衛(wèi)延明,閔朕,陳子龍,杜思迪,秦亞紅
(陜西省渭南市食品藥品檢驗所,陜西 渭南 714000)
倍芪腹瀉貼是一種含藥材原粉的中藥制劑,其主要成分為五倍子、黃芪、肉桂和木香,具有收澀斂肺、補氣健脾、益腎助陽的功效,主要用于脾肺氣虛、脾腎陽虛所致的腹瀉,自汗,盜汗及遺尿的輔助治療。倍芪腹瀉貼處方中黃芪的主要有效成分為黃芪多糖和黃芪皂苷,其中黃芪皂苷對金黃色葡萄球菌、枯草芽孢桿菌、銅綠假單胞菌都有明顯的抑菌作用。本文按照《中國藥典》2015年版四部﹝通則1105和通則1106﹞的具體要求[1],建立倍芪腹瀉貼的微生物限度檢查方法。
1.1儀器MJ-Ⅱ型真菌培養(yǎng)箱(上海一恒科技有限公司),SPX-150型生化培養(yǎng)箱(上海金慧科電子有限公司),SPX-250B-Z型生化培養(yǎng)箱(上海博迅實業(yè)有限公司醫(yī)療設備廠),HTY-2000集菌儀(杭州高得醫(yī)療器械有限公司)。
1.2樣品及試劑倍芪腹瀉貼(陜西海普藥業(yè)有限公司生產(chǎn),批號20160901,規(guī)格:每貼重1.5 g);培養(yǎng)基:胰酪大豆胨液體培養(yǎng)基、胰酪大豆胨瓊脂培養(yǎng)基、沙氏葡萄糖液體培養(yǎng)基、沙氏葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基、麥康凱液體培養(yǎng)基、麥康凱瓊脂培養(yǎng)基、pH7.0無菌氯化鈉蛋白胨緩沖液、蛋白胨;氯化鈉和吐溫80。沖洗液:0.1%無菌蛋白胨水溶液。
1.3試驗菌種銅綠假單胞菌[CMCC(B)10104];金黃色葡萄球菌[CMCC(B)26003];枯草芽孢桿菌[CMCC(B)63501];白色念珠菌[CMCC(F)98001];黑曲霉[CMCC(F)98003]均由青島高科園海博生物技術(shù)有限公司提供。
菌液制備:分別取金黃色葡萄球菌、枯草芽孢桿菌、銅綠假單胞菌的瓷珠1粒至10 mL的胰酪大豆胨液體培養(yǎng)基中,35 ℃培養(yǎng)24 h。將金黃色葡萄球菌和銅綠假單胞菌的培養(yǎng)物用0.9%無菌氯化鈉溶液制備成適宜濃度的菌懸液;再將枯草芽孢桿菌的培養(yǎng)物接種至胰酪大豆胨瓊脂斜面培養(yǎng)基上,35 ℃培養(yǎng)7 d,然后加入5 mL 0.9%無菌氯化鈉溶液進行適當振搖,并于65 ℃水浴中加熱30 min,取該培養(yǎng)物1 mL,用0.9%無菌氯化鈉溶液制備成適宜濃度的菌懸液。
取白色念珠菌的瓷珠1粒至10 mL的沙氏葡萄糖液體培養(yǎng)基中,25 ℃培養(yǎng)48 h,用0.9%無菌氯化鈉溶液制備成適宜濃度的菌懸液;取黑曲霉的瓷珠1粒至10 mL的沙氏葡萄糖液體培養(yǎng)基中,25 ℃培養(yǎng)5 d。將上述黑曲霉培養(yǎng)物接種至沙氏葡萄糖瓊脂斜面培養(yǎng)基上,25 ℃培養(yǎng)7 d,再加入5 mL含0.05%吐溫80的0.9%無菌氯化鈉溶液進行洗脫,吸取孢子懸液1 mL,用含0.05%吐溫80的0.9%無菌氯化鈉溶液制備成適宜濃度的菌懸液[2-7]。
1.4供試品溶液的制備取供試品6~7貼(10 g),去掉防粘層,將粘貼面朝上放置在無菌玻璃器皿上,在粘貼面上覆蓋一層適宜的無菌紗布,并用滅過菌的剪刀將其剪成小塊狀,放入含5%吐溫80的pH7.0無菌氯化鈉-蛋白胨緩沖液100 mL中,強力振蕩使其溶解[2],然后用無菌紗布以無菌方式將其過濾到一個無菌玻璃容器中,制備成1∶10的供試液A;取1∶10供試液40 mL至上述稀釋液40 mL中,混勻,制備成1∶20供試液B;取1∶10供試液20 mL至上述稀釋液80 mL中,混勻,制備成1∶50供試液C;取1∶10供試液10 mL至上述稀釋液90 mL中,混勻,制備成1∶100供試液D。
2.1計數(shù)方法適用性試驗
2.1.1平皿法(1∶10、1∶20、1∶50、1∶100) 取相應稀釋級別的供試液(A、B、C、D)9.9 mL和0.1 mL的試驗菌液,混勻,取混合液1 mL置平皿中,立即傾注15~20 mL培養(yǎng)基,待凝固后置規(guī)定溫度培養(yǎng),需氧菌培養(yǎng)3 d,真菌和酵母菌各培養(yǎng)5 d,記錄菌落數(shù),作為試驗組。其中,5種需氧菌(枯草芽孢桿菌、金黃色葡萄球菌、銅綠假單胞菌、白色念珠菌、黑曲霉)和2種真菌和酵母菌(白色念珠菌、黑曲霉)共計7個試驗組,每個試驗組平行制備兩個平皿;同法測定相應的試驗菌菌落數(shù),作為菌液組;測定供試品的本底菌落數(shù),作為供試品對照組。按照公式計算回收比值:回收比值=(試驗組平均菌落數(shù)-供試品對照組平均菌落數(shù))/菌液組平均菌落數(shù)),結(jié)果見表1。
2.1.2稀釋法(1∶100)+薄膜過濾法(方法1:300 mL,方法2:500 mL) 取1∶100 供試液10 mL,采用薄膜過濾法(在第1次沖洗液中加入供試液,在最后一次沖洗液中加入小于100 cfu的試驗菌0.1 mL),用沖洗液(方法1:300 mL,方法2:500 mL)沖洗,每次100 mL,在最后一次沖洗液中加入小于100 cfu的試驗菌,濾干,取出濾膜貼于培養(yǎng)基平板上,作為試驗組并測定其菌落數(shù);同法測定供試品本底菌落數(shù),作為供試品對照組;菌液組同平皿法。最后按照平皿法公式計算回收比值,結(jié)果見表1。
2.2控制菌(銅綠假單胞菌、金黃色葡萄球菌)檢查方法適用性試驗
2.2.1試驗組 (1)常規(guī)法:取1∶10供試液10 mL和不大于100 cfu的試驗菌接種至100 mL的胰酪大豆胨液體培養(yǎng)基中,依據(jù)各試驗菌檢查項下的方法進行試驗,結(jié)果見表2。(2)培養(yǎng)基稀釋法(200 mL、400 mL) 取1∶10供試液和不大于100cfu的試驗菌分別接種至200 mL和400 mL的胰酪大豆胨液體培養(yǎng)基中,依據(jù)各試驗菌檢查項下的方法進行試驗,結(jié)果見表2。(3)薄膜過濾法(方法1:沖洗300 mL,方法2:沖洗500 mL)。取1∶20供試液20 mL,薄膜過濾,用沖洗液(方法1:300 mL,方法2:500 mL)沖洗,每次100 mL,在第一次沖洗液中加入供試液,在最后一次沖洗液中加入不大于100 cfu的試驗菌,濾干,轉(zhuǎn)移濾膜至100 mL的胰酪大豆胨液體培養(yǎng)基中,依據(jù)各試驗菌檢查項下的方法進行試驗,結(jié)果見表2。
表1 微生物限度計數(shù)方法適用性試驗回收比值結(jié)果
注:-表示未進行試驗;x代表需氧菌,m代表真菌和酵母菌
2.2.2陽性對照組 取不大于100 cfu的試驗菌依據(jù)各方法項下的試驗組方法進行試驗,結(jié)果見表2。
2.2.3陰性對照組 取稀釋液替代供試液,依據(jù)各試驗菌檢查項下的方法進行試驗,結(jié)果見表2。
表2 控制菌檢查方法適用性試驗結(jié)果
注:“﹢”代表檢出,“-”代表未檢出
3.1計數(shù)方法試驗結(jié)果由表1可見,倍芪腹瀉貼對三種細菌有很強的抑菌作用,平皿法和薄膜過濾法方法1都不適用于需氧菌總數(shù)的測定,應采用稀釋法(1∶100)+薄膜過濾法(500毫升/膜)進行需氧菌總數(shù)的測定;可采用平皿法(1∶10)進行真菌和酵母菌總數(shù)的測定[8-9]。
3.2控制菌檢查方法試驗結(jié)果常規(guī)法、培養(yǎng)基稀釋法(200 mL、400 mL)和薄膜過濾法方法1的試驗組均未檢出試驗菌(銅綠假單胞菌、金黃色葡萄球菌),因此不可用于控制菌銅綠假單胞菌和金黃色葡萄球菌的檢查。薄膜過濾法2(1∶20,沖洗500 mL)的試驗組均檢出試驗菌(銅綠假單胞菌、金黃色葡萄球菌),因此可用于控制菌銅綠假單胞菌和金黃色葡萄球菌的檢查。見表2。
4.1供試液的制備問題普通貼劑藥層薄,面積較大,而且藥層下面都粘連著一層塑料薄膜,不易進行有效成分的重量稱量。因此藥典規(guī)定貼劑在進行微生物限度檢查時,供試液的制備應取100 cm2至100 mL的稀釋液中進行振蕩溶解,而不是按照普通方法稱取10 g至100 mL的稀釋液中進行制備。但倍芪腹瀉貼呈圓柱形,整體外觀厚而小,而且操作起來相當不便,并且制備出來的溶液過于黏稠,根本無法吸取[10-11]。鑒于此,筆者在進行方法適用性試驗前,先對該貼劑的標示規(guī)格進行了復核,最終確定該藥的實際規(guī)格約為1.5 g,也就是說制備1∶10的供試液,供試品的稱樣量為6~7貼,這大大降低了溶液的黏稠度,為試驗的順利進行打下了良好的基礎。
4.2枯草芽孢桿菌菌懸液的制備問題枯草芽孢桿菌是需氧芽孢桿菌屬,芽孢是其賴以長期存活的主要形式。藥典方法培養(yǎng)時間短,芽孢含量較少,菌懸液很不穩(wěn)定。因此,菌液計數(shù)與試驗計數(shù)結(jié)果差別很大,這大大增加了實驗室人員的工作量。枯草芽孢桿菌的生活周期包括繁殖期、孢子囊期和芽孢期,要形成芽孢,一般需要在斜面上培養(yǎng)7 d左右。因此,筆者首先將枯草芽孢桿菌的培養(yǎng)物接種至胰酪大豆胨瓊脂斜面上培養(yǎng)7 d,然后用稀釋液沖下菌苔,并將其放入65 ℃水浴加熱30 min,這樣做的目的是使該菌體菌懸液徹底變成芽孢菌懸液,最后再進行稀釋計數(shù),而且枯草芽孢桿菌的芽孢菌懸液的氯化鈉稀釋液在2~8 ℃可保存3個月左右,這不僅減輕了工作量,也提高了工作效率,節(jié)約了成本[12-15]。
4.3薄膜過濾法中供試液的濃度選擇問題
4.3.1計數(shù)試驗 2015版藥典規(guī)定所加菌液的體積應不超過供試液體積的1%,這主要是為了減小誤差,降低菌液體積對供試液的稀釋作用,從而提高檢測結(jié)果的準確度。而我們一般使用的吸管的最小刻度為0.1 mL,也就是說菌液的最小加入體積為0.1 mL,按1%的比例進行換算,那么供試液的最少加入量應為10 mL。因此,選擇低稀釋級的供試液進行薄膜過濾顯然行不通(正式試驗之前進行了預試驗),考慮到倍芪腹瀉貼的抑菌性又太強,綜合上述因素我們最終選擇1∶100的供試液進行薄膜過濾。
4.3.2控制菌檢查試驗 倍芪腹瀉貼1∶10的供試液由于黏稠度很大,直接取10 mL進行控制菌檢查中的薄膜過濾,很難過濾下去,影響試驗的順利進行。按照過去的方法,應該采用離心沉淀法去消除這個影響,但中國藥典2015版微生物限度檢查已不允許使用離心沉淀法制備供試液。因此,我們對供試液首先進行了1∶20的稀釋,降低了供試液的黏稠度,然后進行過濾,效果很好。另外,控制菌檢查中供試液的加入量是取相當于1 g供試品的供試液量,所以1∶20供試液的過濾量應該是20 mL,而不是10 mL[16-17]。
本研究在用薄膜過濾法進行微生物限度的方法適用性試驗中,由于藥品本身黏稠度過高,以1∶10的供試液直接進行沖洗,出現(xiàn)堵膜現(xiàn)象,影響了試驗的順利進行。因此,針對供試液黏稠度過高的藥品,在進行薄膜過濾法的沖洗試驗中,應首先對其進行適度稀釋,然后再進行沖洗試驗。