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        昆布多糖不同提取工藝優(yōu)化及其理化性質(zhì)和抗腫瘤活性比較

        2019-04-12 05:34:44黃德春陳貴堂艾宗華蔣思琪康譯心高仕婧
        食品科學(xué) 2019年6期
        關(guān)鍵詞:昆布果膠酶多糖

        李 瑩,黃德春,陳貴堂*,艾宗華,蔣思琪,康譯心,高仕婧

        (中國(guó)藥科大學(xué)工學(xué)院,江蘇 南京 211198)

        近年來(lái),對(duì)多糖的研究一直是個(gè)熱點(diǎn),并且主要集中在提取和活性分析方面。目前多糖的提取方法主要有溶劑提取法(熱水浸提[1]、堿液提取[2]、酸液提取[3]等)、輔助提取法(微波輔助提取[4]、超聲輔助提取[5]、高壓輔助提取[6]、酶輔助提取[7]等)以及聯(lián)合提取法[8]等。研究表明,不同的提取方法不但影響多糖的提取效率,而且影響多糖的分子質(zhì)量、單糖組成、結(jié)構(gòu)以及生物活性[9-10]。如Zhu Zhenyuan等[11]比較了冷水、熱水、超聲、微波、纖維素酶5 種提取方法對(duì)古尼蟲(chóng)草多糖的影響,結(jié)果表明,微波提取多糖提取率和抗腫瘤活性均最高;Wang Junlong等[12]研究發(fā)現(xiàn),微波輔助提取過(guò)程中白沙蒿多糖的分子發(fā)生了降解,但微波輔助提取法提取的多糖比熱水提取法具有較高的抗氧化活性;Zhao Chengcheng等[13]比較了冷水、溫水、熱水、超聲輔助提取4 種提取方法對(duì)黏山藥多糖特征和生物活性的影響,發(fā)現(xiàn)熱水提取多糖提取率最高、分子質(zhì)量最大,冷水提取多糖分子質(zhì)量最小、糖醛酸含量高、1,1-二苯基-2-三硝基苯肼自由基清除活性和降血糖活性較高,而超聲輔助提取多糖分子質(zhì)量較小、亞鐵還原力最強(qiáng);而Yan Yajuan等[14]在比較熱水、微波、超聲、酶4 種不同方法提取砂仁多糖的研究中發(fā)現(xiàn),超聲提取多糖提取率、糖醛酸和硫酸基含量均最高,其抗氧化活性也最強(qiáng)。由此可見(jiàn),在多糖提取中,不同提取方法對(duì)同種原料產(chǎn)生效果不同,而同種方法對(duì)不同原料產(chǎn)生的效果也不同,沒(méi)有規(guī)律可循。

        昆布是褐藻門(mén)海帶目海帶科植物海帶(Laminaria japonicaAresch)或翅藻科植物昆布(Ecklonia kuromeOkam)的干燥葉狀體[15],其不僅營(yíng)養(yǎng)豐富,味道鮮美,而且具有較高的藥用價(jià)值,是藥食兩用物質(zhì)之一。現(xiàn)代研究表明,昆布含有藻膠酸、氨基酸、多糖、甘露醇等多種有效成分以及豐富的碘,其中昆布多糖是昆布的主要活性成分之一,與昆布的許多生理效應(yīng)有關(guān),如抗糖尿病[16]、調(diào)節(jié)血脂[17-18]、抗菌[19]、提高機(jī)體免疫、抗腫瘤[20-21]等作用。目前已有的文獻(xiàn)中,雖然對(duì)昆布多糖提取方法和生物活性的研究較多,但鮮見(jiàn)全面地比較不同提取方法對(duì)昆布多糖的性質(zhì)和生物活性影響方面的報(bào)道。因此,本實(shí)驗(yàn)采用熱水浸提、超聲輔助提取以及復(fù)合酶提取3 種方法提取昆布多糖,并對(duì)其理化性質(zhì)和抗腫瘤活性進(jìn)行比較分析,以期為進(jìn)一步探明不同提取方法與多糖結(jié)構(gòu)和抗腫瘤活性的關(guān)系,尋求適合昆布多糖的最佳提取工藝,為昆布多糖的深入開(kāi)發(fā)利用提供一定的理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑

        昆布購(gòu)自南京鹿江中藥飲片廠,經(jīng)粉碎后過(guò)60 目篩備用。

        纖維素酶(1 800 U/mg)、果膠酶(1 000 U/mg)上海金穗生物科技有限公司;木瓜蛋白酶(3 U/mg)阿拉丁試劑(上海)有限公司;小牛血清 美國(guó)Gibco公司;DMEM/F12(1∶1)培養(yǎng)液 美國(guó)HyClone公司;噻唑藍(lán)(3-(4,5-dimethyl-2-thiazolyl)-2,5-diphenyl-2-H-tetrazolium bromide,MTT) 江蘇凱基生物技術(shù)股份有限公司;剛果紅、鹽酸阿霉素(doxorubicin hydrochloride,DOX) 北京博奧拓達(dá)科技有限公司;其余試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。

        1.2 儀器與設(shè)備

        DFY-500搖擺式高速中藥粉碎機(jī) 溫嶺市林大機(jī)械有限公司;TU-1901紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì) 北京普析通用儀器有限責(zé)任公司;LXJ-IIB離心機(jī) 上海安亭科學(xué)儀器廠;JY-92IIN超聲波細(xì)胞粉碎機(jī) 寧波新芝生物科技股份有限公司;SHJ-4水浴恒溫磁力攪拌器 常州亞特實(shí)驗(yàn)儀器有限公司;PD-1C-50真空冷凍干燥機(jī) 北京博醫(yī)康實(shí)驗(yàn)儀器有限公司;ATX224分析天平 日本島津儀器公司;RE-5205旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器 上海亞榮生化儀器廠;Elx800TM酶標(biāo)儀 美國(guó)BioTek公司;CO2生化培養(yǎng)箱 賽默飛世爾科技(中國(guó))有限公司。

        1.3 方法

        1.3.1 熱水浸提法提取昆布多糖工藝優(yōu)化

        稱(chēng)取一定量昆布粉,固定反應(yīng)條件料液比1∶60(g/mL)、提取時(shí)間2 h、考察不同提取溫度(25、35、45、55、65、75、85 ℃)對(duì)昆布多糖提取率的影響;固定反應(yīng)條件料液比1∶60(g/mL)、提取溫度80 ℃,考察不同提取時(shí)間(1、2、3、4、5、6 h)對(duì)昆布多糖提取率的影響;固定反應(yīng)條件提取時(shí)間2 h、提取溫度80 ℃,考察不同料液比(1∶20、1∶30、1∶40、1∶50、1∶60、1∶70、1∶80(g/mL))對(duì)昆布多糖提取率的影響。

        在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,選取3 個(gè)單因素試驗(yàn)中測(cè)得的最佳條件正交試驗(yàn),以多糖的提取率為指標(biāo),優(yōu)化提取工藝參數(shù)。

        1.3.2 超聲輔助提取法提取昆布多糖工藝優(yōu)化

        稱(chēng)取一定量昆布粉,固定反應(yīng)條件料液比1∶60(g/mL)、超聲時(shí)間5 min,考察超聲功率(100、200、300、400、500 W)對(duì)昆布多糖提取率的影響;固定反應(yīng)條件料液比1∶60(g/mL)、超聲功率200 W,考察不同超聲時(shí)間(2、4、6、8、10、12 min)對(duì)昆布多糖提取率的影響;固定反應(yīng)條件超聲功率200 W、超聲時(shí)間5 min,考察料液比(1∶30、1∶40、1∶50、1∶60、1∶70、1∶80、1∶90、1∶100(g/mL))對(duì)昆布多糖提取率的影響。

        在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,選取3 個(gè)單因素試驗(yàn)中測(cè)得的最佳條件進(jìn)行正交試驗(yàn),以多糖的提取率為指標(biāo),優(yōu)化提取工藝參數(shù)。

        1.3.3 復(fù)合酶法提取昆布多糖工藝優(yōu)化

        稱(chēng)取一定量昆布粉,固定反應(yīng)條件pH 5、水浴提取溫度50 ℃、水浴提取時(shí)間3 h、料液比1∶70(g/mL)、木瓜蛋白酶30 U/g、果膠酶10 000 U/g,考察不同纖維素酶用量(18 000、36 000、54 000、72 000、90 000、108 000、126 000 U/g)對(duì)昆布多糖提取率的影響;固定反應(yīng)條件pH 5、水浴提取溫度50 ℃、水浴提取時(shí)間3 h、料液比1∶70(g/mL),木瓜蛋白酶30 U/g、纖維素酶18 000 U/g,考察不同果膠酶用量(5 000、10 000、15 000、20 000、25 000、30 000 U/g)對(duì)昆布多糖提取率的影響;固定反應(yīng)條件pH 5、水浴提取溫度50 ℃、水浴提取時(shí)間3 h、料液比1∶70(g/mL)、果膠酶10 000 U/g、纖維素酶18 000 U/g,100 ℃滅酶10 min,考察不同木瓜蛋白酶用量(45、60、75、90、105 U/g)對(duì)昆布多糖提取率的影響。

        在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,選取3 個(gè)單因素試驗(yàn)測(cè)得的最佳條件進(jìn)行正交試驗(yàn),以多糖提取率為指標(biāo),優(yōu)化提取工藝參數(shù)。

        1.3.4 粗多糖干品的制備

        根據(jù)正交試驗(yàn)最優(yōu)提取條件進(jìn)行多糖提取,4 000 r/min離心20 min,得到上清液,用Sevag法[22]除去蛋白質(zhì)后,用無(wú)水乙醇進(jìn)行沉淀,然后用乙醇、丙酮洗滌,真空干燥,分別得到3 種昆布粗多糖干品。

        1.3.5 多糖溶解性測(cè)定

        昆布多糖(0.1 g)置于150 mL燒杯內(nèi),加入100 mL蒸餾水使之在不同溫度(20、40、60、80、100 ℃)條件下水浴溶解,用磁力攪拌,記錄從開(kāi)始到昆布粗多糖完全溶解所需時(shí)間[23]。

        1.3.6 剛果紅實(shí)驗(yàn)

        稱(chēng)取4 mg多糖樣品,加入2 mL蒸餾水和2 mL剛果紅試劑(80 μg/mL),加入1 mol/L的NaOH溶液,調(diào)節(jié)NaOH溶液終濃度分別為0.1、0.2、0.3、0.4 mol/L和0.5 mol/L,紫外分光光度計(jì)掃描,測(cè)得不同濃度條件下溶液的最大吸收波長(zhǎng)。與剛果紅對(duì)比,判斷昆布多糖是否具有三股螺旋結(jié)構(gòu)[24]。

        1.3.7 紫外光譜特征

        配制200 μg/mL的昆布多糖溶液,以蒸餾水為空白,利用紫外分光光度計(jì)在波長(zhǎng)190~400 nm范圍內(nèi)測(cè)定吸光度,間隔1 nm,繪制昆布多糖紫外光譜特征曲線(xiàn),判斷所提取的昆布多糖中是否含有蛋白質(zhì)和核酸。

        1.3.8 MTT法測(cè)定腫瘤細(xì)胞的抑制率

        將處于對(duì)數(shù)期的MCF-7和A549細(xì)胞用胰酶消化后配制成濃度為1×104個(gè)/mL的細(xì)胞懸液,每孔100 μL加入到96 孔板內(nèi)。次日加入含有DOX或不同藥物濃度和相應(yīng)溶劑對(duì)照的新鮮培養(yǎng)基,每孔加100 μL。每種藥物設(shè)4 個(gè)劑量組,即DOX(1、0.8、0.6、0.4 μg/mL),多糖組(560、420、280、140 μg/mL),每組6 個(gè)平行孔,給藥后在37 ℃、5% CO2的細(xì)胞培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)72 h。培養(yǎng)結(jié)束后每孔加10 μL新鮮配制的5 mg/mL MTT溶液,繼續(xù)培養(yǎng)4 h,棄去上清液,每孔加入200 μL二甲基亞砜溶解沉淀,恒溫振蕩培養(yǎng)箱搖勻,用酶標(biāo)儀在波長(zhǎng)570 nm處測(cè)定吸光度,計(jì)算樣品的腫瘤細(xì)胞抑制率,并由SPSS 22.0軟件計(jì)算半抑制濃度(the half maximal inhibitory concentration,IC50)[25]。

        1.4 數(shù)據(jù)處理

        實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以 ±s表示,采用SPSS 22軟件進(jìn)行方差分析。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 熱水浸提法提取昆布多糖

        2.1.1 單因素試驗(yàn)結(jié)果

        圖1 提取溫度(A)、提取時(shí)間(B)和料液比(C)對(duì)昆布多糖提取率的影響Fig. 1 Effects of temperature (A), extraction time (B) and solid-tosolvent ratio (C) on the extraction efficiency of polysaccharides by HWE

        從圖1A可以看出,隨著提取溫度的逐漸升高,溶液中的昆布多糖提取率先緩慢增長(zhǎng),在高于45 ℃時(shí),有一個(gè)較快增長(zhǎng),在75 ℃時(shí)達(dá)到極值,隨后不再增長(zhǎng)。因此,在本實(shí)驗(yàn)條件下,昆布多糖的最適提取溫度為75 ℃。從圖1B可以看出,隨著提取時(shí)間的延長(zhǎng),昆布多糖提取率逐漸升高,在4 h時(shí)達(dá)到極值,后趨于平緩。因此選擇4 h為最佳提取時(shí)間。由圖1C可知,隨著料液比的增加,昆布多糖提取率一直呈現(xiàn)上升趨勢(shì),直到在料液比1∶70(g/mL)時(shí)達(dá)到極值,之后趨于平緩,因此選擇料液比1∶70為最佳提取條件。

        2.1.2 正交試驗(yàn)結(jié)果

        表1 熱水浸提法L9(33)正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果Table 1 Orthogonal array design L9 (33) with experimental results for optimization of HWE conditions

        如表1所示,影響昆布多糖提取率的最主因素是提取溫度,主次因素依次為A>B>C,最優(yōu)水平組合為A3B3C3,即提取溫度85 ℃、料液比1∶80(g/mL)、提取時(shí)間5 h。對(duì)最優(yōu)試驗(yàn)條件進(jìn)行3 組平行實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證,在最優(yōu)條件下,昆布多糖提取率為(5.97±0.04)%??梢?jiàn),該正交試驗(yàn)結(jié)果可靠。

        熱水浸提是提取多糖的傳統(tǒng)方法,其提取效果主要受提取溫度、提取時(shí)間以及料液比等因素等影響。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果符合文獻(xiàn)報(bào)道的一般結(jié)論。如魏曉梅等[26]在云南松茸多糖提取方案優(yōu)化及測(cè)定中,得到最佳水提條件為溫度80 ℃、時(shí)間3 h、料液比1∶15(g/mL);朱振元等[27]的滑子菇多糖提取工藝優(yōu)化中,得到最佳提取條件為溫度85 ℃、提取2 h、料液比1∶40(g/mL)??梢?jiàn),多糖多在溫度較高時(shí)容易提取出來(lái),不同原料的提取最優(yōu)料液比與時(shí)間有差別,這與不同原料自身的性質(zhì)有關(guān)。

        2.2 超聲輔助提取法提取昆布多糖

        2.2.1 單因素試驗(yàn)結(jié)果

        圖2 超聲功率(A)、超聲時(shí)間(B)和料液比(C)對(duì)昆布多糖提取率的影響Fig. 2 Effects of ultrasonic power (A), irradiation time (B) and solid-tosolvent ratio (C) on the extraction efficiency of polysaccharides by UAE

        由圖2A可知,從100 W開(kāi)始,隨著超聲功率的增加,昆布多糖提取率快速增加,但在超聲功率為400 W時(shí)達(dá)到最高點(diǎn),之后開(kāi)始下降。超聲功率的增加使得同樣時(shí)間內(nèi)對(duì)細(xì)胞壁的作用增強(qiáng),多糖分子可以更順利的從細(xì)胞內(nèi)進(jìn)入到溶液中,從而在一定范圍內(nèi),昆布多糖提取率一直在增加,但當(dāng)達(dá)到最高點(diǎn)后,過(guò)大的超聲功率可能會(huì)對(duì)多糖分子產(chǎn)生破壞作用,使多糖提取率下降。從圖2B可以看出,隨著超聲時(shí)間的延長(zhǎng),昆布多糖提取率幾乎以直線(xiàn)形式增加,但在第10分鐘時(shí)達(dá)到最高點(diǎn),之后開(kāi)始下降。這可能由于隨著超聲時(shí)間的延長(zhǎng),多糖以至單糖的結(jié)構(gòu)發(fā)生了變化,化學(xué)鍵如C—O—C和C—O—H鍵斷裂導(dǎo)致不能發(fā)生顯色反應(yīng),從而造成苯酚-硫酸法測(cè)定的總糖含量降低[28-29]。從圖2C可以看出,隨著料液比的增大,昆布多糖提取率逐漸增多,在料液比為1∶80(g/mL)時(shí)達(dá)到最高點(diǎn),然后趨于平緩??梢?jiàn)料液比越大,可容納的多糖分子越多,但并不能無(wú)限增多,溶液會(huì)達(dá)到飽和。因此,在本實(shí)驗(yàn)條件下,分別選擇超聲功率400 W、超聲時(shí)間10 min和料液比1∶80(g/mL)為最佳提取參數(shù)。

        2.2.2 正交試驗(yàn)結(jié)果

        表2 超聲輔助提取法正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果Table 2 Orthogonal array design L9 (33) with experimental results for optimization of UAE conditions

        如表2所示,影響昆布多糖提取率的最主因素為超聲功率,主次因素依次為A>B>C,最優(yōu)水平組合為A3B2C3,即超聲功率500 W、超聲時(shí)間10 min、料液比1∶90(g/mL)。對(duì)最優(yōu)條件進(jìn)行3 組平行實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證,昆布多糖的提取率為(5.81±0.00)%??梢?jiàn),該正交試驗(yàn)優(yōu)化結(jié)果可靠。

        2.3 復(fù)合酶法提取昆布多糖

        2.3.1 單因素試驗(yàn)結(jié)果

        圖3 纖維素酶(A)、果膠酶(B)和木瓜蛋白酶(C)用量對(duì)昆布多糖提取率的影響Fig. 3 Effects of cellulase (A), pectinase (B), and papain (C) dosage on the extraction efficiency of polysaccharides by MEE

        由圖3A可以看出,隨著纖維素酶用量的增加,昆布多糖提取率逐漸增加,當(dāng)加入90 000 U/g的纖維素酶時(shí),昆布多糖含量達(dá)到最大,當(dāng)繼續(xù)增加纖維素酶的用量,昆布多糖提取率則開(kāi)始下降。從圖3B可以看出,隨著果膠酶的加入,昆布多糖提取率也是呈現(xiàn)先增加后減少的趨勢(shì),最高點(diǎn)是果膠酶加入量20 000 U/g。由圖3C可知,昆布多糖提取率隨著木瓜蛋白酶的增加而增多,在木瓜蛋白酶的量為90 U/g時(shí)達(dá)到最大,然后趨于平緩。因此,選擇纖維素酶、果膠酶和木瓜蛋白酶的最適用量分別為90 000、20 000 U/g和90 U/g。

        2.3.2 正交試驗(yàn)結(jié)果

        表3 復(fù)合酶提取法正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)與結(jié)果Table 3 Orthogonal array design L9 (33) with experimental results for optimization of MEE conditions

        在固定pH 5、溫度50 ℃、料液比1∶70(g/mL)及時(shí)間3 h條件下,考察3 種酶不同配比對(duì)昆布多糖提取率的影響,如表3所示。影響昆布多糖提取率最顯著的酶是纖維素酶,然后依次是木瓜蛋白酶和果膠酶。最優(yōu)水平組合為A1B1C3,即木瓜蛋白酶75 U/g、果膠酶15 000 U/g、纖維素酶108 000 U/g。對(duì)最優(yōu)復(fù)合酶組合條件進(jìn)行3 組平行實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證,昆布多糖的提取率為(14.29±0.02)%,提示該正交試驗(yàn)優(yōu)化結(jié)果可靠。

        2.4 提取方法對(duì)昆布多糖溶解性的影響

        圖4 提取方法對(duì)昆布多糖溶解性的影響Fig. 4 Effects of extraction methods on solubility of polysaccharides from L. japonica

        從圖4可以看出,不同提取方法提取的多糖的溶解性有著顯著差異(P<0.05)。溶解時(shí)間隨著溶解溫度的升高而降低。復(fù)合酶法的溶解時(shí)間顯著低于熱水浸提法和超聲提取法(P<0.05)。可能是由于復(fù)合酶使得多糖的結(jié)構(gòu)疏松,部分糖蛋白中的蛋白質(zhì)分解,分子質(zhì)量更小,所以更容易溶解。

        2.5 剛果紅實(shí)驗(yàn)結(jié)果

        圖5 NaOH溶液濃度對(duì)剛果紅-昆布多糖絡(luò)合物最大吸收波長(zhǎng)的影響Fig. 5 Maximum absorption wavelength of Congo red complexes of polysaccharides from L. japonica at various NaOH concentrations

        多糖的抗腫瘤活性不僅與多糖分子的一級(jí)結(jié)構(gòu)有關(guān),還與多糖分子的高級(jí)結(jié)構(gòu)有關(guān),而其中三股螺旋結(jié)構(gòu)是多糖分子中最具有活性的空間構(gòu)象[30]。通過(guò)剛果紅實(shí)驗(yàn),具有三股螺旋結(jié)構(gòu)的多糖會(huì)與剛果紅形成絡(luò)合物,使得溶液的最大吸收波長(zhǎng)發(fā)生變化,由此推測(cè)多糖是否具有三股螺旋結(jié)構(gòu)。由圖5可以看出,隨著NaOH溶液濃度的增加,熱水浸提的多糖和復(fù)合酶法提取的多糖均是先降低再升高再降低,說(shuō)明在低濃度NaOH溶液和高濃度NaOH溶液條件下,樣品的螺旋結(jié)構(gòu)解體,是以無(wú)規(guī)則線(xiàn)團(tuán)的形式存在,而在濃度0.3 mol/L左右的NaOH溶液條件下,是其三股螺旋結(jié)構(gòu)與剛果紅形成了絡(luò)合物,使得最大吸收波長(zhǎng)向長(zhǎng)波方向移動(dòng)。

        2.6 昆布多糖紫外光譜分析

        圖6 提取方法對(duì)昆布多糖紫外光譜的影響Fig. 6 UV absorption spectra of polysaccharides from L. japonica extracted by three extraction methods

        從圖6可以看出,3 種不同提取方法的昆布多糖的紫外光譜是大體相同的,在波長(zhǎng)280 nm處略有吸收峰,說(shuō)明樣品中含有較少的蛋白質(zhì)或多肽,這與以上粗多糖中蛋白質(zhì)含量的測(cè)定結(jié)果一致。

        2.7 不同方法提取多糖對(duì)腫瘤細(xì)胞的抑制作用

        表4 不同提取方法的昆布多糖的抗腫瘤活性Table 4 Antitumor activity of polysaccharides from L. japonica

        多糖在抗腫瘤藥物的研究中占有一定的比例,研究表明多種多糖對(duì)腫瘤細(xì)胞都有一定的效果[31-32]。MTT實(shí)驗(yàn)表明,昆布多糖可以對(duì)人乳腺癌細(xì)胞MCF-7和人肺癌細(xì)胞A549產(chǎn)生抑制作用,并且不同提取方法的昆布多糖的抗癌活性并不相同,結(jié)果如表4所示。可見(jiàn)熱水浸提昆布多糖對(duì)人肺癌細(xì)胞A549無(wú)抑制作用,對(duì)于人乳腺癌細(xì)胞有一定抑制效果,超聲提取昆布多糖正好相反,而酶法提取昆布多糖對(duì)2 種腫瘤細(xì)胞均具有抑制作用。總體來(lái)說(shuō),對(duì)于人肺癌細(xì)胞A549,超聲提取的昆布多糖的IC50最小,說(shuō)明其對(duì)該腫瘤細(xì)胞的抑制效果最好,而對(duì)于人乳腺癌細(xì)胞MCF-7,復(fù)合酶法提取而昆布多糖抑制效果最好。該實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明不同方法提取的多糖結(jié)構(gòu)或包含的活性基團(tuán)不同,也可能是由于復(fù)合酶法提取的昆布多糖雜質(zhì)含量較少,多糖純度更高以致其生物活性更高。

        3 結(jié) 論

        通過(guò)3 種不同提取方法的條件優(yōu)化,表明復(fù)合酶法的昆布粗多糖提取率最高,是由于酶對(duì)植物細(xì)胞壁發(fā)揮了作用,使細(xì)胞中的多糖更容易分離出來(lái),進(jìn)入到溶液中。超聲提取法的提取率稍小于熱水浸提,可能是由于超聲時(shí)間相較于熱水浸提的時(shí)間較短,并且超聲處理的過(guò)程始終是在冰水浴中進(jìn)行,溫度較低,不利于多糖的溶出。通過(guò)3 種方法提取率的比較,為以后昆布多糖的大量提取可靠依據(jù)。不同提取方法對(duì)昆布多糖的化學(xué)組成和溶解性等理化性質(zhì)以及抗腫瘤活性有顯著的影響,不同提取方法所得多糖的分離純化、結(jié)構(gòu)表征及其與抗腫瘤活性的關(guān)系有待進(jìn)一步深入研究。

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