徐 瑩,李 春,操 軒

(湖北理工學院附屬醫(yī)院/湖北省黃石市中心醫(yī)院腎內科 435000)

糖尿病腎病(diabetes nephrosis，DN)是由糖尿病引起的腎臟損害，是糖尿病患者死亡的主要原因之一。DN的發(fā)病機制非常復雜，涉及的因素也很多，目前研究發(fā)現(xiàn)代謝紊亂、腎素-血管緊張素-醛固酮系統(tǒng)的異常激活和氧化應激等均與DN的發(fā)生、發(fā)展有一定關系。氧化應激與DN關系極為密切，高濃度的葡萄糖可引起氧化應激[1]；同時，過量的糖可與長壽命的蛋白質(如膠原)結合，形成穩(wěn)定的晚期糖基化終末產物(advanced glycationend products，AGEs)，AGEs隨之可引起氧化應激[2]。腎小球系膜細胞(renal mesangial cells，RMCs)是腎小球的固有細胞之一，可控制腎小球血流，并對腎小球毛細血管起支架和保護作用。糖尿病時，AGEs的加速形成和累積可促進腎小球系膜細胞的氧化應激損傷，隨后腎小球系膜擴張，發(fā)生腎小球硬化，逐漸演變?yōu)镈N[3-4]。

乙二醛酶Ⅰ( glyoxalase Ⅰ，GLOⅠ)是人體內主要的α羰基醛解毒酶，其主要作用為催化甲基乙二醛(MG)轉化為乳酸，從而減少AGEs生成，起到對AGEs的解毒作用。GLOⅠ與糖尿病的視網膜損傷、大血管損傷和周圍神經病變等有關[5-7]。但目前關于GLOⅠ在DN中的具體作用及分子機制的研究并不深入?；诖?，本文首先檢測了DN患者尿液中GLOⅠ水平的變化，隨后分析GLOⅠ敲減對AGEs所誘導的人腎小球系膜細胞(human renal mesangial cells，HRMCs)氧化應激的影響及可能機制。

1 材料與方法

1.1材料 人腎小球系膜細胞HRMCs購自美國Scien Cell研究實驗室，培養(yǎng)于DMEM培養(yǎng)基[含10%胎牛血清(FBS)、100 U/mL青霉素和100 μg /mL鏈霉素]；FBS購自以色列BI公司；AGEs購自英國Abcam公司；RNA提取試劑Trizol和轉染試劑脂質體Lipofectamine 2000購自美國Thermo Fisher公司；H2DCFDA試劑盒購自上海碧云天公司；P22phox和GAPDH引物購自上海生工生物工程股份有限公司；定量聚合酶鏈反應(quantitative polymerase chain reaction，Q-PCR)試劑盒購自日本Takara公司；總p38抗體、磷酸化p38(p-p38)抗體、總AKT抗體、AKT 308位蘇氨酸磷酸化(308Thr)抗體，AKT 473位絲氨酸磷酸化(473Ser)抗體、內參β-actin抗體、HPR標記的二抗均購自美國CST公司；P22phox抗體購自英國Abcam公司；GLOⅠ小干擾RNA(siRNA)序列由江蘇庫美生物設計合成；ECL化學發(fā)光試劑購自美國Pierce公司。

1.2尿液標本收集 參與研究的2型糖尿病患者選自湖北省黃石市中心醫(yī)院住院患者，在收集尿樣之前患者均已知情同意。樣本分類根據(jù)糖尿病患者的臨床特征，共分為4個研究亞組：C組(對照組)為無糖尿病的健康個體，共35例；DM組為無糖尿病腎病的2型糖尿病患者，共34例，其尿清蛋白/肌酐比值(ACR)<30 mg/g；DN low組為有微量蛋白尿(ACR 30～300 mg/g)的2型糖尿病腎病患者，共18例； DN high組為有大量蛋白尿(ACR>300 mg/g)的2型糖尿病腎病患者，共22例。

1.3尿液GLOⅠ水平檢測 GLOⅠ水平采用酶聯(lián)免疫吸附試驗(ELISA)法(德國默克)測定，檢測儀器為美國Biorad公司iMARK 680 酶標儀。

1.4脂質體轉染 接種HRMCs于24孔板或6孔板中，無雙抗培養(yǎng)基培養(yǎng)，待細胞密度達70%左右，棄去培養(yǎng)基，每孔加入無血清無雙抗培養(yǎng)基200 μL或500 μL，37 ℃孵育30 min。24孔板每孔加入5 μg siRNA、5 μL Lipofectamine 2000和90 μL無血清無雙抗培養(yǎng)基，6孔板每孔加入15 μg siRNA、15 μL Lipofectamine 2000和470 μL無血清無雙抗培養(yǎng)基，37 ℃孵育5 h后更換為完全培養(yǎng)基，經相應處理后進行后續(xù)檢測。

1.5ROS活性檢測(H2DCFDA熒光探針標記法) HRMCs接種于96孔板內，不同處理因素處理8 h后，棄去細胞上清液，加入200 μL H2DCFDA探針(濃度為10 μmol /L)，37 ℃避光環(huán)境下繼續(xù)孵育20 min，熒光顯微鏡下檢測細胞內ROS變化并成像記錄。

1.6Q-PCR Trizol法提取細胞總RNA，經逆轉錄合成cDNA。隨后以cDNA 為模板進行Q-PCR擴增反應，反應體系為10 μL：上、下游引物各0.4 μL、ddH2O 3.2 μL、SYBR Green 5.0 μL、cDNA 1.0 μL。反應條件：95 ℃ 3 min；95 ℃ 20 s，66 ℃ 10 s，3次循環(huán)；95 ℃ 10 s，55 ℃ 15 s，70 ℃ 1 s，39次循環(huán)，延伸末尾采集熒光；65～95 ℃熔解曲線分析，計算目的基因表達水平。

1.7Western blot HRMCs經不同處理因素處理48 h后，蛋白裂解液裂解細胞，提取總蛋白，經10%十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)分離后，電轉移至聚二偏氟乙烯(PVDF)膜上，在含5%牛血清清蛋白(BSA)的TBST中封閉1 h，加入一抗4 ℃孵育過夜，TBST洗滌3次，加入相應HPR標記的二抗，37 ℃孵育1 h，最后進行ECL顯影分析。

2 結 果

2.1GLOⅠ檢測 經ELISA檢測，與C組比較，DM組、DN low組、DN high組患者尿液中GLOⅠ水平逐漸下降，其差異有統(tǒng)計學意義(圖1)。

**：P<0.01，*：P<0.05

圖1 4組人群尿液GLOⅠ水平檢測(ELISA)

2.2利用siRNA對HRMCs中GLOⅠ進行有效敲減 為了分析和確認GLOⅠ在DN中的作用，筆者選取腎小球系膜細胞HRMCs，設計了3條針對GLOⅠ的siRNA(分別命名為siGLOⅠ-1、 siGLOⅠ-2和siGLOⅠ-3)，根據(jù)轉染的siRNA將細胞分為：Blank組(未作任何處理)、NC組(轉染無意義siRNA)、siGLO-1組(轉染siGLOⅠ-1)、siGLO-2組(轉染siGLOⅠ-2)、siGLO-3組(轉染siGLOⅠ-3)。結果發(fā)現(xiàn)：3條siRNA均可實現(xiàn)對HRMCs中GLOⅠ的敲減，其中以siGLOⅠ-3的敲減效果最為明顯(圖2)。因此，后續(xù)實驗均選用siGLOⅠ-3。

圖2 Westen blot驗證siRNA對GLOⅠ敲除效果

2.3GLOⅠ敲減可進一步增強AGEs所誘導的HRMCs細胞內ROS活性 H2DCFDA 熒光探針標記檢測發(fā)現(xiàn)：與Blank組比較，200 μg/mL的AGEs(AGEs組)可導致HRMCs細胞氧化應激增加，HRMCs細胞內ROS活性上升。而與AGEs組比較，GOLⅠ(AGE+siGOLⅠ3)則可進一步增強由AGEs所誘導的HRMCs細胞內ROS活性(圖3)。

圖3 GLOⅠ敲減對HRMCs細胞內ROS活性的影響

2.4GLOⅠ敲減可促進AGEs所誘導的P22phox表達 Q-PCR和Western blot檢測均發(fā)現(xiàn)：與Blank組比較，200 μg/mL的AGEs(AGEs組)可誘導P22phox的表達，而GLOⅠ敲減(AGE+siGOLⅠ3組)可使AGEs所誘導的P22phox mRNA和蛋白表達均進一步增加(圖4)。結合ROS活性檢測結果可知，GLOⅠ敲減可促進AGEs所誘導的HRMCs細胞氧化應激。

A：GLOⅠ敲減對AGEs作用下細胞P22phox mRNA表達的影響(Q-PCR，**：P<0.01)；B：GLOⅠ敲減對AGEs作用下細胞P22phox蛋白表達的影響(Western blot)

圖4 GLOⅠ敲減對AGEs作用下HRMCs細胞P22phox的影響

圖5 GLOⅠ敲減對AGEs誘導的AKT信號和p38信號蛋白的影響

2.5GLOⅠ敲減可促進AGEs所誘導的PI3K/AKT信號和p38信號蛋白的活化 本研究利用Western blot檢測了GLOⅠ敲減對AGEs誘導的PI3K/AKT信號和p38信號的影響，結果發(fā)現(xiàn)：與AGEs組比較，GLOⅠ敲減可使AGEs誘導的AKT磷酸化和p38磷酸化進一步增加(圖5)。

3 討 論

氧化應激是指機體在內源性或外源性有害因素的刺激下，體內高活性分子如ROS等產生過多，體內的抗氧化和氧化兩大系統(tǒng)平衡失調，機體更加傾向于氧化，并最終導致組織及細胞損傷。氧化應激使機體處于高度易損狀態(tài)，持續(xù)的氧化應激與多種疾病如高血壓、潰瘍性結腸炎、腦缺血再灌注損傷、阿爾海默茨癥、腫瘤等密切相關[8-13]。氧化應激在DN的發(fā)生、發(fā)展中也起著重要作用，葡萄糖本身可誘發(fā)氧化應激，葡萄糖與長壽命的蛋白質結合所形成的晚期糖基化終末產物(AGEs)也是誘發(fā)氧化應激的重要因素。當血糖正常時，AGEs形成非常緩慢。在長期的高血糖糖化反應的作用下，引起原本形成非常緩慢的AGEs 的加速形成和累積。AGEs與糖尿病慢性并發(fā)癥有關，也與其他疾病如衰老、老年癡呆等有相關性[14-15]。AGEs水平的上升也會導致腎小球系膜細胞的氧化應激，引起腎小球正常濾過功能的缺失，最終導致糖尿病腎病的發(fā)生、發(fā)展[3-4]。

GLOⅠ作為甲基乙二醛(methylglyoxal，MG)最重要的降解酶之一，可降低作為非酶糖化反應中間體MG的含量，從而減少非酶糖化蛋白如AGEs的生成，可保護機體免受AGEs所致的慢性損傷。研究證實，在人血管內皮細胞中過表達GLOⅠ可逆轉高糖所誘導血管生成減少和AGEs的累積[16]，GLOⅠ對高糖所致的神經損傷也具有保護作用[17]。在GLOⅠ轉基因大鼠中，GLOⅠ對高糖誘導的腎臟損傷有明顯保護作用，大鼠的各種腎損傷指標均明顯降低[18]。反之，在非糖尿病大鼠中敲除GLOⅠ基因后，會使大鼠腎臟表現(xiàn)出與DN相似的病理表現(xiàn)[19]，由此提示GLOⅠ表達水平的改變與DN的發(fā)生密切相關。本研究則進一步表明：GLOⅠ在DN患者尿液中含量降低，同時在人腎小球系膜細胞HRMCs中，GLOⅠ敲減會增加AGEs作用下的細胞氧化應激，在機制研究中，則證明PI3K/AKT和p38信號途徑與之相關，因此，GLOⅠ的確可能是與DN相關的重要分子。

總之，本研究表明GLOⅠ的降低可以引起腎小球系膜細胞HRMCs的氧化應激，這可能是導致DN發(fā)生的關鍵原因之一。GLOⅠ可作為DN發(fā)生和治療的潛在新靶點，用于DN的早期診斷和病情評估，但目前對于GLOⅠ在DN中具體作用并未完全明確。雖然本研究證實了GLOⅠ可影響PI3K/AKT信號和p38信號蛋白，但是GLOⅠ導致HRMCs細胞氧化應激的機制遠遠沒有闡明，后續(xù)將進一步分析DN患者血液和尿液GLOⅠ的變化，并探討GLOⅠ與其他信號蛋白ERK1/2等的關系，以便為深入解析GLOⅠ在DN中的作用奠定基礎。