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        基于轉(zhuǎn)錄組學(xué)分析預(yù)測潛在的γ-和β-珠蛋白基因表達(dá)調(diào)控因子

        2018-11-14 02:49:10王南宇崔申申張祝琴劉德培
        基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)與臨床 2018年11期
        關(guān)鍵詞:差異

        王南宇,楊 科,崔申申,張祝琴,劉德培

        (中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院 北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院 基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所 醫(yī)學(xué)分子生物學(xué)國家重點實驗室,北京 100005)

        人的β-珠蛋白基因簇隨著個體發(fā)育進(jìn)程,依次表達(dá)ε-珠蛋白、γ-珠蛋白基因、β-珠蛋白基因,該珠蛋白基因表達(dá)轉(zhuǎn)換過程受到嚴(yán)格的時空特異性調(diào)控,是一個復(fù)雜精細(xì)的真核基因表達(dá)調(diào)控事件[1]。由于成年期β-珠蛋白基因編碼結(jié)構(gòu)的突變或表達(dá)量的減少導(dǎo)致的β-血紅蛋白病是世界上最大的單基因遺傳病,而在成年期開啟胎兒期表達(dá)的γ-珠蛋白基因,可以治療β-血紅蛋白病[2]。因此,研究γ-向β-珠蛋白基因的表達(dá)轉(zhuǎn)換,不僅在基因表達(dá)調(diào)控理論上還是臨床應(yīng)用上都具有很大的意義。

        但是參與該過程的重要調(diào)控因子KLF1和BCL11A的敲除并不能在成年期有效開啟γ-珠蛋白基因的表達(dá),提示更多的調(diào)控因子參與了γ-向β-珠蛋白基因的表達(dá)轉(zhuǎn)換[3]。本研究通過對不同組織來源細(xì)胞間γ-和β-珠蛋白基因差異表達(dá)的兩組RNA-seq數(shù)據(jù)進(jìn)行分析,預(yù)測潛在的γ-和β-珠蛋白基因表達(dá)調(diào)控因子,以期對γ-和β-珠蛋白基因表達(dá)調(diào)控的研究提供一定的指導(dǎo)。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        用不同組織來源細(xì)胞間γ-和β-珠蛋白基因差異表達(dá)的兩組RNA-seq數(shù)據(jù)(美國國立生物信息中心的基因表達(dá)綜合數(shù)據(jù)庫GEO,http://www.ncbi.nlm.nih.gob/geo/),其一組的登錄號為GSE102201,是將人類胎肝和成年外周血中的CD34+造血干祖細(xì)胞(HSPC)進(jìn)行體外誘導(dǎo)紅系分化,在分化第11天和第14天分別收樣并用Illumina NextSeq 500進(jìn)行RNA-seq[4];另一組為GSE107218、GSE53983,是對人類臍帶血和外周血來源的CD34+HSPC分別進(jìn)行體外誘導(dǎo)紅系分化,并分離紅系分化各個時期如原始紅細(xì)胞(proerythroblast,PRO)、早期早幼紅細(xì)胞(early basophilic erythroblast,EBASO)、晚期早幼紅細(xì)胞(late basophilic erythroblast,LBASO)、中幼紅細(xì)胞(polychromatophilic erythroblast,POLY)、晚幼紅細(xì)胞(orthochromatic erythroblast,ORTHO),用Illumina HiSeq 2500對其進(jìn)行RNA-seq[5-6]。

        1.2 方法

        1.2.1 RNA-seq數(shù)據(jù)處理與差異表達(dá)基因的分析:用fastq-dump命令下載兩組RNA-seq數(shù)據(jù),并用FastQC和Trimmomatic-0.36分別對數(shù)據(jù)進(jìn)行質(zhì)量檢測和去除低質(zhì)量和測序接頭序列后用HISAT2和featureCounts分別將序列比對至人類參考基因組上并對應(yīng)到具體的基因得到相應(yīng)的counts值,完成對該數(shù)據(jù)的定量分析。接著用DESeq2對相同分化時期不同組織來源細(xì)胞間差異表達(dá)基因進(jìn)行分析,篩選P<0.05且│log2 FoldChange│≥1的基因為差異表達(dá)基因。

        1.2.2 差異表達(dá)基因的IPA分析:IPA(Ingenuity Pathway Analysis)是基于龐大的Ingenuity Knowledge Base數(shù)據(jù)庫,可搜索基因、蛋白、疾病與經(jīng)典通路等相關(guān)信息,并預(yù)測分子集群參與的經(jīng)典通路、生物過程、上游調(diào)控子等信息[7]。本研究利用IPA對相應(yīng)差異表達(dá)基因進(jìn)行上游調(diào)控因子的預(yù)測。

        1.2.3 差異基因編碼蛋白以及上游調(diào)控因子的相互作用分析及關(guān)鍵基因的預(yù)測:將差異表達(dá)基因編碼蛋白以及其預(yù)測出的上游調(diào)控因子一起導(dǎo)入STRING數(shù)據(jù)庫,分析各因子間的相互作用,進(jìn)而用Cytoscape中的CentiScape插件預(yù)測其調(diào)控關(guān)鍵基因。

        2 結(jié)果

        2.1 差異表達(dá)基因的篩選

        從GSE102201數(shù)據(jù)中篩選出分化第11天外周血與胎肝來源細(xì)胞間差異表達(dá)基因為1 857個,分化第14天的差異表達(dá)基因為1 530個,共同的差異表達(dá)基因為635個;從GSE107218、GSE53983數(shù)據(jù)庫中篩選出原始紅細(xì)胞時期外周血與臍帶血來源細(xì)胞間差異表達(dá)基因為578個,早期早幼紅細(xì)胞時期為610個,晚期早幼紅細(xì)胞時期為358個,中幼紅細(xì)胞時期為1 987個,晚幼紅細(xì)胞時期為1 812個,共同的差異表達(dá)基因為173個(表1)。

        2.2 差異表達(dá)基因的IPA分析

        不同的組織來源決定了γ-和β-珠蛋白基因的差異表達(dá)模式,因此差異表達(dá)基因的上游調(diào)控因子也可能是潛在的調(diào)控因子。通過IPA對外周血與胎肝來源間不同分化時期共有的差異表達(dá)基因進(jìn)行上游調(diào)控因子的預(yù)測,共預(yù)測出111個;對外周血與臍帶血來源間不同分化時期共有的差異表達(dá)基因進(jìn)行上游調(diào)控因子的預(yù)測,共預(yù)測出30個,如表2所示前20個。

        2.3 γ-和β-珠蛋白基因表達(dá)調(diào)控因子的預(yù)測

        過STRING數(shù)據(jù)庫和Cytoscape對外周血與胎肝來源間不同分化時期共有的635個差異表達(dá)基因及其預(yù)測出的111個上游調(diào)控因子進(jìn)行蛋白質(zhì)間相互作用分析和展示(圖1),并利用Centiscape計算蛋白質(zhì)間相互作用的強(qiáng)度, 按照Degree unDir大小進(jìn)行排序,預(yù)測出148個潛在的調(diào)控因子(其Degree unDir大于BCL11A); 對外周血與臍帶血來源間不同分化時期共有的173個差異表達(dá)基因及其預(yù)測出的30個上游調(diào)控因子進(jìn)行同樣的分析,共預(yù)測出41個潛在的調(diào)控因子。其中,共同預(yù)測出潛在的調(diào)控因子有14個,為MAPK1、TNF、IFNG、MPO、LGALS3、CEBPA、BRD2、COL18A1、CA2、SELPLG、COL4A5、THBD、MAPKAPK3、CAMK2D。

        圖1 外周血與胎肝來源間差異表達(dá)基因及上游調(diào)控因子間的蛋白質(zhì)間相互作用網(wǎng)絡(luò)圖Fig 1 Protein-protein interaction network of differentially expressed genes and upstream regulators derived from peripheral blood and fetal liver

        3 討論

        γ-和β-珠蛋白基因表達(dá)受眾多調(diào)控因子的調(diào)控,大量有關(guān)γ-和β-珠蛋白差異表達(dá)組織轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)的出現(xiàn),使利用生物信息學(xué)手段挖掘更多參與珠蛋白表達(dá)的調(diào)控因子成為可能。本研究通過對珠蛋白基因差異表達(dá)相關(guān)的RNA-seq結(jié)果進(jìn)行分析,利用相應(yīng)的共有差異表達(dá)基因及其預(yù)測的上游調(diào)控因子進(jìn)行蛋白質(zhì)間相互作用網(wǎng)絡(luò)的構(gòu)建,其中包括BCL11A、NF-E2、GATA1、GATA2、YY1等已知的γ-和β-珠蛋白基因表達(dá)調(diào)控因子,并預(yù)測到14個潛在的調(diào)控因子。其中預(yù)測出的前3個潛在因子MAPK1、TNF、IFNG均與β類珠蛋白基因的表達(dá)有關(guān),如MAPK1參與到了一些小分子藥物通過表觀修飾改變影響γ-珠蛋白基因表達(dá)的過程中[8],除此之外,在紅系分化過程當(dāng)中,G蛋白偶聯(lián)受體也可通過JUN和MAPK1信號通路激活γ-珠蛋白基因的表達(dá)[9-10];IFNG可通過NF-κB/Jun信號通路抑制活化素A/NF-E2對紅系基因包括ζ-珠蛋白基因的表達(dá)激活作用[11],也發(fā)現(xiàn)IFNG在臍帶血、成年外周血來源的紅細(xì)胞中均可影響珠蛋白基因的表達(dá),而且在臍帶血、成年外周血來源的紅細(xì)胞中均可影響珠蛋白基因的表達(dá),而且在鐮刀型細(xì)胞貧血癥和地中海貧血患者來源的紅系祖細(xì)胞中IFNG可抑制γ-珠蛋白基因的表達(dá)[12], TNF的單克隆抗體在治療強(qiáng)直性脊柱炎(ankylosing spondylitis, AS)時也可明顯提升血紅蛋白的表達(dá)水平[13]。而預(yù)測出的潛在的γ-和β-珠蛋白基因表達(dá)調(diào)控因子的準(zhǔn)確性需要后續(xù)的分子生物學(xué)實驗進(jìn)行驗證。

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