鄔光敏,郭媛媛,朱凡,張鎧,劉希宇,朱波
(1.云南省阜外心血管病醫(yī)院 血管外科,云南 昆明 650032;2.云南省昆明醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院 肝膽外科,云南昆明 650032)
動脈狹窄性疾病的治療理念處于不斷更新中,但自體靜脈移植,仍然是重建冠脈及外周動脈的主要方式[1-2]。移植靜脈狹窄(vein graft stenosis,VGS)限制了其遠期療效。但是,VGS的確切機制尚未闡明[3]。之前關(guān)于VGS的研究都基于一個假設(shè):移植靜脈的內(nèi)膜增生,同動脈損傷后的內(nèi)膜增生,具有相似的病理生理過程[4-6]。但是,基于上述思路的臨床實驗并未改善移植靜脈的遠期通暢率[7-8]。
發(fā)育生物學(xué)研究提示:胚胎期,循環(huán)系統(tǒng)建立之初,動脈與靜脈就存在基因水平的差異[9]。ephrinB2及其受體EphB4這一對分子標記物是血管形成過程中動、靜脈分化的決定性分子,促使初期脈管分別向動脈、靜脈分化。在成年動物,兩者分別分布于動脈、靜脈的內(nèi)皮細胞,維持成年動物動、靜脈的結(jié)構(gòu)及功能穩(wěn)定,是動、靜脈的分子指紋[10]。
前期研究[5,11]提示:移植靜脈適應(yīng)動脈血流的過程具有其靜脈特異性,可能與動脈損傷后的狹窄存在分子水平的差異。本研究采用成組設(shè)計,觀察不同EphB4表達量對移植靜脈吻合口管腔、內(nèi)皮細胞遷移能力、ERK1/2(細胞外信號調(diào)節(jié)激酶途徑)通路活化的影響,探索EphB4相關(guān)、靜脈特異性的適應(yīng)動脈血流的調(diào)控機制,從全新的視野為VGS的防治提供理論依據(jù)。
1.1.1 實驗動物 成年雄性野生型SD大鼠50只,體質(zhì)量220~300 g,由昆明醫(yī)科大學(xué)SPF實驗中心提供。成年雄性EphB4+/-型轉(zhuǎn)基因SD大鼠10只,體質(zhì)量220~300 g,由廣州賽業(yè)生物科技有限公司制備,昆明醫(yī)科大學(xué)SPF實驗中心繁育。大鼠均在“昆明醫(yī)科大學(xué)實驗動物飼養(yǎng)與操作規(guī)程”規(guī)范下進行實驗操作。
1.1.2 移植靜脈模型建立 2%戊巴比妥鈉腹腔注射麻醉大鼠,供體大鼠行胸部正中切口,剪取上腔靜脈約2 cm,置于肝素生理鹽水中備用。受體大鼠行腹部正中切口,暴露大鼠腹主動脈及下腔靜脈并肝素化,血管夾阻斷主動脈近遠端血流,離斷腹主動脈,將供體上腔靜脈以端端吻合方式,移植到受體腹主動脈,重建動脈血流[12]。
1.1.3 分組及處理 單純模型組:隨機選擇野生型大鼠20只(供體、受體各10只),建立移植靜脈動物模型;EphB4增強組:將ephrinB2-Fc溶于PluronicF127膠與陽離子聚合物PEI的混合液中,配置為1 μg/mL;隨機選擇野生型大鼠20只(供體、受體各10只),建模后取混合物200 μL涂抹于移植靜脈外膜[4];EphB4減弱組:隨機選野生型大鼠10只,EphB4+/-型大鼠10只,將EphB4+/-型轉(zhuǎn)基因大鼠靜脈行端端吻合,移植到野生型大鼠腹主動脈。按取材時間不同,各組內(nèi)再分為術(shù)后1周組及術(shù)后4周組。
1.1.4 標本的收集與處理 過量麻醉處死大鼠后,切取移植靜脈,置于4%多聚甲醛中過夜,石蠟包埋,制片備用。分別行:HE染色、α-平滑肌肌動蛋白(α-actin)免疫組織化學(xué)染色、Masson染色,并測量移植靜脈內(nèi)膜+中膜厚度。
1.2.1 細胞來源 野生型大鼠靜脈內(nèi)皮細胞取自大鼠上腔靜脈,EphB4+/-型大鼠靜脈內(nèi)皮細胞取自EphB4+/-型大鼠上腔靜脈。
1.2.2 干預(yù)措施 以相同濃度的ephrinB2-Fc分別刺激野生型及EphB4+/-型靜脈內(nèi)皮細胞進行qRT-PCR對比兩種細胞EphB4 mRNA的表達,進行Western blot對比兩種細胞p-ERK1/2、磷酸化EphB4膜受體(p-EphB4R)表達的異同,進行免疫熒光、細胞劃痕實驗。
大鼠ephrinB2-Fc蛋白購于Sino-biological公司,α-actin單克隆抗體、EphB4單克隆抗體,免疫組化染色試劑盒,免疫熒光染色試劑盒,PCR試劑盒等,均購于Cell signaling technology公司。
HE染色,平滑肌細胞特異性染色(α-actin)及膠原纖維特異性染色Massion染色,由云南省阜外心血管病醫(yī)院病理科按相關(guān)操作規(guī)程進行。RT-PCR、Western blot、免疫熒光染色均按相關(guān)試劑盒操作規(guī)程完成。α-actin及Massion染色結(jié)果判定:在光強度及曝光度相同的條件下,每例切片在10×40光學(xué)顯微鏡下任選5個視野,測定其陽性顆粒的平均光密度值(optical density,OD),以此代表免疫組化陽性細胞的量。熒光染色結(jié)果判定:依照細胞陽性著色程度,可分為:弱陽性(+)1分;中等陽性(++)2分;強陽性(+++)3分。采用積分綜合計量。計算公式為:(+)%×1+(++)%×2+(+++)%×3;總數(shù)值<0.5者為(-),<1.0者為(+),1.0~1.5者為(++),>1.5者為(+++);至少隨機觀察5~10個視野。細胞劃痕實驗:培養(yǎng)內(nèi)皮細胞,中央?yún)^(qū)域劃線,不同時間觀察周邊細胞是否移動至中央劃痕區(qū),以此判斷細胞遷移能力。
應(yīng)用NIH Image J醫(yī)學(xué)圖象分析系統(tǒng)對免疫組化染色后的圖像進行定量分析。數(shù)據(jù)以均數(shù)±標準差(±s)表示,應(yīng)用SPSS 22.0統(tǒng)計軟件分析,組間比較采用單因素方差分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
建模成功后1、4周取材(共4組,n=5)。通過HE染色測量內(nèi)膜+中膜厚度(圖1),結(jié)果提示:與正常上腔靜脈比較,各實驗組移植靜脈的內(nèi)膜+中膜厚度均明顯增加(均P<0.05);術(shù)后1周,各實驗組組間內(nèi)膜+中膜厚度差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);術(shù)后4周,各組內(nèi)膜+中膜厚度組間比較出現(xiàn)明顯差異(P<0.05)。其中,ephrinB2增強組內(nèi)膜+中膜厚度明顯低于模型組,而EphB4減弱組內(nèi)膜+中膜厚度明顯高于ephrinB2增強組(均P<0.05),但EphB4減弱組與模型組間差異未達統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05)。α-actin及Massion染色結(jié)果顯示:術(shù)后4周,ephrinB2干預(yù)組α-actin陽性細胞及膠原纖維表達,明顯低于對照組,而EphB減弱組則高于ephrinB2增強組(圖1)(表1)(均P<0.05)。
圖1 大鼠正常上腔靜脈與術(shù)后4周各組移植靜脈標本染色結(jié)果(×100)Figure 1 Staining results of the normal rat superior vena cava and the vein graft s od each experimental group at 4 weeks aft er model creation(×100)
表1 大鼠正常上腔靜脈與各實驗組內(nèi)膜+中膜厚度、α-actin及膠原纖維含量比較( ±s)Table 1 Comparison of the intima-media thickness,and the contents of smooth muscle actin and collagen fiber among normal rat superior vena cava and the experimental groups( ±s)
表1 大鼠正常上腔靜脈與各實驗組內(nèi)膜+中膜厚度、α-actin及膠原纖維含量比較( ±s)Table 1 Comparison of the intima-media thickness,and the contents of smooth muscle actin and collagen fiber among normal rat superior vena cava and the experimental groups( ±s)
注:1)與正常上腔靜脈比較,P<0.05;2)與同組術(shù)后1周比較,P<0.05;3)與EphB4增強組比較,P<0.05Note:1)P<0.05 vs. normal rat superior vena cava; 2)P<0.05 vs. same group at 1 week aft er model creation; 3)P<0.05 vs. EphB4 enhancing group
相同濃度ephrinB2-Fc(1 μg/mL)分別刺激野生型(EphB4+/+)及EphB4+/-型靜脈內(nèi)皮細胞,免疫熒光與Western blot結(jié)果均顯示,EphB4+/-型靜脈內(nèi)皮細胞ERK1/2、EphB4R磷酸化程度弱于野生型(圖2);qRT-PCR結(jié)果顯示,EphB4+/-型靜脈內(nèi)皮細胞的EphB4 mRNA轉(zhuǎn)錄活性明顯低于野生型(P<0.05)(圖3)。
細胞劃痕實驗結(jié)果顯示,兩種內(nèi)皮細胞在同等條件、相同濃度ephrinB2-Fc(1 μg/mL,6 h)刺激下,EphB4+/-型靜脈內(nèi)皮細胞遷移程度明顯低于野生型(P<0.05)(圖4)。
圖2 野生型與EphB4+/-型大鼠靜脈內(nèi)皮細胞ERK1/2、EphB4R磷酸化程度比較Figure 2 Comparison of the degrees of phosphorylation of EphBR and ERK1/2 between vein endothelial cells from wild type and EphB4+/- type rats
圖3 野生型與EphB4+/-型大鼠靜脈內(nèi)皮細胞mRNA轉(zhuǎn)錄活性比較Figure 3 Figure 2 Comparison of the transcriptional activityies of EphB4 mRNA between vein endothelial cells from wild type and EphB4+/- type rats
圖4 細胞劃痕實驗結(jié)果Figure 4 Results of scratch-wound assay
無論是靜脈移植重建動脈[13],還是血管介入治療腔內(nèi)重建動脈[14-15],其共同的瓶頸就是術(shù)后再狹窄。這一問題一直是心血管病內(nèi)、外科醫(yī)生面臨的重要挑戰(zhàn),此過程所特有的復(fù)雜機制尚無任何學(xué)說能夠做出清楚的解釋。
動脈術(shù)后再狹窄的共同通路是:血管內(nèi)膜高度增生[16-17]。由于動、靜脈的內(nèi)膜增生有著相似的病理生理過程和臨床結(jié)局,過去的研究都是基于同一個假設(shè),也就是動、靜脈的內(nèi)膜增生擁有共同機制。處理動脈內(nèi)膜增生的治療策略,同樣被應(yīng)用于處理移植靜脈的內(nèi)膜增生??梢愿爬椋豪貌煌d體,將不同的治療因子轉(zhuǎn)染致靜脈移植物管壁,或直接利用藥物涂層支架[18]或者涂層球囊[19],改善靜脈移植物或介入治療后動脈的遠期通暢率,但是運用于臨床,未能達到預(yù)期的治療效果。
基于發(fā)育生物學(xué)及課題組前期研究結(jié)果[20-21],本研究的假設(shè)是:成年動物,靜脈具有可塑性,靜脈分子指紋EphB4的表達量,可能是移植靜脈內(nèi)膜增生的核心調(diào)節(jié)因子。保證EphB4的表達,可維持靜脈結(jié)構(gòu)及功能的“穩(wěn)態(tài)”,可能將減少移植物的內(nèi)膜增生及管腔狹窄。研究從動物實驗和細胞實驗兩方面驗證了假設(shè)。靜脈移植術(shù)后4周,EphB4增強組的內(nèi)膜+中膜厚度,平滑肌細胞增殖程度均較EphB4減弱組及模型組顯著減少。從組織學(xué)層面提示EphB4表達量的差異對內(nèi)膜增生的影響。細胞學(xué)研究進一步驗證EphB4表達量不同時,EphB4膜受體磷酸化,下游傳導(dǎo)通路ERK1/2的激活程度不同。劃痕實驗?zāi)M了內(nèi)皮細胞的遷移,EphB4+/-型靜脈內(nèi)皮細胞遷移程度顯著低于野生型,推測基因敲除后的內(nèi)皮細胞功能弱化。雖然細胞實驗不能完全反映動物實驗中內(nèi)膜增生及管壁重塑的機制,但可以推測:內(nèi)皮細胞功能的減弱,可能是導(dǎo)致移植靜脈管壁增厚的原因之一。ERK1/2信號通路與EphB4信號通路有密切關(guān)聯(lián)[22-23],且同時滿足以下條件:(1)同EphB4一樣在靜脈源細胞中表達;(2)在VGA過程中,其蛋白表達的改變與移植靜脈內(nèi)膜增生過程密切相關(guān)[24];(3)ERK1/2與Eph家族有交互作用[25]。通過ERK通路阻斷實驗,進一步證實了ERK1/2在EphB4主導(dǎo)的調(diào)控過程中所起的作用。
通過實驗驗證了靜脈特異性內(nèi)膜增生的機制之后,下一步的工作將集中對動脈特異性的內(nèi)膜增生進行研究,從一個新的角度來探索動、靜脈內(nèi)膜增生的分子本質(zhì)差異。移植靜脈適應(yīng)動脈血流的過程中,保證靜脈指紋分子EphB4的表達,可能保持了移植靜脈的靜脈屬性,減輕血管重塑,改善移植靜脈狹窄;EphB4-ERK1/2在靜脈特異性的調(diào)控機制中的可能通過控制EphB4的表達而起主要作用。