiP對(duì)2.7 mg/L E1和17β-E2的去除率為60%-90%。Mao等[19]實(shí)驗(yàn)表明在 pH4.6,0.05 mmol/L H2O2條件下,2.5 mg/L 17β-E2可被20 U/L LiP完全去除,主要產(chǎn)物為17β-E2低聚物,少量轉(zhuǎn)化為中間產(chǎn)物E1。藜蘆醇作為白腐真菌(White-rot fungi,WRF)的次生代謝產(chǎn)物以及與LiP共生的活性底物,具有較強(qiáng)的氧化能力,在LiP催化FEs過程中可被氧化成陽離子自由基,保護(hù)LiP避免失活并增強(qiáng)其活性,且對(duì)失活的LiP有一定的恢復(fù)作用[19,32,40]。無藜蘆醇時(shí),初始濃度為5 mg/L的17β-E2反應(yīng)60 min后去除率僅為40%,而添加藜蘆醇能夠提高LiP對(duì)FEs的催化去除效率,反應(yīng) 20 min 便能將 5 mg/L 17β-E2 完全去除[19]。

        MnP是一類以多種形式存在的糖基化血紅素過氧化物酶,其結(jié)合位點(diǎn)的結(jié)構(gòu)與其他PODs有所不同,通過將Mn2+氧化為Mn3+完成催化氧化[54]。Tamagawa等[44]試驗(yàn)結(jié)果表明,經(jīng)600 U/L MnP處理1 h后,0.01 mmol/L E1被完全去除,2 h后雌激素活性得以完全去除。

        VP是一種混合酶,結(jié)合了LiP和MnP兩種酶的底物特異性,在H2O2、Mn2+以及底物的共同作用下,將Mn2+氧化為Mn3+,催化氧化FEs形成聚合產(chǎn)物[21]。Eibes等[42]考察了 VP 對(duì) E1 和 17β-E2 的去除,結(jié)果表明在低酶活性(10 U/L)條件下,反應(yīng)25 min內(nèi)兩種化合物能夠被完全去除。Taboada-Puig等[21,43]實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,在最優(yōu)條件下,VP可去除污水中高濃度(1.3-8.8 mg/L)及環(huán)境濃度(1.2-6.1 μg/L)的E1和17β-E2,并形成二聚體、三聚體和羥基雌酮(Hydroxyestrone,OH-E1)等產(chǎn)物。

        2.1.2 辣根過氧化物酶 HRP是一種含鐵卟啉輔基的PODs,含有兩個(gè)不同的金屬中心:血紅素和兩個(gè)鈣原子,主要由植物分泌,在辣根(Horseradish)中含量最高,并因此而得名[35,55]。Auriol等[18,56]研究發(fā)現(xiàn)在pH為7,溫度為25℃條件下,被H2O2激活后,32 U/L HRP在1 h內(nèi)可去除人工污水中97%的100 ng/L E1、17β-E2或E3,反應(yīng)5 h后去除率為99%;但在實(shí)際污水中,去除相同濃度的FEs需添加8 000-10 000 U/L HRP,說明復(fù)雜污水基質(zhì)成分使得HRP氧化能力受到抑制,從而顯著影響了FEs的氧化去除。

        值得注意的是,H2O2作為PODs的電子受體,同時(shí)又是這幾種酶的抑制劑,過量H2O2會(huì)使反應(yīng)過程中過渡態(tài)化合物形成無反應(yīng)活性的化合物III(鐵超氧化物,F(xiàn)eIII=O2·-),稱之為“自殺性失活”(Suicide inactivation)[13,57]。而作為一種混合酶,VP 的“自殺性失活”更加復(fù)雜,由于其存在3個(gè)氧化位點(diǎn)及多個(gè)催化產(chǎn)物,對(duì)H2O2濃度最敏感[57]。有研究表明,添加穩(wěn)定劑可保護(hù)酶活性避免失活,如聚乙二醇(Polyethylene glycol,PEG)、聚乙烯醇(Polyvinyl alcohol,PVA)、聚乙烯(Polythene,PE)、明膠(Gelatin)、多糖(Polysaccharide)等[13,36]。

        2.2 漆酶的催化氧化作用

        Lac是一類多酚氧化酶,自然界中Lac可由高等植物、昆蟲、細(xì)菌、真菌產(chǎn)生,其中真菌漆酶(Fungal Laccase)的底物特異性低,氧化能力強(qiáng),應(yīng)用最為廣泛[14,37,51-52]。Lac 催化活性中心通常含有 4 個(gè)銅離子,三環(huán)的銅簇位點(diǎn)以空氣或水中的氧分子作為電子受體,形成自由基后,T1銅中心參與FEs單電子氧化,將O2還原為水,生成C-O-C、C-C聚合產(chǎn)物[11,55,58]。FEs在 A 環(huán) C3 位含有酚羥基,能夠被Lac催化產(chǎn)生苯氧自由基,通過氧化耦合反應(yīng)形成二聚體、三聚體,有研究表明Lac還可將17β-E2氧化為 E1[20,39,50,59],而與之相反,Singh 等[48]在反應(yīng)產(chǎn)物中未檢測(cè)出E1和E3。

        Lloret等[39]研究發(fā)現(xiàn),在水相反應(yīng)體系中,pH4時(shí)Lac的酶活性最高,但穩(wěn)定性較低,而其酶活性在pH7時(shí)較低,但穩(wěn)定性高,同時(shí)可觀察到反應(yīng)初期Lac在pH4時(shí)有顯著失活,而在pH7條件下,6 h內(nèi)酶活性較穩(wěn)定。Singh等[55]實(shí)驗(yàn)研究表明,在2 500 U/L Lac條件下,在水相體系中反應(yīng)5 h后0.2 mg/L 17β-E2去除率為93%,而在土壤中去除率為87.1%。土壤含水率對(duì)Lac處理效果也有影響,經(jīng)24 h 10 U/g Lac處理后,非飽和土壤中0.2 mg/g 17β-E2去除率僅為32.1%,而在飽和土壤中去除率達(dá)到62.6%,這可能由于Lac酶分子在水相中有利于與17β-E2接觸,從而去除效果增強(qiáng)[48]。在pH為7,溫度為25℃條件下,20 000 U/L Lac在1 h內(nèi)可完全去除人工及實(shí)際污水中100 ng/L E1、17β-E2或E3,實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明其催化FEs耦合反應(yīng)受污水基質(zhì)成分的影響較?。?6]。有研究表明在相同濃度下,Lac催化氧化E1的反應(yīng)速率僅為17β-E2的60%,其區(qū)別在于二者在C17位與Lac的親和性[22]。Lac的穩(wěn)定性在水相和土壤體系中有較大差異,雖然在水相(0.46 h-1)中其失活速率比在土壤(0.003 1 h-1)中快很多,但水相中Lac對(duì)17β-E2的去除速率比在土壤中高100多倍[48],Lac在土壤中的活性持續(xù)時(shí)間較長、穩(wěn)定性強(qiáng)的特點(diǎn)彌補(bǔ)了其反應(yīng)速率慢的缺點(diǎn)。

        漆酶介導(dǎo)反應(yīng)體系(Laccase mediator system,LMS)指Lac在介體和氧分子存在時(shí)進(jìn)行催化氧化的反應(yīng)體系,介體的氧化還原電位較高,可分為天然及人工合成介體,如紫脲酸(Violuric acid,VA)、丁香醛(Syringaldehyde,SA)、1-羥基苯并三氮唑(1-hydroxy-benzotriazole,HBT)、2,2-聯(lián)氮 -二(3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸)二銨鹽(2,2-azinobis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfnoic acid),ABTS)等[45-46,60-62]。介體在酶和目標(biāo)化合物間起到“電子穿梭”的作用,作用機(jī)制主要包括氫自由基轉(zhuǎn)移、電子轉(zhuǎn)移以及離子氧化,添加介體可提高FEs的氧化程度,從而增強(qiáng) Lac 催化去除 FEs反應(yīng)[17,61,63]。Auriol等[46]實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,當(dāng)Lac酶活性低于20 000 U/L時(shí)添加HBT可提高17β-E2的去除效率,而當(dāng)酶活性高于20 000 U/L時(shí),兩種條件下17β-E2的去除率沒有明顯差異。Sei等[64]實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,在無介體條件下,300 U/L Lac反應(yīng)6-12 h后可完全去除20 mg/L 17β-E2和E3,24 h后E1的去除率為90%,添加介體ABTS或HBT后E1僅在3 h內(nèi)可被Lac完全去除。Lloret等[62]實(shí)驗(yàn)表明,不添加介體條件下,經(jīng)Lac處理24 h后17β-E2得以完全去除,而E1不易去除,在Lac-VA、Lac-HBT和Lac-SA體系中E1的去除率分別為100%、88%和74%。在以后的研究中,應(yīng)探索成本低、性質(zhì)穩(wěn)定、毒性低及水溶性好的介體。

        2.3 有機(jī)質(zhì)對(duì)氧化還原酶催化FEs的影響

        土壤與水體環(huán)境中富含有機(jī)質(zhì),有研究表明高濃度有機(jī)質(zhì)可顯著降低FEs的酶催化去除速率,這是由于有機(jī)質(zhì)含有大量酚類官能團(tuán),形成自由基后可與FEs及其自由基相互耦合,形成交叉耦合化合物,從而抑制FEs自耦合產(chǎn)物的形成[33-34,65-66]。Mao等[32]試驗(yàn)證實(shí),藜蘆醇對(duì)LiP催化能力的增強(qiáng)會(huì)受到有機(jī)質(zhì)的抑制。當(dāng)有機(jī)質(zhì)和藜蘆醇同時(shí)存在時(shí),二者在LiP表面活性位點(diǎn)產(chǎn)生競爭,導(dǎo)致17β-E2的去除率有所降低,這是由于有機(jī)質(zhì)和17β-E2的交叉耦合反應(yīng)抑制了藜蘆醇對(duì)LiP去除17β-E2的增強(qiáng)作用[23,40]。Huang 等[65]研究了有機(jī)質(zhì)對(duì) HRP去除17β-E2的影響,發(fā)現(xiàn)有機(jī)質(zhì)不僅抑制17β-E2的去除,還會(huì)影響17β-E2氧化自耦合產(chǎn)物二聚體、三聚體的形成。Sun等[66]研究發(fā)現(xiàn)有機(jī)質(zhì)可與Lac表面活性位點(diǎn)競爭或與17β-E2結(jié)合,從而抑制17β-E2的酶催化氧化去除,且其抑制率隨有機(jī)質(zhì)濃度增加而升高,有機(jī)質(zhì)濃度為50 mg/L時(shí),Lac對(duì)17β-E2的去除率不足5%。夏青[55]通過試驗(yàn)研究表明,有機(jī)質(zhì)對(duì)HRP去除E1、17β-E2的抑制作用并不明顯,去除率仍高于80%,而在Lac催化體系中,有機(jī)質(zhì)對(duì)E1、17β-E2的去除有抑制作用,說明有機(jī)質(zhì)對(duì)HRP活性的影響較小。

        3 水解酶對(duì)CEs的降解轉(zhuǎn)化作用

        FEs羥基可與硫酸鹽或葡糖苷酸鹽通過酯化作用形成CEs,其中單羥基化合物E1的結(jié)合態(tài)為單一形式,多羥基化合物E2、E3則可與一個(gè)或多個(gè)結(jié)合基團(tuán)形成硫酸鹽(CSEs)、葡糖苷酸鹽(CGEs)、硫酸鹽-葡糖苷酸鹽(CS-GEs)形式的CEs。與FEs相比,CEs的水溶性、遷移性高,而吸附性較低。研究普遍認(rèn)為CEs無生物毒性,但其解離后又重新生成雌情活性高的FEs,潛在的生態(tài)風(fēng)險(xiǎn)不應(yīng)被忽視。CEs結(jié)合基團(tuán)的解離主要為ArySTS和GUSB的作用,其活性與溫度及微生物豐度密切相關(guān),酶催化條件下CEs的解離在熱力學(xué)上不可逆[16]。CGEs可被GUSB解離為相對(duì)應(yīng)的FEs,ArySTS通過水解硫酯鍵將CSEs酶解為其對(duì)應(yīng)的FEs[25,67]。研究表明,GUSB和ArySTS活性與有機(jī)質(zhì)含量、土壤黏粒顯著相關(guān)[23,68-69]。目前有關(guān)CEs酶降解、轉(zhuǎn)化的研究多集中在E1及E2的結(jié)合態(tài),而有關(guān)E3結(jié)合態(tài)形式酶解的研究相對(duì)較少。

        3.1 芳基硫酸酯酶的水解作用

        ArySTS可由微生物、動(dòng)植物分泌,在污水及活性污泥中活性和含量水平較高[70-71]。土壤中ArySTS主要以吸附態(tài)存在于腐殖質(zhì)、黏土礦物,穩(wěn)定性增加且不易失活,而很少以游離態(tài)形式存在[68],Bai等[72]研究也表明ArySTS僅在土壤吸附相中保持活性,而在水相中幾乎沒有活性。水體中ArySTS主要來自底泥微生物的分泌,也可通過徑流、合流制污水管網(wǎng)溢流等方式攜帶產(chǎn)生ArySTS的微生物進(jìn)入水體[25,70]。然而,由于環(huán)境中ArySTS活性與豐富度水平相對(duì)較低,CSEs硫酯鍵的解離作用通常較弱[73]。Liu等[74]的實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,在1 mL pH5的緩沖液,55℃條件下,添加50 μL ArySTS反應(yīng)3 h后,E1-3S和E3-3S的解離效率超過75%,而17β-E2-3S的解離效率低于60%。Bai等[72,75]實(shí)驗(yàn)表明,ArySTS對(duì)17β-E2-17S的解離作用僅為A環(huán)羥基化作用的1/10,主要產(chǎn)物為 OH-17β-E2-17S 和 diOH-17β-E2-17S。Ma和Yates[76-77]也發(fā)現(xiàn)農(nóng)田土壤、河水及沉積物中17β-E2-3S主要通過C17位羥基的氧化生成初級(jí)代謝產(chǎn)物E1-3S,而酶的解離作用次之。另外,氧化還原條件也會(huì)影響ArySTS的活性,Zheng等[78]測(cè)定了奶牛養(yǎng)殖場污水17α-E2-3S的轉(zhuǎn)化產(chǎn)物,結(jié)果表明,在有氧條件下主要通過D環(huán)C17位的羥基氧化為酮基,從而生成E1-3S,而在厭氧條件下A環(huán)C3位硫酯鍵的酶解占據(jù)主導(dǎo)代謝地位。

        值得注意的是,芳基磺基轉(zhuǎn)移酶(Arylsulfotransferase,ArySULT,EC 2.8.2.1)與ArySTS的作用則相反, 能 夠 將 FEs重 新 轉(zhuǎn) 化 為 CSEs[67]。Goeppert等[67,79]研究了土壤中17β-E2的轉(zhuǎn)化路徑,結(jié)果表明17β-E2可先降解為E1,隨后在ArySULT的作用下轉(zhuǎn)化為E1-3S。

        3.2 β-葡糖苷酸酶的水解作用

        GUSB屬糖苷類水解酶,細(xì)菌、真菌及高等動(dòng)植物均可產(chǎn)生,廣泛存在于污水、活性污泥、土壤、沉積物中[23]。在河水及沉積物中,Ma和Yates[76-77]觀察到17β-E2-3G主要通過C3位結(jié)合基團(tuán)的解離生成17β-E2,而在農(nóng)田土壤中主要為C17位羥基氧化作用生成E1-3G,這可能由于土壤中GUSB含量水平不足所致。Kumar等[80]實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,在河水中反應(yīng)5 d后,E1-3G完全解離為E1,而僅有64%的17β-E2-3G解離為17β-E2及隨后的轉(zhuǎn)化產(chǎn)物E1,這可能由于GUSB對(duì)兩種CGEs的解離存在差異。

        糞大腸菌群,例如埃希氏大腸桿菌(Escherichia coli,E. coli)可合成GUSB和ArySTS,從蝸牛(Helix pomatia,H. pomatia)中提取的GUSB-ArySTS混合酶也廣泛應(yīng)用于 CEs的酶解及檢測(cè)[71,74]。E. coli合成的ArySTS較少且活性、親和性相對(duì)較弱,H.pomatia中提取的GUSB-ArySTS混合酶中ArySTS活性也相對(duì)較低[23,81],因此與 CGEs相比,CSEs在環(huán)境中的穩(wěn)定性和持久性更強(qiáng)[80,82]。Ben 等[82]實(shí)驗(yàn)表明,10 μmol/U酶抑制劑STX 64和D-葡糖二酸-1,4-內(nèi)酯可分別有效抑制污水中ArySTS和GUSB活性,從而阻礙CEs的解離。結(jié)合基團(tuán)(硫酸鹽或葡糖苷酸鹽)及位置(A和/或D環(huán))的差異會(huì)影響CEs的酶降解、轉(zhuǎn)化過程。D’Ascenzo等[83]的實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,A環(huán)(E1-3G、17β-E2-3G、E3-3G)CGEs比D環(huán)(17β-E2-17G、E3-16G)CGEs易于解離,不過一旦反應(yīng)啟動(dòng),一天內(nèi)均可完全解離為相對(duì)應(yīng)的FEs;而對(duì)于CSEs,E1-3S、17β-E2-3S和E3-3S完全解離需6-8 d,說明污水中ArySTS活性相比于GUSB弱得多。Liu等[16]比較了5種CEs的解離速率,并劃分為低(E1-3S)、中等(E1-3G、17β-E2-3S和E3-3G)和高(E3-16G)解離速率。Gomes等[84]通過活性污泥批試驗(yàn)表明,CEs(E1-3S、E1-3G和E3-16G)在微生物分泌的酶作用下可解離為FEs,而滅菌條件下未檢測(cè)到FEs,解離優(yōu)先順序?yàn)镋1-3G>E3-16G>E1-3S,其影響因素為:結(jié)合基團(tuán)>基團(tuán)位置>SEs類型。

        水解酶通過解離硫酸鹽或葡糖苷酸鹽結(jié)合基團(tuán)將CEs水解為相對(duì)應(yīng)的FEs,氧化還原酶可催化FEs形成C2、C4位自由基及C3位苯氧自由基中間體,通過C-O-C、C-C共價(jià)鍵自耦合、交叉耦合形成二聚體、三聚體,甚至高聚體。環(huán)境中自由及結(jié)合態(tài)SEs的酶降解、轉(zhuǎn)化路徑如圖3所示。

        4 展望

        酶對(duì)環(huán)境中自由及結(jié)合態(tài)SEs的去除的應(yīng)用受到諸多因素限制,對(duì)今后酶在SEs降解轉(zhuǎn)化的規(guī)?;瘧?yīng)用、機(jī)理研究、聯(lián)合應(yīng)用、固定化酶、酶工程等方面進(jìn)行了展望。

        酶催化去除SEs的研究大多處于小試、中試試驗(yàn)階段,在污水、污染土壤修復(fù)中的應(yīng)用相對(duì)較少[31,43,47,49,52],由于理論研究與實(shí)際應(yīng)用存在差異,評(píng)估酶在實(shí)際應(yīng)用中的可行性十分重要。污水中各種干擾因素會(huì)對(duì)酶的催化氧化效果產(chǎn)生影響,如pH、溫度、鹽度、溶解氧、重金屬、抑制物質(zhì)等[36]。應(yīng)進(jìn)一步研究酶處理含SEs污水的工作機(jī)理和環(huán)境因素的影響,將理論應(yīng)用于實(shí)際工業(yè)化處理中。酶膜反應(yīng)器(Enzymatic membrane reactor,EMR)可應(yīng)用于污水中有機(jī)污染物連續(xù)處理[14,38,85],目前已有研究在小試階段應(yīng)用EMR處理FEs,去除效率可達(dá)到 80%-100%[20,43,60],常用的膜材料有醋酸纖維素(Cellulose acetate,CA)、硝酸纖維素(Nitrocellulose,NC)、聚四氟乙烯(Polytetrafluoroethylene,PTFE)、聚丙烯腈(Polyacrylonitrile,PAN)、聚醚砜(Polyethersulfone,PES)、聚酰胺(Polyamide,PA)等[85]。在規(guī)模化應(yīng)用時(shí),需要解決酶失活以及膜的持續(xù)性能問題,同時(shí),EMR在SEs特別是CEs去除方面的應(yīng)用仍需進(jìn)一步開發(fā)和研究。酶催化應(yīng)用于SEs污染土壤修復(fù)不會(huì)產(chǎn)生二次污染,然而不同土壤類型、氣候條件、微生物群落等均會(huì)對(duì)酶修復(fù)SEs污染土壤產(chǎn)生影響,實(shí)現(xiàn)場地修復(fù)仍需要長期系統(tǒng)地研究。

        在酶處理SEs過程中伴隨著中間產(chǎn)物的產(chǎn)生,且有些產(chǎn)物仍具有雌情活性,而大多數(shù)研究沒有檢測(cè)反應(yīng)后總雌情活性,以及對(duì)降解、轉(zhuǎn)化產(chǎn)物進(jìn)行鑒定。隨著高分辨質(zhì)譜(HRMS)、核磁共振(NMR)等分析檢測(cè)技術(shù)的發(fā)展[58,86],應(yīng)在反應(yīng)中間產(chǎn)物的鑒定,自由基的生成,C-O-C、C-C鍵聚合產(chǎn)物優(yōu)先順序及比例等方面展開研究,進(jìn)一步闡明SEs的酶催化反應(yīng)機(jī)理,比較不同類型的酶對(duì)SEs的去除效率,深入分析SEs的降解、轉(zhuǎn)化產(chǎn)物及路徑。

        WRF(如Trametes versicolor、Phanerochaete chrysosporium)可分泌Lac、LiP、MnP,且不同種類的菌分泌的酶類型存在差異,利用WRF分泌的胞外酶體系催化氧化FEs,可作為規(guī)模化應(yīng)用發(fā)展的方向[51,59]。通常污水、污泥、土壤中存在著多種類型的自由態(tài)和結(jié)合態(tài)SEs,是十分復(fù)雜的混合體系,而單一種類的酶很難同時(shí)去除不同形態(tài)的SEs。在GUSB-Lac聯(lián)用酶體系處理污水中不同形態(tài)SEs(E1、17β-E2、17β-E2-3G)的試驗(yàn)中,Tanaka等[22]發(fā)現(xiàn)幾種化合物均能夠得到有效去除。水解酶與氧化還原酶聯(lián)用同時(shí)處理復(fù)雜基質(zhì)中的FEs和CEs(CSEs和CGEs),或產(chǎn)生這些酶的微生物的聯(lián)合使用(如WRF和E. coli)可作為今后研究的重要課題。

        溶解態(tài)的游離酶在污水中存在易變性失活、易流失、難以回收等問題,從而導(dǎo)致處理成本過高,限制了其大規(guī)模應(yīng)用。酶固定化技術(shù)可以提高酶的穩(wěn)定性,實(shí)現(xiàn)重復(fù)利用,并在SEs的去除中得以應(yīng)用[54,87-89],主要分為物理法(如吸附)和化學(xué)法(如包埋、微膠囊、交聯(lián)、共價(jià)結(jié)合),且各有優(yōu)缺點(diǎn),載體材料及固定化技術(shù)的選擇取決于酶的類型和催化過程[54,90]。探尋經(jīng)濟(jì)、高效、生物相容且環(huán)境友好的固定化材料,降低酶活性損失并提高穩(wěn)定性是未來發(fā)展的方向。

        自然條件下微生物產(chǎn)生酶的量非常少,提高酶產(chǎn)量和催化效率,降低應(yīng)用成本等是需要解決的主要難題,可通過酶工程(如納米酶、修飾酶和超酶)、基因編輯、DNA重組等技術(shù)提高酶產(chǎn)量、穩(wěn)定性及活性、催化效率及降低酶的別構(gòu)調(diào)節(jié)[51-52,91]。

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