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        發(fā)酵羊乳及其抗氧化活性肽的研究

        2018-12-29 03:42:46馬嵐趙存朝黃艾祥
        中國乳品工業(yè) 2018年11期
        關(guān)鍵詞:羊乳菌種乳酸菌

        馬嵐,趙存朝,黃艾祥

        (1.云南省瀘西縣農(nóng)業(yè)環(huán)境監(jiān)測保護(hù)站,云南瀘西 652499;2.云南農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)技術(shù)學(xué)院,昆明 650201)

        0 引 言

        山羊乳營養(yǎng)豐富、易于吸收是乳品中的精品,主要營養(yǎng)成分含量均高于牛乳和人乳,其中酪蛋白、氨基酸和低聚糖組成模式接近母乳,具有獨(dú)特的生物活性性質(zhì),是一種理想的牛乳替代品[1-6]。山羊乳營養(yǎng)研究結(jié)果再次把山羊乳推薦為“替代牛乳治療營養(yǎng)不良兒童的有益選擇”,其中含有某些生長因子和生物活性物質(zhì),而這些物質(zhì)在牛奶中可能并不存在[7]。近年來,乳及乳制品中的生物活性肽功能被大量研究。生理功能活性肽是從多種食物蛋白質(zhì)經(jīng)胃腸消化和食品原料經(jīng)乳酸菌發(fā)酵而產(chǎn)生[8]。許多乳蛋白衍生肽具有抗菌、降血壓、抗血栓形成、抗氧化及免疫調(diào)節(jié)活性[9]。Korhonen等從酶消化的各種食物蛋白質(zhì)中分離出降壓肽或ACE抑制肽[10],Nakamura等利用乳酸菌和酵母菌發(fā)酵脫脂乳純化出ACE抑制肽[11],Gobbetti等經(jīng)嗜熱菌蛋白酶水解山羊β-乳球蛋白純化出4種新的ACE抑制肽[12];Suetsuna等證明αs-酪蛋白衍生肽具有清除自由基活性并能抑制酶促和非酶促脂質(zhì)過氧化反應(yīng)[13];IL Expósito等經(jīng)胃蛋白酶水解綿羊乳發(fā)現(xiàn)4種抗菌肽。更多的研究表明源于山羊乳的抗血栓肽[14]、酪蛋白磷酸肽[15]、阿片類活性肽[16]等受到人們的極大關(guān)注。

        酸奶一直被認(rèn)為是一種功能性食品,除了含營養(yǎng)素外,還含有促進(jìn)身體功能的成分[17]。酸奶在制作過程中加入活菌,增加酸乳制品的營養(yǎng)質(zhì)量和風(fēng)味。益生菌可以通過活菌在體內(nèi)直接作用,另外,通過活菌細(xì)胞代謝產(chǎn)物間接作用,發(fā)酵乳中的多肽如酪新素[18]、酪激肽[19]、降血壓肽[20]、乳鐵蛋白肽[21]、凝血素抑制肽[22]等一些還沒被具體鑒定的肽。流行病學(xué)和動物實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:酸奶及其細(xì)菌性成分對宿主免疫系統(tǒng)及其疾病控制起到了重要的作用,如免疫刺激特性[23]、腸道疾病[24]、癌癥[25]、心血管疾病[26]、乳糖不耐癥等[27]。本研究通過篩選高產(chǎn)抗氧化活性肽的乳酸菌,利用響應(yīng)面法對產(chǎn)肽條件進(jìn)行優(yōu)化確定最優(yōu)產(chǎn)肽參數(shù),進(jìn)而采用二次通用旋轉(zhuǎn)研制一種高產(chǎn)抗氧化肽的山羊發(fā)酵乳,并經(jīng)體外胃腸道模擬測試山羊發(fā)酵乳抗氧化穩(wěn)定性,同時促進(jìn)山羊乳資源的開發(fā)利用,為抗氧化功能性乳制品的開發(fā)提供理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 材料與儀器

        1.1.1 試劑與菌株

        L-谷光甘肽,北京北納創(chuàng)聯(lián)生物技術(shù)研究院;2,2-聯(lián)苯基-1-苦基肼基(DPPH)、30%過氧化氫(H2O2)、2,2'-聯(lián)氮-雙(3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)二銨鹽(ABTS),上海晶純生化科技股份有限公司;胃蛋白酶、胰蛋白酶,索萊寶生物科技有限公司。

        CICC 6063嗜熱鏈球菌(Streptococcus thermophilus);CICC 6064瑞士乳桿菌(Lactobacillus helveticus);CICC 20264植物乳桿菌(Lactobacillus plantarum);CICC 20022植物乳桿菌亞種(Lactobacillus plantarum subsp.plantarum);CICC 20241副干酪乳桿菌(Lactobacillus paracasei);CICC 20262干酪乳桿菌(Lactobacillus paracasei);CICC 22150嗜酸乳桿菌(Lactobacillus acidophilus)。

        1.1.2 儀器與設(shè)備

        URA14M 0018分光光度計(jì),上海翱藝儀器有限公司;TGL20M高速冷凍離心機(jī),湖南湘立科學(xué)儀器有限公司;SVJ-358智能商用型酸奶機(jī),北京世紀(jì)陽光;UL40BC乳成份分析儀,杭州浙大優(yōu)創(chuàng)科技有限公司;SW-CJ-IF單人雙面超凈無菌操作臺,蘇州江東精密儀器有限公司;HPX-9272ME恒溫培養(yǎng)箱,上海博訊實(shí)業(yè)有限公司;GMSX-280壓力蒸汽滅菌器,北京市永光明醫(yī)療儀器有限公司。

        1.2 方法

        1.2.1 抗氧化活性肽的提取

        取100 mL山羊乳85℃滅菌15 min,冷卻至45℃,接種乳酸菌,42℃發(fā)酵后4℃冷藏12 h,沸水浴滅酶10 min,4℃ 4 000×g離心10 min,取上清液,4℃冷藏備用。

        1.2.2 發(fā)酵羊乳菌種篩選

        (1)菌種活化分別取適量乳桿菌菌株凍干菌粉接種于10 mL滅苗MRS肉湯培養(yǎng)基中,旋渦混勻于37℃在恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h得到一代菌懸液。按5%的接種量將一代菌懸液接種于MRS肉湯培養(yǎng)基中,37℃恒溫培養(yǎng)24 h得二代菌懸液。重復(fù)上述步驟37℃恒濕培養(yǎng)18 h,進(jìn)行第三次活化得到三代活化菌懸液,4℃冰箱儲存?zhèn)溆谩?/p>

        (2)菌種馴化將活化后的乳酸菌接種到山羊乳中訓(xùn)化增殖,依次調(diào)整菌種接種量為8%,4%,2%,40℃恒溫培養(yǎng)至凝乳,保證菌種活力能在4 h內(nèi)凝乳。

        (3)高產(chǎn)抗氧化肽菌種篩選按3%的接種量分別接種7株乳酸菌于滅菌山羊乳中,以水解度及ABTS自由基清除活性為指標(biāo),篩選高產(chǎn)抗氧化肽菌種。

        1.2.3 發(fā)酵羊乳產(chǎn)抗氧化肽工藝優(yōu)化

        (1)發(fā)酵羊乳菌種配比

        選取水解度及ABTS自由基清除能力最大的乳酸菌與嗜熱鏈球菌和瑞士乳桿菌以4%的接種量按(1∶1∶1;1∶2∶1;1∶1∶2;2∶1∶1;1∶1∶3))5種配比進(jìn)行復(fù)配,接種發(fā)酵后取上清液測定水解度及ABTS自由基清除能力,確定山羊發(fā)酵菌種的最佳配比。

        (2)發(fā)酵羊乳產(chǎn)抗氧化肽的單因素實(shí)驗(yàn)

        以水解度為評價(jià)指標(biāo),考察接種量(2%、3%、4%、5%、6%、7%)、發(fā)酵時間(6、7、8、9、10、11 h)、后熟時間(4、8、12、16、20、24 h)3個因素對其的影響,確定響應(yīng)面最佳因素水平。

        (3)響應(yīng)面試驗(yàn)因素水平表

        在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,利用響應(yīng)面Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì),以水解度為響應(yīng)值,選取水解度影響較為顯著的A接種量、B發(fā)酵時間、C后熟時間3個因素,進(jìn)行3因素3水平的試驗(yàn)設(shè)計(jì),優(yōu)化發(fā)酵山羊乳產(chǎn)抗氧化肽的工藝參數(shù)。響應(yīng)面分析因素及水平見表1。

        表1 響應(yīng)面試驗(yàn)分析因素與水平

        1.2.4 水解度測定

        水解度測定采用甲醛滴定法。

        1.2.5 抗氧化活性測定

        (1)DPPH·自由基清除能力測定參考等SLin的方法[28]。谷光甘肽作為標(biāo)準(zhǔn)品,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程 為 :y=0.301x+0.203(0.301~1.81 mg/mL,R2=0.996);y為DPPH自由基清除率,x為谷光甘肽濃度。

        (2)還原能力測定參考徐懷德等的方法[29]。谷光甘肽作為標(biāo)準(zhǔn)品,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程為:y=0.0003x+0.0435(301~1806 mg/mL,R2=0.9986);y為吸光度,x為谷光甘肽濃度。

        (3)總抗氧化能力測定(TEAC)參考T Valeriaa等的方法[30]。谷光甘肽作為標(biāo)準(zhǔn)品,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線回歸方程為:y=0.004x+0.027(30.1μg/mL~180.6μg/mL,R2=0.996);y為ABTS自由基清除率,x為谷光甘肽濃度。

        1.2.6 發(fā)酵羊乳的研制

        (1)工藝流程

        山羊乳100 kg→65℃預(yù)熱→6~8 MPa均質(zhì)→85℃殺菌15 min→冷卻至45℃→接種發(fā)酵劑→灌裝→發(fā)酵→冷藏→成品

        (2)發(fā)酵羊乳單因素實(shí)驗(yàn)

        以感官評分為指標(biāo),考察糖添加量(7%、7.5%、8%、8.5%、9%)、淡奶油添加量(1%、1.5%、2%、2.5%、3%)、發(fā)酵溫度(38、40、42、44、46℃)3個因素對其影響,確定二次通用旋轉(zhuǎn)最佳因素水平。

        (3)二次通用旋轉(zhuǎn)試驗(yàn)因素水平表

        在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,選擇糖添加量、淡奶油添加量和發(fā)酵時間3個因素,采用二次通用旋轉(zhuǎn)試驗(yàn)設(shè)計(jì),進(jìn)行3因素5水平試驗(yàn),試驗(yàn)因素水平見表2。

        表2 二次通用旋轉(zhuǎn)因素水平表

        (4)感官評價(jià)

        組織15位具有一定專業(yè)知識的人員經(jīng)培訓(xùn)組成評價(jià)小組,分別從色澤1分、氣味2分、滋味4分及組織狀態(tài)3分4個方面對山羊發(fā)酵乳進(jìn)行評定,最后得分為15位評分員評分的算術(shù)平均值。具體以上感官項(xiàng)目權(quán)重的分布見表3。

        表3 山羊奶發(fā)酵乳的感官評價(jià)標(biāo)準(zhǔn)

        1.2.7 模擬胃腸道消化

        人工模擬腸液的配制:磷酸氫二鉀6.89 g,加500 mL蒸餾水溶解,再用0.4 mol/L NaOH溶液將其pH調(diào)至6.8,另取胰蛋白酶10 g加適量蒸餾水溶解,將兩液混合后,加水定容至1 000 mL。

        人工模擬胃液的配制:將23.4 mL濃鹽酸加水稀釋至100 mL得到稀鹽酸,取16.4 mL稀鹽酸,加水約800 mL與10 g胃蛋白酶,混勻后加水稀釋至1 000 mL。

        取山羊奶發(fā)酵乳5 mL,4℃4000×g離心10 min,取上清液測定抗氧化活性。山羊奶發(fā)酵羊乳p H值調(diào)至2.0,然后取1 mL接于含9 mL的人工胃酸試管中,充分混勻后37℃保溫2 h,沸水浴加熱10 min以終止反應(yīng)。測定消化前后的抗氧化活性。再將其p H調(diào)至6.8,以1∶9的體積比加入至人工腸液中,于37℃恒溫水浴中模擬消化2 h,沸水浴加熱10 min以終止反應(yīng),再取樣測定其抗氧化。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 發(fā)酵羊乳菌種篩選

        乳酸菌沒有假單胞菌、枯草桿菌、地衣芽胞桿菌等的蛋白水解力,但其對乳制品蛋白水解具有改善制品風(fēng)味和質(zhì)地的作用,在干酪成熟中乳酸菌的蛋白水解及菌體破裂后釋放的酶發(fā)揮著重要作用。由圖1可以看出,7株乳酸菌在相同條件下ABTS自由基清除能力及水解度不同,且山羊乳蛋白水解度及ABTS自由基清除能力具有相關(guān)性;副干酪乳桿菌具有較強(qiáng)的蛋白水解能力及抗氧化活性,可用于山羊發(fā)酵乳的制作。

        圖1 高產(chǎn)抗氧化肽的山羊發(fā)酵乳菌種篩選

        2.2 發(fā)酵羊乳產(chǎn)抗氧化肽工藝優(yōu)化

        2.2.1 發(fā)酵羊乳菌種配比

        圖2 乳酸菌配比對產(chǎn)抗氧化肽的影響

        在酸奶、Mozzarella干酪的發(fā)酵過程中、混合菌株間的共生作用讓蛋白水解以促進(jìn)菌株的生長;由圖2可知:試驗(yàn)采用傳統(tǒng)發(fā)酵菌嗜熱鏈球菌、瑞士乳桿菌及篩選的高產(chǎn)抗氧化肽菌株副干酪按不同比例進(jìn)行復(fù)配,發(fā)現(xiàn)1∶1∶2的比率能有效促進(jìn)山羊乳蛋白水解且具有較強(qiáng)的抗氧化活力。

        2.2.2 接種量對發(fā)酵羊乳產(chǎn)抗氧化肽的影響

        圖3 乳酸菌接種量對發(fā)酵山羊乳產(chǎn)抗氧化肽的影響

        如圖3所示:隨著接種量的增加,水解度呈現(xiàn)先增大后減小的趨勢,在接種量為4%處達(dá)到最大值。隨著接種量的繼續(xù)增加,水解度反而降低,可能是由于山羊乳中的蛋白難以滿足過多菌體生長需求,產(chǎn)酸過多抑制了蛋白的水解;或菌體釋放的蛋白酶不利于在強(qiáng)酸條件下作用,活性被抑制。

        2.2.3 發(fā)酵時間對羊乳產(chǎn)抗氧化肽的影響

        圖4 發(fā)酵時間對山羊乳產(chǎn)抗氧化肽的影響

        由圖4可以得出:隨著發(fā)酵時間的延長,山羊乳發(fā)酵在不過進(jìn)行,水解度呈上升趨勢,但在發(fā)酵9h后,山羊發(fā)酵乳水解度趨于平緩;可能是由于隨著發(fā)酵乳發(fā)酵時間延長,羊乳中營養(yǎng)物質(zhì)不足,抑制了乳酸菌的生長。

        2.2.4 發(fā)酵羊乳后熟時間對產(chǎn)抗氧化肽的影響

        圖5 后熟時間對山羊乳產(chǎn)抗氧化肽的影響

        由圖5可知:隨著后熟時間的延長,水解度吳上升趨勢,山羊發(fā)酵乳的水解度緩慢增加;可能因?yàn)殡S著發(fā)酵乳,發(fā)酵進(jìn)行,羊乳中營養(yǎng)物質(zhì)不足,為保證自身生產(chǎn)需要,乳酸菌菌體內(nèi)的蛋白酶將多肽講一步水解,從而表現(xiàn)出水解度緩慢上升。

        2.3 響應(yīng)面優(yōu)化

        2.3.1 響應(yīng)試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果

        根據(jù)單因素試驗(yàn)結(jié)果,建立Box-Behnken Design中心組合設(shè)計(jì)試驗(yàn)?zāi)P停ㄟ^擬合二次方程計(jì)算最優(yōu)工藝組合以及發(fā)酵山羊乳最大理論水解度。選擇接種量(X1)、后熟時間(X2)、發(fā)酵時間(X3)進(jìn)行三因素三水平響應(yīng)面實(shí)驗(yàn),試驗(yàn)結(jié)果見表3。

        2.3.2 模型建立及顯著性檢驗(yàn)

        利用Design-Expert8.0.6軟件對表3進(jìn)行多元回歸擬合,得到山羊發(fā)酵乳水解度與菌種添加量/%(X1)、后熟時間(X2)、發(fā)酵時間(X3)的二次方程模型為:Y=8.29+0.82X1-0.069X2+0.80X3-0.33X1X2+0.57X1X3+0.092X2X3-1.10X12-0.81X22-0.84X32回歸模型的方差分析結(jié)果見表4。

        表3 響應(yīng)面分析方案及結(jié)果

        表4 水解度回歸模型方差分析表

        由表3方差分析可知:水解度回歸模型顯著性檢驗(yàn)P=0.0001<0.01,說明二次多元回歸模型極顯著;水解度回歸模型失擬性檢驗(yàn)P=0.1305>0.05,可以認(rèn)為所選山羊發(fā)酵乳水解度二次回歸模型與實(shí)際試驗(yàn)擬合性充分模型失擬不顯著。山羊發(fā)酵乳水解度回歸診斷表明,決定系數(shù)R2=98.32%,信噪比Adeq precisior=3.16,這表明方程的擬合度和可信度均很高,可用于山羊發(fā)酵乳水解度評價(jià)。離散系數(shù)C.V(Y的變異系數(shù))表示實(shí)驗(yàn)本身的精確度,C.V值越小,實(shí)驗(yàn)的可靠性越高,水解度擬合C.V值為3.16%。綜上所述,回歸模型擬合程度良好,試驗(yàn)誤差小,能夠準(zhǔn)確的分析和預(yù)測山羊發(fā)酵乳水解度,說明實(shí)驗(yàn)操作可信度高,具有一定的實(shí)踐指導(dǎo)意義。由回歸系數(shù)顯著性表明,在所取因素水平范圍內(nèi),各因素對山羊乳水解度影響的順序?yàn)椋航臃N量>發(fā)酵時間>后熟時間。

        2.3.3 響應(yīng)面優(yōu)化

        通過觀察圖6圖7中響應(yīng)面的變化情況和等高線的稀疏程度可直觀地反映山羊發(fā)酵乳菌種添加量/%(X1)、后熟時間(X2)、發(fā)酵時間(X3)交互作用對水解度的影響,當(dāng)?shù)雀呔€呈圓形時表示兩因素交互作用不顯著,而呈橢圓形或馬鞍形時則表示兩因素交互作用顯著。

        圖6 菌種添加量/%(X 1)、后熟時間(X 2)對水解度的影響

        圖7 后熟時間(X2)、發(fā)酵時間(X3)時間對水解度的影響

        圖6圖7為有二次回歸方程擬合得到的響應(yīng)值Y的等高線及三維曲面圖,是回歸方程的形象描述。由圖可知,X1與X2,X1與X3之間交互作用顯著(P<0.05),對山羊乳水解度影響較大;由圖6可知,山羊發(fā)酵乳隨后熟時間和菌種添加量的增加而提高后趨近于平緩,后熟時間及添加量為12 h及4%時,山羊發(fā)酵乳趨于平緩,與單因素和方差分析結(jié)果相符。由圖7可知,發(fā)酵時間及添加量變化曲面比較陡峭,隨著發(fā)酵時間及添加量的增加水解度的呈先增長后下降的趨勢;交互作用顯著與方差分析結(jié)果一致。

        2.3.4 最佳條件的確定和回歸模型的驗(yàn)證

        回歸模型通過響應(yīng)面法得到最優(yōu)山羊發(fā)酵乳產(chǎn)肽工藝條件為菌種添加量4.31%,后熟時間10.99 h,發(fā)酵時間9.54 h??紤]實(shí)際操作情況與設(shè)備參數(shù)狀況,確定山羊發(fā)酵乳產(chǎn)肽工藝條件為:菌種添加量4%,后熟時間11 h,發(fā)酵時間9.5 h,山羊發(fā)酵乳水解度預(yù)測值8.69%。在上述最佳條件下進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn),得到山羊發(fā)酵乳水解度平均值9.43%,與理論值接近。

        2.4 發(fā)酵羊乳單因素試驗(yàn)

        以感官評分為指標(biāo),考察糖添加量、淡奶油添加量、發(fā)酵溫度個因素對其影響,確定二次通用旋轉(zhuǎn)最佳因素水平,實(shí)驗(yàn)結(jié)果見圖8-圖10。

        圖8-圖10為發(fā)酵羊乳不同糖的添加量、淡奶油添加量、發(fā)酵溫度對感官評分影響的單因素試驗(yàn)結(jié)果。由圖8可知:隨著糖的添加量增加,感官評分值呈現(xiàn)先增大后減小的趨勢,糖的添加量為8%時山羊發(fā)酵乳感官評分值最高為8%;由圖9可知:淡奶油添加量增加,感官評分只增加,但超過1.5時山羊發(fā)酵乳的獨(dú)特膻味被掩蓋,失去了山羊發(fā)酵乳原有風(fēng)味,故選取最適添加量為1.5%;由圖10可知:隨著發(fā)酵山羊乳溫度的增加,感官評分值呈現(xiàn)先增大后減小的趨勢,在40℃時,山羊綜合感官評分值最優(yōu),但超過40℃時,山羊發(fā)酵乳不同程度的出現(xiàn)乳清析出,影響感官評分指標(biāo),故選取最適溫度為40℃。

        2.5 發(fā)酵羊乳二次通用旋轉(zhuǎn)試驗(yàn)

        2.5.1 二次通用旋轉(zhuǎn)試驗(yàn)方案及結(jié)果

        在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,選擇糖的添加量、淡奶油添加量(%)和發(fā)酵溫度(%)3個因素,采用二次通用旋轉(zhuǎn)試驗(yàn)設(shè)計(jì),實(shí)驗(yàn)結(jié)果見表5。

        2.5.2 數(shù)學(xué)模型的建立與檢驗(yàn)

        二次通用旋轉(zhuǎn)試驗(yàn)方案及結(jié)果見表3。利用DPS軟件對試驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行分析,得到二次回歸模型為:Y=7.92216+0.00815X1+0.35746X2+0.01724X3-0.28935X12-0.12848X22+0.04122X32+0.02375X1X2-0.21375X1X3-0.12125X2X3

        2.5.3 變量輪換直接尋優(yōu)

        根據(jù)已建立的數(shù)學(xué)模型,在-1.682≤X i≤1.682(i=1,2,3)范圍內(nèi),每個因素取5個水平(±1.682,±1,0),對53=125個方案進(jìn)行統(tǒng)計(jì)尋優(yōu),在試驗(yàn)范圍內(nèi)感官評分最高值為8.59,此時各因素取值為:X1=-1,X2=1.682,X3=1.682,對應(yīng)著糖的添加量7.5%,淡奶油添加量2.34%,發(fā)酵溫度43℃。

        2.5.4 頻率分析及統(tǒng)計(jì)尋優(yōu)

        圖8 糖的添加量對感官評分的影響

        圖9 淡奶油添加量對感官評分的影響

        圖10 發(fā)酵油溫度對感官評分的影響

        對不同設(shè)計(jì)水平下的組合進(jìn)行模擬試驗(yàn),以均值7.66為臨界值,獲得大于臨界值的方案49個,各變量取值的頻率分布見表7。

        由表7可以看出,在95%的置信區(qū)間感官評分值大于7.66的優(yōu)化方案為:糖的添加量7.3505%~7.6495%,淡奶油添加量為1.057%~1.943%,發(fā)酵溫度為39.3℃~40.7℃。為了貼近實(shí)際的工業(yè)化生產(chǎn),可將優(yōu)化方案定為:糖的添加量7.5%,淡奶油添加量為1.5%,發(fā)酵溫度為40℃。

        2.6 發(fā)酵羊乳在模擬胃腸液中抗氧化的變化

        食物進(jìn)入口腔、食管、胃、十二指腸、小腸、大腸時,胃是主要的消化場所,把大分子物質(zhì)(主要是糖與蛋白質(zhì))分解為小分子;十二指腸也是消化的場所,主要是消化脂類;小腸是最主要的吸收場所,大部分營養(yǎng)都在小腸吸收;大腸是貯存食物殘?jiān)膱鏊?,同時吸收少量水分。經(jīng)人工胃液、人工腸液消化后,發(fā)酵羊乳中抗氧化活性變化如表8所示。

        表5 二次通用旋轉(zhuǎn)試驗(yàn)方案及結(jié)果

        表6 回歸方程方差分析表

        表7 優(yōu)化提取方案中X i取值頻率分布表

        由表8可見,山羊發(fā)酵乳中含有抗氧化活性肽,且具有較強(qiáng)的抗氧化能力;經(jīng)模擬胃液和腸液消化試驗(yàn)后,抗氧化活性較消化前有所下降,但下降幅度較小,消化后抗氧化活性依然存在,可見混合發(fā)酵菌株產(chǎn)生的活性肽經(jīng)胃胰蛋白酶水解后,生成的產(chǎn)物仍具有一定的抗氧化活性。

        表8 體外模擬胃腸道前后山羊乳多肽抗氧化活性變化

        3 結(jié) 論

        傳統(tǒng)發(fā)酵菌株保加利亞乳桿菌及與副干酪乳桿菌按1∶1∶2的菌株比例復(fù)配,山羊發(fā)酵乳水解度較高、ABTS自由基清除活性較強(qiáng);通過響應(yīng)面及二次通用旋轉(zhuǎn)旋轉(zhuǎn)試驗(yàn)優(yōu)化發(fā)酵羊乳的最適菌種添加量4%、蔗糖7.5%、淡奶油1.5%、40℃發(fā)酵9.5 h、后熟時間11 h。產(chǎn)品色香味俱佳、無明顯羊奶膻味,還原能力、總抗氧化、DPPH自由基清除等抗氧化活性較強(qiáng)。發(fā)酵羊乳的研究,為特色乳制品的開發(fā)提供參考,有利于促進(jìn)羊乳產(chǎn)業(yè)的發(fā)展。

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