李 涵 李慧敏 陸 琳 楊少杰 瞿素萍 田 敏 黎 霞 曹 樺
(1. 云南省農(nóng)業(yè)科學(xué)院花卉研究所,國(guó)家觀賞園藝工程技術(shù)研究中心,云南 昆明 650100;2. 云南省科學(xué)技術(shù)院,云南 昆明 650100)
雜交蘭 ‘黃金小神童’ (CymbidiumGolden Elf ‘Sundust’) 是大花蕙蘭 (Cymbidiumhybridum) 與四季蘭素心 (Cymbidiumensifoliumvar.rubrigemmum‘Suxin’) 的雜交種[1-2],花型較大、香氣雅致、鮮艷奪目、純正黃色,因而又被稱為 “黃花素心”[2]。黃金小神童四季都可開花,可控制花期,滿足人們的喜好,既可賞花又能聞香[1,3],具有重要的觀賞價(jià)值和經(jīng)濟(jì)價(jià)值,市場(chǎng)前景可觀。近年來,多倍體育種在植物新品種選育中應(yīng)用廣泛,推動(dòng)了植物的進(jìn)化[4]。多倍體染色體數(shù)目加倍,個(gè)體外形表現(xiàn)巨大性,色澤鮮艷,細(xì)胞內(nèi)含物增加[5-6];表現(xiàn)出耐輻射、耐紫外光、抗性較強(qiáng)[7-8],花型巨大、花色艷麗等特征,這對(duì)觀花植物來說具有十分重要的研究?jī)r(jià)值。
目前,蘭花多采用秋水仙素進(jìn)行化學(xué)誘變,在大花蕙蘭[9]、石斛 (Dendrobiumnobile)[10]、蝴蝶蘭 (Phalaenopsisaphrodite)[11]、黃嬋蘭 (Cymbidiumiridioides)[12]多倍體誘導(dǎo)上獲得成功。但作為化學(xué)誘變劑,秋水仙素存在誘導(dǎo)率低、毒性大等缺點(diǎn),對(duì)人和環(huán)境具有很大危害。安磺靈是一種新型的除草劑,具有與植物蛋白親和力高、與動(dòng)物蛋白親和力低的特點(diǎn),因此誘導(dǎo)植物多倍體效率高、環(huán)境污染小[13-15]。甲基黃酸乙酯 (EMS) 是一種常用的化學(xué)誘變劑,具有操作簡(jiǎn)單、突變頻率高、突變專一性與多效性等優(yōu)點(diǎn)[16]。目前,運(yùn)用各種化學(xué)誘變劑育種的報(bào)道較多見,但運(yùn)用2種或2種以上化學(xué)誘變劑的鮮見報(bào)道。本研究通過EMS和安磺靈2種誘變劑組合使用,目的在于提高雜交蘭誘變率、快速獲得穩(wěn)定性好的四倍體株系以降低多倍體育種成本,為雜交蘭多倍體育種研究提供理論數(shù)據(jù),期望能選育出觀賞價(jià)值高、抗性好的雜交蘭新品種;同時(shí),為化學(xué)誘變?cè)谡T變劑使用上提供新的思路。
在云南省農(nóng)業(yè)科學(xué)院花卉研究所基地內(nèi)選取市場(chǎng)流行品種雜交蘭 ‘黃金小神童’ 莖尖為外植體材料,在誘導(dǎo)培養(yǎng)基MS + EMS 20~70 mg/L + 6-BA 2.0 mg/L + NAA 0.5 mg/L + 蛋白胨2 g/L + 蔗糖25 g/L + 香蕉100 g/L + 活性炭3 g/L + 瓊脂7 g/L,pH值為5.4~5.8條件下,誘導(dǎo)獲得根狀莖;在分化培養(yǎng)基MS + 6-BA 5 mg/L + NAA 1 mg/L + 蛋白胨2 g/L + 蔗糖25 g/L + 香蕉100 g/L + 活性炭3 g/L + 花寶1號(hào)2.5 g/L + 花寶2號(hào)0.6 g/L + 花寶5號(hào)0.8 g/L + 瓊脂7 g/L中,經(jīng)pH值5.4~5.8分化得組培苗。建立成熟組培快繁體系。組培苗經(jīng)過鑒定,根尖染色體數(shù)目為2n=2x=40,為二倍體植株。無菌條件下,取1 cm長(zhǎng)的健壯根狀莖作為誘導(dǎo)多倍體的基礎(chǔ)材料。培養(yǎng)室培養(yǎng)溫度 (25 ± 1) ℃,相對(duì)濕度70%~80%,光照強(qiáng)度1 000~2 000 lx,光照12 h/d。
1.2.1多倍體誘導(dǎo)
以安磺靈和EMS作為誘導(dǎo)劑,采用復(fù)合化學(xué)誘變劑誘導(dǎo)的方法,對(duì)雜交蘭根狀莖進(jìn)行多倍體誘導(dǎo)。依照實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì),按不同比例配比2種誘導(dǎo)劑,對(duì) ‘黃金小神童’ 根狀莖進(jìn)行誘導(dǎo)。無菌條件下,取根狀莖中斷,生長(zhǎng)健壯的1 cm根狀莖,用濃度為0、0.001%、0.002%、0.003%對(duì)其進(jìn)行浸泡,處理時(shí)間分別為24、48、72 h,后用滅菌蒸餾水清洗3次,滅菌濾紙吸干水分。后接種到含有不同EMS濃度 (0、20、50、70 mg/L) 的無菌固體培養(yǎng)基中,培養(yǎng)基配方為MS + EMS 20~70 mg/L + 6-BA 2.0 mg/L + NAA 0.5 mg/L + 蛋白胨2 g/L + 蔗糖25 g/L + 香蕉100 g/L + 活性炭3 g/L + 瓊脂7 g/L,pH值為5.4~5.8,進(jìn)行無菌誘導(dǎo)培養(yǎng),1個(gè)月后,統(tǒng)計(jì)死亡率。后把存活根狀莖轉(zhuǎn)接到分化培養(yǎng)基MS + 6-BA 5 mg/L + NAA 1 mg/L + 蛋白胨2 g/L + 蔗糖25 g/L + 香蕉100 g/L + 活性炭3 g/L + 花寶1號(hào)2.5 g/L + 花寶2號(hào)0.6 g/L + 花寶5號(hào)0.8 g/L + 瓊脂7 g/L中,pH值為5.4~5.8進(jìn)行培養(yǎng);60 d后根狀莖形成組培苗,長(zhǎng)出幼嫩根,初步觀察其形態(tài)變化,統(tǒng)計(jì)變異率。
1.2.2變異植株形態(tài)鑒定
處理過后的根狀莖,經(jīng)過分化成苗,部分植株會(huì)呈現(xiàn)粗壯、葉色濃綠、葉片寬大肥厚、葉片卷曲的形態(tài)特征。把具有這些形態(tài)特征的植株初步判定為多倍體植株,進(jìn)行初步的篩選和變異率的統(tǒng)計(jì),隨機(jī)選取二倍體單株和變異單株各30株,測(cè)量葉長(zhǎng)、葉寬、葉厚、株高、莖粗。
1.2.3變異植株氣孔鑒定
選擇天氣晴朗的上午8:00—11:00,氣孔持張開狀態(tài),隨機(jī)選取雜交蘭二倍體植株材料和變異植株材料同一部位的新鮮葉片各30片,用鑷子輕輕撕取葉片中部的下表皮,置于載玻片上,制作臨時(shí)玻片。40倍光學(xué)顯微鏡隨機(jī)測(cè)量氣孔10個(gè),微尺測(cè)量氣孔和保衛(wèi)細(xì)胞的長(zhǎng)和寬,檢測(cè)10個(gè)不同的視野,求其平均值。
1.2.4多倍體染色體鑒定
采用F-BSG法在9:00—12:00,細(xì)胞分裂旺盛時(shí)期,取變異植株的幼嫩根尖1~1.5 cm裝入離心管中,分別對(duì)植株和根尖編號(hào)。用質(zhì)量濃度為0.1%的秋水仙素浸泡4 h后,清洗,卡諾固定液 (V(無水乙醇)∶V(冰乙酸)=3∶1) 固定20~24 h后,清洗,然后用濃度為1 mol/L的鹽酸在60 ℃下解離8~10 min,清洗,把根尖放在載玻片中央,滴2~3滴卡寶品紅染色液,染色3~5 min,從染液的一角輕輕蓋上蓋玻片進(jìn)行壓片,用新鉛筆有橡皮頭的一端輕敲蓋玻片,使根尖均勻分散。用Nika顯微鏡 (Eclipse E800) 鏡檢拍照,跟據(jù)染色體數(shù)確定其倍數(shù)。
1.2.5多倍體的穩(wěn)定
經(jīng)3種方法鑒定篩選的變異植株,接種到MS + 6-BA 3 mg/L + NAA 0.5 mg/L + 蛋白胨2 g/L + 蔗糖25 g/L + 香蕉100 g/L + 活性炭3 g/L + 瓊脂7 g/L培養(yǎng)基中,并在溫度 (25 ± 1) ℃、光照強(qiáng)度1 000~2 000 lx、光照12 h/d的條件下進(jìn)行繼代培養(yǎng)。繼代培養(yǎng)長(zhǎng)出根狀莖,重新進(jìn)行切割,經(jīng)誘導(dǎo)、分化成苗、生根后取根尖染色體鑒定,同一變異植株經(jīng)過3次分離穩(wěn)定及鑒定,染色體數(shù)目穩(wěn)定一致,確定變異植株為四倍體,進(jìn)行增殖培養(yǎng)。
以植株外部形態(tài)變異和氣孔顯著增大為初步鑒定指標(biāo)。死亡標(biāo)準(zhǔn)是指養(yǎng)1個(gè)月后仍不能發(fā)育,以后根狀莖逐漸死亡。由表1可知,雜交蘭根狀莖以安磺靈濃度為0.002%處理48 h,EMS濃度為50 mg/L加入培養(yǎng)基培養(yǎng)1個(gè)月的變異效果最佳,變異率為52%,死亡率僅為6%。隨著安磺靈和EMS濃度的增加,死亡率有所增加,但差別不顯著,最高死亡率為10%。
表1 安磺靈和EMS不同濃度和處理時(shí)間對(duì)雜交蘭根狀莖的誘導(dǎo)效果Table 1 The induction effects of different concentrations and treatment time of oryzalin and EMS on Cymbidium rhizome
0.001%~0.003%安磺靈處理24~72 h后均有不同程度的變異植株出現(xiàn),變異率為16%~44%。根狀莖不經(jīng)過安磺靈浸泡直接接入含有EMS 0~70 mg/L的培養(yǎng)基中培養(yǎng)變異率較低,變異率為0~4%。2種誘變劑配合使用變異效果顯著。
2.2.1外部形態(tài)鑒定結(jié)果
觀察發(fā)現(xiàn)雜交蘭根狀莖經(jīng)過處理培養(yǎng)1月后 (圖1),與對(duì)照根狀莖相比,生長(zhǎng)速度較緩慢,分化出的根狀莖更粗狀,表面突起較明顯,伴輕微玻璃化。將誘導(dǎo)處理過的根狀莖分化培養(yǎng)形成植株,部分植株生長(zhǎng)緩慢,株型緊湊矮狀,葉片增厚,葉脈較深,葉色深綠,部分葉片扭曲,葉尖分叉。對(duì)照植株葉片光滑、質(zhì)薄、葉色淺。誘導(dǎo)后的根狀莖和分化的植株與對(duì)照植株的在外部形態(tài)上有明顯區(qū)別,多倍體葉長(zhǎng)和株高指標(biāo)相對(duì)二倍體降低2.79%和2.92%,差異不顯著;多倍體葉寬、葉厚和莖粗指標(biāo)與二倍體相比增加31.74%、39.28%和37.85%,差異極顯著,見表2。
圖1多倍體與二倍體根狀莖和株型比較
Fig.1 Comparison of rhizome and strain between polyploid and diploid
表2 多倍體與二倍體植株外部形態(tài)的比較Table 2 Comparison of external morphology between polyploid and diploid strain
2.2.2氣孔鑒定結(jié)果
選擇正常植株與多倍體植株各4~6片全展葉,取相同部位的葉片下表皮在顯微鏡下觀察氣孔,測(cè)量氣孔和保衛(wèi)細(xì)胞的長(zhǎng)寬,見表3。由表3可知,雜交蘭多倍體植株葉片氣孔形態(tài)特征與二倍體的基本相似,但氣孔大小差異顯著;多倍體植株葉片單位面積的氣孔數(shù)較二倍體少,氣孔增大。多倍體氣孔長(zhǎng)和寬、保衛(wèi)細(xì)胞長(zhǎng)和寬分別比二倍體增加了28.45%和30.27%、28.10%和34.08%,氣孔密度比二倍體降低了38.23%。
表3 多倍體與二倍體氣孔大小的比較Table 3 Comparison of the stomatal size between polyploid and diploid
2.2.3染色體鑒定結(jié)果
將外部形態(tài)鑒定和氣孔鑒定后的變異植株進(jìn)行生根,采用根尖壓片法鑒定其染色體數(shù)目,見圖2。二倍體材料細(xì)胞染色體數(shù)為2n=2x=40,誘導(dǎo)處理后的變異植株染色體數(shù)目增多,且根尖細(xì)胞體積明顯增大。其中,大量細(xì)胞染色體數(shù)目為2n=4x=80,還出現(xiàn)40~120條染色體數(shù)目不等的情況,這可能是植株染色體小、染色體重疊、莖尖細(xì)胞核粘稠、細(xì)胞出現(xiàn)嵌合體等原因。
對(duì)安磺靈濃度為0.002%處理48 h,EMS濃度為50 mg/L加入培養(yǎng)基培養(yǎng)1個(gè)月的實(shí)驗(yàn)組進(jìn)行變異植株的初步篩選,得到40%的四倍體 (2n=4x=80),再進(jìn)行繼代培養(yǎng)增殖后進(jìn)行染色體鑒定,變異的根尖細(xì)胞中四倍體的比例為80%。再次把篩選出來的四倍體進(jìn)行繼代培養(yǎng)增殖后進(jìn)行鑒定,得到四倍體比例為90%。
圖2雜交蘭二倍體和四倍體染色體
Fig.2 Chromosome of diploid and tetraploidCymbidium
安磺靈和EMS作為高效的化學(xué)誘變劑,逐漸被諸多學(xué)者運(yùn)用到不同的植物誘變研究中,然而,這2種高效誘變劑組合誘變的研究卻未見報(bào)道。本實(shí)驗(yàn)采用安磺靈浸泡處理結(jié)合EMS混培法對(duì)雜交蘭 “黃金小神童” 進(jìn)行誘導(dǎo),在所有實(shí)驗(yàn)組中,根狀莖的最高死亡率僅為10%,說明安磺靈和EMS對(duì)根狀莖傷害程度較小。其中,又以0.002%安磺靈浸泡48 h,并接種到含有50 mg/L EMS培養(yǎng)基中培養(yǎng)1個(gè)月的實(shí)驗(yàn)組,根狀莖的誘變率最高,達(dá)52%,死亡率僅為6%,且含高達(dá)40%的四倍體。繼代培養(yǎng)后,四倍體比重呈梯度上升。綜合各實(shí)驗(yàn)組發(fā)現(xiàn),相比單一誘變法,組合誘變法的誘變率顯著提高,死亡率顯著降低。誘變得到的雜交蘭多倍體組培苗材料顯現(xiàn)出多倍體的性狀,即生長(zhǎng)緩慢,植株矮小粗壯,葉片顏色變深增厚等。因此選擇安磺靈和EMS組合誘變具有高效性、獨(dú)創(chuàng)性和科學(xué)性,可將本實(shí)驗(yàn)方法推廣至其他蘭花或植物品種的四倍體研究中。
自然界中高等植物四倍體的發(fā)生機(jī)率極低,一般采用秋水仙素等誘變劑進(jìn)行單一誘變,然而,誘變率低、毒性大等因素大大地限制了四倍體在實(shí)際生產(chǎn)中的應(yīng)用。實(shí)驗(yàn)中,上述氨磺靈及EMS組合誘變四倍體的方法是非常高效且環(huán)保的新方法,也為下一步新品種的選育及繼續(xù)創(chuàng)造提供了依據(jù)。
在雜交蘭誘導(dǎo)領(lǐng)域中,使用秋水仙素等化學(xué)誘變劑對(duì)植物組織和細(xì)胞有較強(qiáng)的毒害作用,且使用時(shí)濃度難以控制[17];王愛華等[18]以秋水仙素誘導(dǎo)鐵皮石斛2n花粉得到6.22%的誘導(dǎo)率,王木桂等利用秋水仙素對(duì)墨蘭進(jìn)行誘導(dǎo)得最高誘變率19.44%[19],季碧霞等[20]在對(duì)大花蕙蘭多倍體的研究中,用秋水仙素對(duì)其進(jìn)行誘導(dǎo),最高誘導(dǎo)率為28.2%,最低死亡率為7.3%;李雪嬌等[21]對(duì)云南野生碧玉蘭的研究中,以秋水仙素誘導(dǎo)其無菌試管苗,最低死亡率為30%;石從廣等[22]利用EMS對(duì)甘藍(lán)型油菜進(jìn)行誘變時(shí)得8.46%的誘變率;而本實(shí)驗(yàn)中氨磺靈與EMS組合使用所得到的最高誘變率達(dá)52%,最低死亡率為6%。因此,相對(duì)于單一誘變劑來說,氨磺靈與EMS組合誘變的方法具有絕對(duì)的高效性和安全性。
本實(shí)驗(yàn)中所獲得的四倍體材料將直接進(jìn)行移栽煉苗,測(cè)量多倍體移栽成活率。成活后進(jìn)行田間定期觀察并測(cè)試性狀的變化,同時(shí)對(duì)四倍體性狀是否穩(wěn)定進(jìn)行比測(cè)。植株開花后,觀察花朵的性狀,希望能夠篩選出優(yōu)良的多倍體新品種,為蘭花種質(zhì)資源創(chuàng)新提供基礎(chǔ)數(shù)據(jù)。
[參 考 文 獻(xiàn)]
[1] 祁翔, 劉燕, 向立容, 等. 栽培措施對(duì)建蘭品種 ‘黃金小神童’ 幼苗生長(zhǎng)的影響[J]. 貴州農(nóng)業(yè)科學(xué), 2013, 41(2): 77-80.
[2] 王濟(jì)紅, 劉燕, 祁翔, 等. 建蘭新品種 ‘黃金小神童’ 組培育苗集成技術(shù)的優(yōu)化[J]. 西南農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào), 2014, 27(5): 2135-2140.
[3] 姚婧, 覃寶祥, 劉帆, 等. 冬鳳蘭與 ‘黃金小神童’ 大花蕙蘭雜交后代的觀賞性評(píng)價(jià)[J]. 熱帶作物學(xué)報(bào), 2015, 36(7): 1201-1206.
[4] 魏望, 施富超, 王東瑋, 等. 多倍體植物抗逆性研究進(jìn)展[J]. 西北植物學(xué)報(bào), 2016, 36(4): 846-856.
[5] 林玉鳳, 杜勤, 程鳳麗, 等. 青天葵多倍體誘導(dǎo)、鑒別研究[J]. 廣州中醫(yī)藥大學(xué)學(xué)報(bào), 2015, 32(3): 513-519.
[6] 黃麗芳, 殷緒明, 楊宇晨, 等. 野生南荻與芒雜種多倍體誘導(dǎo)研究[J]. 西北植物學(xué)報(bào), 2015, 35(1): 50-56.
[7] 周珊珊, 謝利, 王辰輝, 等. 環(huán)境脅迫對(duì)不同倍性大花蕙蘭類原球莖增殖和分化的影響[J]. 植物生理學(xué)報(bào), 2015, 51(8): 1265-1272.
[8] 楊宇晨. 芒果多倍體誘導(dǎo)及其耐鹽性研究[D]. 長(zhǎng)沙: 湖南農(nóng)業(yè)大學(xué), 2013.
[9] 王木桂, 曾瑞珍, 謝利, 等. 大花蕙蘭四倍體的離體誘導(dǎo)和鑒定[J]. 西北植物學(xué)報(bào), 2010, 30(1): 56-62.
[10] 王愛華, 吳青青, 楊瀾, 等. 秋水仙素誘導(dǎo)黑喉石斛多倍體研究[J]. 西南大學(xué)學(xué)報(bào) (自然科學(xué)版), 2017, 39(1): 55-60.
[11] 崔廣榮, 張子學(xué), 等. 蝴蝶蘭類原球莖液體培養(yǎng)中用秋水仙素誘導(dǎo)多倍體[J]. 浙江大學(xué)學(xué)報(bào) (農(nóng)業(yè)與生命科學(xué)版), 2010, 36(1): 49-55.
[12] 王玉英, 李光宏, 李志敏, 等. 野生黃蟬蘭多倍體誘導(dǎo)初報(bào)[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué), 2014, 42(4): 132-134.
[13] 楊宇晨, 陳智勇, 夏亞男, 等. 不同誘變處理對(duì)芒多倍體誘導(dǎo)效果的研究[J]. 草地學(xué)報(bào), 2014, 22(5): 1069-1074.
[14] 余道平, 李策宏. 迎陽(yáng)報(bào)春四倍體誘導(dǎo)及鑒定[J]. 核農(nóng)學(xué)報(bào), 2014, 28(6): 961-966.
[15] 儲(chǔ)麗紅, 彭佳佳, 王釗, 等. 安磺靈、氟樂靈和秋水仙素誘導(dǎo)安祖花多倍體的研究[J]. 園藝學(xué)報(bào), 2014, 41(11): 2275-2280.
[16] 崔清志, 劉曉虹, 陳惠明. EMS誘變技術(shù)研究進(jìn)展[J]. 湖南農(nóng)業(yè)科學(xué), 2013(5): 7-9, 13.
[17] 吳麗民, 陳建青, 鄭若男, 等. 蘭花多倍體人工育種研究進(jìn)展[J]. 海峽藥學(xué), 2016, 28(8): 52-54.
[18] 王愛華, 吳青青, 楊瀾, 等. 鐵皮石斛2n花粉誘導(dǎo)及其形成的細(xì)胞機(jī)制研究[J]. 西北植物學(xué)報(bào), 2017, 37(2): 273-278.
[19] 王木桂, 曾瑞珍, 謝利, 等. 墨蘭多倍體的離體誘導(dǎo)和鑒定[J]. 中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào), 2011, 27(2): 132-136.
[20] 季必霞, 陳達(dá)偉, 張晨晨, 等. 大花蕙蘭多倍體的高效誘導(dǎo)[J]. 植物研究, 2011, 31(5): 558-562.
[21] 李雪嬌, 李枝林, 黃麗萍. 野生碧玉蘭多倍體誘導(dǎo)及鑒定[J].中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào), 2010, 26(13): 261-266.
[22] 石從廣, 孟華兵, 姜宇曉, 等. 甘藍(lán)型油菜EMS誘變二代農(nóng)藝與籽粒品質(zhì)性狀的變異與TILLING庫(kù)的構(gòu)建[J]. 核農(nóng)學(xué)報(bào), 2010, 24(6): 1132-1140.