吳蕾蕾,徐 亞,劉 紅
(南通大學(xué)附屬醫(yī)院血液內(nèi)科,江蘇226001)
慢性髓細(xì)胞白血?。–ML)是克隆性骨髓增生性疾病,其特征在于第9號(hào)和第22號(hào)染色體長(zhǎng)臂斷裂、平行交叉易位,產(chǎn)生Ph染色體,導(dǎo)致具有酪氨酸激酶活性、促進(jìn)髓系細(xì)胞增殖失控的BCR-ABL融合蛋白形成[1]。酪氨酸激酶抑制劑(TKIs)被認(rèn)為是CML治療的金標(biāo)準(zhǔn),其中甲磺酸伊馬替尼(IM)可使80%初發(fā)CML患者獲得完全細(xì)胞遺傳學(xué)和血液學(xué)反應(yīng)。然而,隨著TKIs的廣泛應(yīng)用,耐藥問(wèn)題越來(lái)越嚴(yán)重,阻礙了療效,使得加速期或急變期患者增加,20%~25%IM治療患者中可觀察到IM耐藥和疾病進(jìn)行性進(jìn)展的分子學(xué)證據(jù)[2-3]。
蛋白質(zhì)泛素化在各種細(xì)胞進(jìn)程中起重要作用。蛋白質(zhì)被E2-E3泛素連接酶復(fù)合物泛素化,并被靶蛋白酶體降解,或其活性被特異性地改變。泛素化還影響調(diào)節(jié)許多控制造血功能的重要蛋白質(zhì)的活性。Triad1,也稱為ARIH2,是一種泛素連接酶,在粒細(xì)胞和單核細(xì)胞分化過(guò)程中高度表達(dá)[4-5]。Triad1及其結(jié)合蛋白參與骨髓集落形成和細(xì)胞周期調(diào)節(jié)。K48或K63連接的泛素鏈與Triad1以及Ubc7或Ubc13(E2連接酶)的相互作用有關(guān)[6-7]。EGF-R和GHR在上皮細(xì)胞中的溶酶體降解也涉及Triad1[8]。此外,Triad1促進(jìn)MDM2在各種細(xì)胞類型中蛋白酶體降解,可以抑制MDM2降解p53[9]。Triad1位于染色體3p21上,曾有AML和CML中該區(qū)域缺失的報(bào)道[10-11]。還有研究表明,Triad1在p53-MDM2軸上起作用,并且可作為一種新的調(diào)節(jié)因子[12]。
研究表明,Triad1功能與許多癌癥如AML和APL相關(guān),但在CML以及CML耐藥中的作用尚未闡明。本研究以慢性髓細(xì)胞白血病細(xì)胞株K562為研究對(duì)象,發(fā)現(xiàn)Triad1可以抑制K562細(xì)胞增殖,在耐藥K562細(xì)胞中Triad1表達(dá)減少,并探討了相關(guān)機(jī)制,報(bào)告如下。
1.1 伊馬替尼耐藥細(xì)胞K562R的建立 將K562細(xì)胞從0.05 μmol/L IM初始濃度開(kāi)始培養(yǎng),然后每周以2倍增加藥物濃度,使終濃度達(dá)到3.2 μmol/L。為保持選擇壓力,維持抗性細(xì)胞在1 μmol/L IM下培養(yǎng),全程約需6個(gè)月。以不同濃度IM分別處理K562細(xì)胞和K562細(xì)胞24h,CCK8檢測(cè)IC50值,評(píng)估對(duì)細(xì)胞的毒性作用,顯示K562與K562R細(xì)胞IC50比為85∶1,證實(shí)K562R耐藥模型構(gòu)建成功,其對(duì)IM維持較高水平耐藥性。
1.2 shRNA的制備和轉(zhuǎn)染 取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞,平鋪至6孔板,37℃培養(yǎng),至細(xì)胞密度60%~80%時(shí),取5 μL Lipo 2000與0.5 mL Opti-MEM培養(yǎng)基反應(yīng),混勻靜置 5 min。取 8~10 μL shRNA 與 0.5 mL Opti-MEM培養(yǎng)基反應(yīng),混勻靜置5 min?;旌蟬hRNA和Lipo 2000,輕輕搖勻,靜置20 min。將混合物加入孔板中,輕混勻,加基培至2 mL,孵育6h后更換成完培。培養(yǎng)48~72 h后,在2 μg/mL嘌呤霉素存在下選擇表達(dá)shRNA的穩(wěn)定克隆。每3~5天用新鮮的含有嘌呤霉素培養(yǎng)基代替培養(yǎng)物,然后挑取并繼續(xù)傳代抗性細(xì)胞。收獲細(xì)胞用于進(jìn)一步分析。
1.3 Western Blot檢測(cè) 收集細(xì)胞,冰上裂解20~30 min,置 4℃離心機(jī),12 000 r/min,20 min,取上清液,以 4∶1體積與 SDS-PAGE 蛋白上樣(5×)緩沖液混合。取適量上樣,電泳、轉(zhuǎn)膜、封閉后,cyclinE、CDK2、PCNA、caspase-3、p53、MDM2 一抗孵育,4℃過(guò)夜,搖床洗滌。室溫二抗孵育2h,洗滌后顯影液A液、B 液(1∶1)混勻,避光滴入顯影劑,孵育 1~2 min,多次曝光拍照。
1.4 細(xì)胞周期檢測(cè) 收集對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期K562細(xì)胞,預(yù)冷PBS洗滌2次,70%乙醇固定超過(guò)24h。離心后,加入 500 μL細(xì)胞周期試劑(Beyotime)充分混合,37℃避光溫育20 min,收集約10 000個(gè)細(xì)胞上流式細(xì)胞儀。
1.5 細(xì)胞凋亡檢測(cè) K562細(xì)胞用冷PBS洗滌3次,重懸于緩沖液(BioLegend,San Diego,CA,USA)中,取 100 μL 細(xì)胞懸液加入 5 μL AnnexinV-FITC混勻,再加 5 μL 碘化丙錠(PI)混勻,室溫避光 15min,再加入400 μL緩沖液后上流式細(xì)胞儀。
1.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 應(yīng)用SPSS20.0進(jìn)行數(shù)據(jù)處理分析,計(jì)量資料兩組間差異性比較采用t檢驗(yàn),P<0.05為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 Triad1通過(guò)調(diào)節(jié)細(xì)胞周期抑制K562細(xì)胞增殖為了探討Triad1和K562細(xì)胞生長(zhǎng)的關(guān)系,先將K562細(xì)胞置于無(wú)血清培養(yǎng)基進(jìn)行饑餓培養(yǎng)(S)72 h,再加入10%FBS(R),收集不同時(shí)間點(diǎn)(6 h、12 h、24 h、48 h)細(xì)胞。流式細(xì)胞儀測(cè)定顯示,與S 72 h相比,加入血清后G1期細(xì)胞比例逐漸減少,S期細(xì)胞逐漸增多,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),提示血清喂養(yǎng)使阻滯在G1期的細(xì)胞進(jìn)入S期,促進(jìn)了G1/S期的轉(zhuǎn)化。見(jiàn)圖1(見(jiàn)封二)。Westernblot分析顯示,血清再喂養(yǎng)后Triad1表達(dá)逐漸下降,同時(shí)伴隨cyclinE、CDK2、PCNA的上調(diào),提示Triad1可能在抑制K562細(xì)胞增殖中發(fā)揮作用。見(jiàn)圖2A(見(jiàn)封二)。
2.2 敲除Triad1對(duì)K562細(xì)胞增殖、凋亡的影響K562細(xì)胞用Triad1 shRNA及其各自對(duì)照轉(zhuǎn)染,并用嘌呤霉素篩選穩(wěn)定克隆。Western blot檢測(cè)顯示,與對(duì)照以及其他2種Triad1 shRNA比較,shTriad1-1對(duì)Triad1表達(dá)的干擾效果最好,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(圖 2B,見(jiàn)封二),因此選擇 shTriad1-1進(jìn)行以下實(shí)驗(yàn)。流式細(xì)胞儀檢測(cè)顯示,與對(duì)照組相比,干擾Triad1的K562細(xì)胞G1期明顯降低,S期細(xì)胞增多(圖2C,見(jiàn)封二),凋亡細(xì)胞減少(圖2D,見(jiàn)封二)。
2.3 Triad1表達(dá)與K562細(xì)胞耐藥相關(guān) Westernblot分析顯示,K562R耐藥細(xì)胞Triad1蛋白表達(dá)水平明顯減少,同時(shí)活化caspase-3和活化PARP凋亡標(biāo)志蛋白明顯減少,而MDM2蛋白表達(dá)增加。見(jiàn)圖3。推測(cè)Triad1可能通過(guò)調(diào)節(jié)p53和MDM2表達(dá),與K562細(xì)胞的耐藥相關(guān)。
圖1 K562細(xì)胞饑餓培養(yǎng)72小時(shí)以及血清喂養(yǎng)后不同時(shí)間點(diǎn)細(xì)胞周期
圖2 敲除Triad1對(duì)K562細(xì)胞增殖、凋亡的影響
圖3 K562和K562R細(xì)胞Triad1及相關(guān)蛋白檢測(cè)
TKIs的應(yīng)用極大改變了CML患者的預(yù)后,IM治療患者的10年總生存率(OS)為82%,接近正常人群。在新發(fā)CML慢性期患者中,IM治療12個(gè)月后完全血液學(xué)緩解率97%,完全細(xì)胞遺傳學(xué)緩解率63%,僅7%患者進(jìn)入加速期或者急變期??朔蘒M耐藥已成為目前主要的挑戰(zhàn),為此必須進(jìn)一步了解IM耐藥的相關(guān)分子機(jī)制。
有報(bào)道發(fā)現(xiàn)Triad1與急性白血病密切相關(guān),但是Triad1在CML中究竟發(fā)揮什么樣作用仍然未知。本研究首先探討了Triad1在K562細(xì)胞中的生物學(xué)功能及可能機(jī)制,饑餓釋放實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,Triad1在抑制K562細(xì)胞增殖中發(fā)揮作用。細(xì)胞增殖通常與細(xì)胞周期密不可分,因此進(jìn)一步探討Triad1是否是通過(guò)影響細(xì)胞周期來(lái)抑制K562細(xì)胞的增殖。流式細(xì)胞分析發(fā)現(xiàn),Triad1干擾后,K562處于G1期的細(xì)胞明顯減少,同時(shí)PCNA等蛋白表達(dá)上調(diào)。同時(shí),我們還檢測(cè)了P53以及MDM2的表達(dá),發(fā)現(xiàn)Triad1參與P53-MDM2軸。綜上所述,我們的研究提示,Triad1主要通過(guò)調(diào)節(jié)細(xì)胞周期、細(xì)胞凋亡及IM介導(dǎo)的耐藥中發(fā)揮作用。
Triad1通過(guò)調(diào)節(jié)細(xì)胞周期抑制K562增殖的具體機(jī)制及信號(hào)通路目前尚不清楚,在增殖的K562細(xì)胞中,Triad1低表達(dá)導(dǎo)致G1期細(xì)胞停滯減少。Triad1是一種E3泛素連接酶,泛素蛋白酶體系統(tǒng)與正常和惡性血細(xì)胞生成密不可分,三個(gè)酶家族發(fā)揮協(xié)同作用[13]。TRIAD1在調(diào)節(jié)骨髓祖細(xì)胞增殖、NF-κB信號(hào)傳導(dǎo)和膜運(yùn)輸中發(fā)揮重要作用[8,13-14]。p53蛋白是調(diào)節(jié)細(xì)胞生長(zhǎng)、衰老、DNA修復(fù)和存活的轉(zhuǎn)錄因子,在造血系統(tǒng)中調(diào)節(jié)正常造血干細(xì)胞的自我更新[15]。在IM耐藥細(xì)胞K562R中,在Triad1低表達(dá)的同時(shí),P53表達(dá)減少,猜測(cè)Triad1以p53依賴方式促進(jìn)細(xì)胞凋亡。
總之,Triad1可作為一種重要的白血病調(diào)控因子,在CML細(xì)胞株的增殖和IM耐藥中發(fā)揮作用,敲減Triad1可促進(jìn)細(xì)胞增殖,減少凋亡。本研究結(jié)果有助于理解Triad1在CML中的作用,并為改善CML的治療提供理論依據(jù)。
[1]Stentoft J,Pallisgaard N,Kjeldsen E,et al.Kinetics of BCRABL fusion transcript levels in chronic myeloid leukemia patients treated with STI571 measured by quantitative realtime polymerase chain reaction[J].Eur J Haematol,2001,67(5/6):302-308.
[2]Bhutra S,Lenkala D,LaCroix B,et al.Identifying and validating a combined mRNA and microRNA signature in response to imatinib treatment in a chronic myeloid leukemia cell line[J].PLoS One,2014,9(12):e115003.
[3]Agrawal M,Garg RJ,Cortes J,et al.Tyrosine kinase inhibitors:the first decade[J].Curr Hematol Malig Rep,2010,5(2):70-80.
[4]Marteijn JA,Van Der Meer LT,Van Emst L,et al.Gfi1 ubiquitination and proteasomal degradation is inhibited by the ubiquitin ligase Triad1[J].Blood,2007,110(9):3128-3135.
[5]Van Der Reijden BA,Erpelinck-Verschueren CA,L?wenberg B,et al.TRIADs:a new class of proteins with a novel cysteine-rich signature[J].Protein Sci,1999,8(7):1557-1561.
[6]Marteijn JA,Van Der Meer LT,Smit JJ,et al.The ubiquitin ligase Triad1 inhibits myelopoiesis through UbcH7 and Ubc13 interacting domains[J].Leukemia,2009,23(8):1480-1489.
[7]Pietschmann K,Buchwald M,Müller S,et al.Differential regulation of PML-RARα stability by the ubiquitin ligases SIAH1/SIAH2 and TRIAD1 [J].Int J Biochem Cell Biol,2012,44(1):132-138.
[8]Hassink G,Slotman J,Oorschot V,et al.Identification of the ubiquitin ligase Triad1 as a regulator of endosomal transport[J].Biol Open,2012,1(6):607-614.
[9]Jung JH,Lee SM,Bae S,et al.Triad 1 induces apoptosis by p53 activation[J].FEBS Lett,2010,584(8):1565-1570.
[10]Shi G,Weh HJ,Martensen S,et al.3p21 is a recurrent treatment-related breakpoint in myelodysplastic syndrome and acute myeloid leukemia[J].Cytogenet Cell Genet,1996,74(4):295-299.
[11]Johansson B,Billstr?m R,Kristoffersson U,et al.Deletion of chromosomearm 3p inhematologicmalignancies[J].Leukemia,1997,11(8):1207-1213.
[12]Bae S,Jung JH,Kim K,et al.TRIAD1 inhibits MDM2-mediated p53 ubiquitination and degradation[J].FEBS Lett,2012,586(19):3057-3063.
[13]Wang H,Bei L,Shah CA,et al.HoxA10 influences protein ubiquitination by activating transcription of ARIH2,the gene encoding Triad1[J].J Biol Chem,2011,286(19):16832-16845.
[14]Lin AE,Ebert G,Ow Y,et al.ARIH2 is essential for embryogenesis,and its hematopoietic deficiency causes lethal activation of the immune system[J].Nat Immunol,2013,14(1):27-33.
[15]Liu Y,Elf SE,Miyata Y,et al.p53 regulates hematopoietic stem cell quiescence[J].Cell Stem Cell,2009,4(1):37-48.