馬慧娟,徐 慧,李俐俐,劉 姝,賈 濤,李新麗,高 宏,張厚森
(江蘇省理化測試中心,江蘇南京 210046)
單核細胞增生李斯特氏菌(Listeriamonocytogenes,LM)是唯一能引起人畜共患病的主要致病菌,由于該菌具有耐高鹽、高滲透壓、低溫和低水分的特點,因此其可在極端條件下生長且很難在食物鏈中被清除[1]。2002年,LM已被 WHO 列為四大重要的食源性致病菌之一[2]。據(jù)報道,近年來由LM引發(fā)的病例呈上升趨勢[3-6],且由該菌感染引起的食物中毒導致的人畜患胃腸炎、腦膜炎、敗血癥以及流產(chǎn)和死胎等疾病的死亡率高達30%~70%[7-8]。隨著人們生活節(jié)奏的加快,冷藏、速凍食品的消費量也迅速增加,但該類食品被LM感染會持續(xù)腐敗[9],因此冷藏類食品的微生物檢測必須引起重視。
目前,國內(nèi)外對LM的檢驗方法主要包括傳統(tǒng)培養(yǎng)檢測和快速檢測兩大類,前者包括國際上的FDA-BAM、ISO 11290 等方法[10]。我國常用的是國標法,自1994年(GB/T4789.30-1994)發(fā)布以來一直作為食品衛(wèi)生中LM檢測的主要依據(jù),截止2017年該法已進行了4次修訂(GB/T4789.30-2003、GB/T 4789.30-2008、GB 4789.30-2010和GB 4789.30-2016),其中,與GB 4789.30-2010相比,GB 4789.30-2016《單核細胞增生李斯特氏菌檢驗》增加了“第二法 單核細胞增生李斯特氏菌平板計數(shù)法”和“第三法 單核細胞增生李斯特氏菌MPN 計數(shù)法”,進一步滿足了LM的計數(shù)要求,并且方法的可操作性得到很大提升,有利于基礎條件相對薄弱的實驗室開展檢測。快速檢測法包括酶聯(lián)免疫吸附測定法(ELISA)、酶聯(lián)熒光分析法(ELFA)和側(cè)流免疫法(Lateral Flow Immunoassay)等免疫學方法、生物傳感器法、基于噬菌體的檢測法及多重PCR、實時熒光PCR、核酸探針雜交技術和恒溫擴增技術等分子生物學方法[11]。與傳統(tǒng)的檢測方法相比,免疫學方法具有速度快、可重復性好;生物傳感器法響應時間慢,壽命短且靈敏度不高;而分子生物學方法檢測快速、可重復性強、且可同時設置多參數(shù)檢測,并能夠?qū)崿F(xiàn)自動化,但快速檢測方法存在特異性低、檢測結(jié)果假陽性率偏高、成本高等缺點,因此在食品衛(wèi)生微生物的實際檢驗中,各單位部門和食品檢測中心仍以傳統(tǒng)培養(yǎng)檢測方法為主。
本研究通過比較平板計數(shù)(Plate counting)法和稀釋培養(yǎng)計數(shù)(Most probable number counting,MPN)法測定人工污染不同雜菌和LM的不同種類食品中LM的檢出率而篩選出最佳檢測方法,并比較不同食品在不同儲存條件下LM的數(shù)量,進而探討食品冰箱保存的最佳保存時間和方法,為家庭冰箱食品的保存條件提供參考性的建議。
牛奶、涼拌菜和鹽水鴨 采自南京市某超市,采集當天進行樣品檢測;單核細胞增生李斯特氏菌CICC21633和金黃色葡萄球菌(StaphylococcusAureus,SA)CICC21600 中國工業(yè)微生物菌種保藏管理中心;大腸埃希氏菌(Escherichiacoli,E.coli)25922 廣東省食品微生物安全工程技術研究中心。
拍擊式均質(zhì)器 HBM-400B中國天津;李氏增菌肉湯(LB肉湯,批號:3105131)、李斯特氏菌顯色培養(yǎng)基(批號:6103134)、李氏增菌液LB1(批號:6105150)、LB2配套試劑(批號:6105236)、PALCAM 瓊脂(批號:3104527)、含0.6%酵母膏的胰酪胨大豆瓊脂(TSA-YE,批號:3105514)、LM生化鑒定試劑盒(批號:5105133) 廣東環(huán)凱生物科技有限公司。
1.2.1 試樣的制備及檢測 將從南京市某超市采集的牛奶、涼拌菜和鹽水鴨樣品當天立即按照GB 4789.30-2016中的第一法進行定性檢測,檢測結(jié)果為LM陰性。樣品的平板計數(shù)法和MPN計數(shù)法采用GB 4789.30-2016 中的第二法和第三法[13]。
1.2.2 菌種數(shù)量的獲取 將LM、E.coli和SA分別接種于營養(yǎng)肉湯中,其中E.coli和SA混合接種于一份營養(yǎng)肉湯中,(36±1) ℃培養(yǎng)24 h;取1 mL菌液與9 mL的生理鹽水混勻,10倍倍比稀釋,進行平板計數(shù)[12],計數(shù)方法同GB 4789.2-2016[14]。
1.2.3 模擬雜菌含量低污染試樣的檢測 取LM檢測均為陰性的牛奶、涼拌菜(在無菌條件下剪碎)和鹽水鴨(在無菌條件下剪碎)試樣,于沸水中煮10 min,每個樣品分為平行4份,3份接種菌液,根據(jù)菌液濃度取不同的量分別加入含有25 mL牛奶、25 g涼拌菜和25 g鹽水鴨的225 mL的LB肉湯中,使LM的終濃度分別約為600、100和20 CFU/mL,同時使E.coli和SA的數(shù)量之和分別約為60、10和2 CFU/mL,使目標菌(LM)和雜菌(E.coli和SA)數(shù)量比例約為10∶1,另1份不接菌,作為陰性對照。每個濃度做3個獨立重復實驗。
上述目標菌和雜菌的數(shù)量均為在做樣品的同時取一定量的樣品進行平板計數(shù)的結(jié)果,即取每個濃度的樣品25 g(mL)分別加入225 mL LB增菌液和無菌生理鹽水中,按照GB 4789.30-2010(第二法)、GB 4789.3-2016(第二法)[15]和GB 4789.10-2016(第二法)[16]分別做平板計數(shù),計算LM、E.coli和SA的具體數(shù)量。
1.2.4 模擬雜菌含量高污染試樣的檢測 取LM檢測均為陰性的牛奶、涼拌菜(在無菌條件下剪碎)和鹽水鴨(在無菌條件下剪碎)試樣,在沸水中煮10 min,每個樣品分為平行4份,3份接種菌液,根據(jù)菌液濃度取不同的量分別加入含有 25 mL牛奶、25 g涼拌菜和25 g鹽水鴨的225 mL的LB肉湯中,使LM的終濃度分別約為600、100和20 CFU/mL,同時使E.coli和SA的數(shù)量之和分別約為6000、1000和200 CFU/mL,使目標菌(LM)和雜菌(E.coli和SA)數(shù)量比例約為1∶10,另1份不接菌,作為陰性對照。每個濃度做3個獨立重復實驗。加目標菌和雜菌的數(shù)量計算方法同1.2.3。
1.2.5 冷凍和冷藏保藏污染試樣的檢測 取若干滴LM菌液加入牛奶、涼拌菜和鹽水鴨中,混勻,分成2份,分別置于2~8 ℃和-20 ℃的冰箱中保存,取保存3、5、7 d的樣品用MPN計數(shù)法進行測定。
采用Excel 2003軟件建立數(shù)據(jù)庫,運用SPSS 17. 0統(tǒng)計軟件進行數(shù)據(jù)分析。
無雜菌的不同食品染菌試樣檢測結(jié)果見表1,牛奶、涼拌菜和鹽水鴨試樣的染菌實驗表明,平板計數(shù)法和MPN計數(shù)法測得的LM結(jié)果均接近于染菌的起始濃度。結(jié)果相差不超過0.5倍,結(jié)果均小于1個數(shù)量級。不同種類食品不同染菌量平板計數(shù)法測得的LM結(jié)果是初始染菌量的0~0.05倍,MPN計數(shù)法測得的LM結(jié)果是初始染菌量的0~0.5倍,在無雜菌污染時,平板計數(shù)法比MPN計數(shù)法的準確度更高一些。
表1 無雜菌的不同食品染菌實驗中LM的檢測結(jié)果Table 1 Detection results of LM in different foods contamination tests with non content of miscellaneous bacterium
模擬雜菌含量低的試樣檢測結(jié)果見表2,牛奶、涼拌菜和鹽水鴨試樣的染菌實驗表明,平板計數(shù)法測得的LM結(jié)果接近于染菌的起始濃度,結(jié)果相差0.6~1.2倍,小于1個數(shù)量級,其中鹽水鴨試樣測得的LM結(jié)果與染菌的起始濃度最接近,結(jié)果最高相差1.1倍;涼拌菜試樣測得的LM結(jié)果與染菌的起始濃度相差0.9~1.1倍;牛奶試樣測得的LM結(jié)果與染菌的起始濃度相差最大,結(jié)果相差0.6~1.2倍,試樣除鹽水鴨外,結(jié)果表明,LM染菌濃度越小(<100 CFU/g(mL)),檢測菌量與染菌量的結(jié)果相差越大。MPN計數(shù)法檢測LM結(jié)果遠高于染菌的起始濃度,結(jié)果相差1.2~18倍,其中鹽水鴨試樣測得的LM結(jié)果與染菌的起始濃度相差最大,結(jié)果相差2.2~18倍;涼拌菜試樣測得的LM結(jié)果與染菌的起始濃度相差最小,結(jié)果相差1.2~3.9倍;牛奶試樣測得的LM結(jié)果與染菌的起始濃度相差2.2~7.5倍;所有試樣檢測結(jié)果表明LM染菌濃度越小(<100 CFU/g(mL)),檢測菌量結(jié)果與染菌量的結(jié)果相差越小。
表2 雜菌含量低的不同食品染菌實驗中LM的檢測結(jié)果Table 2 Detection results of LM in different foods contamination tests with low content of miscellaneous bacterium
模擬雜菌含量高的試樣檢測結(jié)果見表3。牛奶、涼拌菜和鹽水鴨試樣的染菌實驗表明,平板計數(shù)法檢測LM結(jié)果遠低于染菌的起始濃度,結(jié)果相差0.5~0.8倍,與雜菌含量低的平板計數(shù)法測得的0.6~1.2倍相比,測量結(jié)果的準確性略有降低。其中涼拌菜試樣測得的LM結(jié)果與染菌的起始濃度相差最大,結(jié)果相差0.5~0.8倍;鹽水鴨和牛奶試樣測得的結(jié)果與染菌的起始濃度相差相對較小,結(jié)果相差0.6~0.8倍;且LM染菌的初始濃度越高(≥100 CFU/g(mL)),檢測菌量與初始濃度相差越小。MPN計數(shù)法測得的LM結(jié)果與染菌的起始濃度相比,結(jié)果相差1.1~2.5倍,與雜菌含量低的MPN計數(shù)法測得的1.2~18倍相比,測量結(jié)果的準確性提高約7倍。其中鹽水鴨試樣測得的LM結(jié)果與染菌的起始濃度最接近,結(jié)果相差1.1~2.0倍;涼拌菜試樣測得的LM結(jié)果與染菌的起始濃度相差1.4~1.8倍;牛奶試樣測得的結(jié)果與染菌的起始濃度相差最大,結(jié)果相差1.5~2.5倍,且LM染菌的初始濃度越高(≥100 CFU/g(mL)),結(jié)果相差越大。
由表4結(jié)果可知,2~8 ℃保存后的3種試樣中LM的數(shù)量隨著保存時間的增加均有不同程度的增加。牛奶樣在保存3 d后LM的數(shù)量增長最多,比初始結(jié)果增加了4倍,之后增長速度減慢,7 d時增加了10.6倍;涼拌菜中的增長速度最慢,保存3、5 和7 d的LM數(shù)量分別增加了1.3、2.1和3.2倍;鹽水鴨中的LM增長速度最快,3 d增加了2.6倍,5 d時增長量與牛奶中的相同,增加了6.4倍,7 d時的增長量為初始菌量的26倍。牛奶、涼拌菜和鹽水鴨在經(jīng)過不同冷藏保存時間后LM數(shù)量對比差異有統(tǒng)計學意義(p<0.05)。由于涼拌菜的初始染菌量與牛奶和鹽水鴨不同,無法比較經(jīng)過相同保存天數(shù)后的不同種類食品中LM數(shù)量增長是否有差異,但根據(jù)表4結(jié)果可知,LM的增長速度:涼拌菜<牛奶<鹽水鴨。
表4 冷藏保存時間對LM數(shù)量變化的影響Table 4 The effect of storage time on the variation of LM
表5結(jié)果顯示-20 ℃保存后的試樣中LM的數(shù)量均有不同程度的增加。牛奶和涼拌菜冷凍3 d后,LM的數(shù)量與初始量相比無變化或變化很小,數(shù)量差異不具統(tǒng)計學意義(p<0.05),而鹽水鴨中的LM數(shù)量增加了3倍,與初始對比差異顯著(p<0.05)。冷凍保藏過程中,LM的數(shù)量在涼拌菜中的增長速度最慢,而鹽水鴨中LM的數(shù)量增長最快;牛奶、涼拌菜和鹽水鴨中LM數(shù)量在5 d時分別增長了11.9、3.2和11.9倍,而7 d時增長量分別為25.8、10.4和42倍,三種食品的LM數(shù)量在3與5、5與7 d及分別與初始水平相比均有統(tǒng)計學意義(p<0.05)。
三種食品分別在冷藏和冷凍條件下保存到7 d時,LM的數(shù)量均大幅度增加,尤其是鹽水鴨中的增長量最大,推測熟肉中的蛋白質(zhì)、維生素等營養(yǎng)物質(zhì)含量高而有利于LM的生長。由于涼拌菜的初始染菌量與牛奶和鹽水鴨不同,無法比較不同種類的食品在同樣的保存天數(shù)LM數(shù)量增長是否有差異,但由表5中的結(jié)果可知,LM增長的速度:涼拌菜<牛奶<鹽水鴨,與冷藏條件下LM食品種類增長一致。
表5 冷凍保存時間對LM數(shù)量變化的影響Table 5 The effect on the variation of LM with time of forzen storage
本文研究結(jié)果對比表明,在LM污染水平較高(≥100 CFU/g(mL)),雜菌含量低(LM含量與雜菌含量比為10∶1)的情況下,平板計數(shù)法優(yōu)于MPN計數(shù)法,因此對食品中LM的定量檢測較為適用,而在LM污染水平較低(<100 CFU/g(mL))雜菌含量高(LM含量與雜菌含量比為1∶10)的情況下,由于平板計數(shù)法沒有前增菌和選擇性增菌步驟,雜菌會嚴重干擾可疑LM菌落的識別和鑒定,不能準確進行LM的計數(shù)。在選擇不同的檢測方法時,如不能對食品中LM的數(shù)量進行把握,可同時進行兩種定量檢測方法檢測,以期提高樣品中LM檢測的準確性。食品中LM數(shù)量隨冷藏和冷凍保存時間的增加而增多,且保存3、5、7 d的同種食品中菌數(shù)對比差異顯著(p<0.05),因此冷藏或冷凍于冰箱的食品應縮短存儲時間而盡快食用,減少“冰箱病”的發(fā)生率。
[1]段霞,黃欣,黃嶺芳,等. 雙抗夾心ELISA方法檢測食品中單核細胞增生李斯特氏菌[J]. 食品科學,2010,31(24):272-276.
[2]駱學農(nóng),曹曉瑜,才學鵬. 李氏桿菌研究進展[J]. 動物醫(yī)學進展,2004,25(1):28-31.
[3]郭崇健,張?zhí)m榮,高翔,等.2例單核細胞增生李斯特菌病人的病原學分析[J]. 中國衛(wèi)生檢志,2015,25(3):356-357.
[4]馮延芳,冉陸,張立實. 2000-2009年中國李斯特菌病文獻報告病析[J]. 疾病檢測,2011,22(8):654-659.
[5]楊洋,付草,郭云昌,等. 2005 年中國食源性單核細胞李斯特菌耐藥性分析[J]. 衛(wèi)生研究,2008,37(2):183-186.
[6]阮明捷,游川,李書明,等. 1例單核細胞增生李斯特菌感染引起孕婦的雙胎死亡的調(diào)查報告[J]. 性病學雜志,2015,16(3):353-354.
[7]Kerr NG,Lacey RW. Listeriosis:new problems with an old pathogen[J]. J of Hospital Infention,1988(12):247.
[8]沈曉盛,鄭國興,李慶,等. 食品中單核細胞增生李斯特菌的危害及其檢測[J]. 食品與發(fā)酵工業(yè) 2004,30(8):87-91.
[9]金偉平,黃志強,劉群群,等. 頂空固相微萃取-氣質(zhì)聯(lián)用法分析單增李斯特菌污染冷藏牛肉的揮發(fā)性物質(zhì)[J]. 食品科學,2012,33(2):243-247.
[10]Law WF,Ab Mutalib NS,Chan KG,et al. An insight into the isolation,enumeration,and molecular detection ofListeriamonocytogenesin food[J]. Front Microbiology,2015(6):1227.
[11]李云霞,陳雯雯,顧晨榮,等. 單增李斯特菌的檢測方法研究進展[J]. 上海師范大學學報:自然科學版,2015,44(6):687-693.
[12]郭倩倩. 多重PCR技術和重組DNA技術在水產(chǎn)品安全中的應用[D]. 上海:上海海洋大學,2010.
[13]中華人民共和國衛(wèi)生部. GB 4789.30-2016 食品安全國家標準-食品衛(wèi)生微生物學檢驗-單核細胞增生李斯特氏菌檢驗[S]. 北京:中國標準出版社,2016.
[14]中華人民共和國衛(wèi)生部. GB 4789.2-2016 食品安全國家標準-食品衛(wèi)生微生物學檢驗-菌落總數(shù)測定[S]. 北京:中國標準出版社,2016.
[15]中華人民共和國衛(wèi)生部. GB 4789.3-2016 食品安全國家標準-食品衛(wèi)生微生物學檢驗-大腸菌群計數(shù)[S]. 北京:中國標準出版社,2016.
[16]中華人民共和國衛(wèi)生部. GB 4789.10-2016 食品安全國家標準-食品衛(wèi)生微生物學檢驗-金黃色葡萄球菌檢驗[S]. 北京:中國標準出版社,2016.