李冰震 王理富 吳文元 陳景鋒
IL-32是一種促炎細(xì)胞因子,包含6種主要的亞型(IL-32α、IL-32β、IL-32γ、IL-32δ、IL-32ε、IL-32ζ),其中最主要的為IL-32α[1-2]。研究發(fā)現(xiàn),不同亞型的IL-32在炎癥性腸病、腫瘤、自身免疫病等中扮演不同的角色,在細(xì)胞凋亡、抑制腫瘤細(xì)胞生長(zhǎng)、增強(qiáng)炎癥反應(yīng)以及促進(jìn)血管生成等過程中發(fā)揮不同的生理作用[3-5]。胰腺上皮細(xì)胞的上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT)與胰腺腫瘤的侵襲轉(zhuǎn)移密切相關(guān),其中鈣黏附蛋白E(E-cadherin)的表達(dá)下調(diào)以及某些間質(zhì)細(xì)胞標(biāo)志物[如波形蛋白(Vimentin)、E盒結(jié)合鋅指蛋白1(Zeb1)]表達(dá)上調(diào)被認(rèn)為是EMT過程的標(biāo)志[6-7];金屬基質(zhì)蛋白酶(MMPs)可降解細(xì)胞基膜和外基質(zhì),與金屬基質(zhì)蛋白酶抑制物(TIMPs)保持動(dòng)態(tài)平衡,在胰腺癌的侵襲轉(zhuǎn)移中同樣起重要作用[8]。Janus激酶(Jak)及其下游通路蛋白細(xì)胞信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)和轉(zhuǎn)錄激活因子3(STAT3)可調(diào)節(jié)功能基因的轉(zhuǎn)錄,調(diào)控細(xì)胞凋亡、侵襲和轉(zhuǎn)移等;Jak/STAT3信號(hào)通路參與調(diào)控胰腺癌EMT過程[9-10]?;诖耍狙芯繉⒉煌瑵舛鹊腎L-32α作用于人胰腺癌細(xì)胞Panc-1、AsPC-1,檢測(cè)胰腺癌細(xì)胞的EMT、侵襲轉(zhuǎn)移及Jak2/STAT3信號(hào)通路的改變,探討其作用機(jī)制,現(xiàn)報(bào)道如下。
1.1材料人胰腺癌細(xì)胞株P(guān)anc-1、AsPC-1購(gòu)自上海生命科學(xué)研究所;重組人IL-32α購(gòu)自北京義翹神州生物技術(shù)有限公司;STAT3、p-STAT3、Jak2、p-Jak2、E-cadherin、Vimentin、Zeb1、MMP-2、MMP-9、GAPDH抗體購(gòu)自Cell Signaling Technology公司;Trizol細(xì)胞裂解液購(gòu)自美國(guó)Invitrogen公司;cDNA逆轉(zhuǎn)錄試劑盒購(gòu)自美國(guó)Thermo公司;SYBR green RT-PCR反應(yīng)試劑盒購(gòu)自美國(guó)Thermo公司;蛋白濃度試劑盒購(gòu)自廣州白云天公司;7500熒光定量PCR儀購(gòu)自美國(guó)Applied Biosystems公司;熒光顯微鏡(DM4000M)購(gòu)自德國(guó)徠卡公司;自動(dòng)曝光機(jī)(Image QuantTM400)購(gòu)自德國(guó)Rawak Software公司。
1.2方法
1.2.1細(xì)胞培養(yǎng)與分組將Panc-1細(xì)胞株培養(yǎng)于含10%FBS的DMEM培養(yǎng)基中;人胰腺癌細(xì)胞AsPC-1細(xì)胞株培養(yǎng)于含10%FBS的1640培養(yǎng)基中;兩者均置于37℃、5%二氧化碳的細(xì)胞培養(yǎng)箱中常規(guī)培養(yǎng)傳代。在Panc-1及AsPC-1細(xì)胞株中分別添加不同濃度的IL-32α后分為0μg/ml組(空白對(duì)照組)、10μg/ml組、25μg/ml組、50μg/ml組。
1.2.2RT-PCR檢測(cè)Vimentin、CDH1、Zeb1、MMP-2及MMP-9的mRNA表達(dá)水平采用Trizol細(xì)胞裂解液提取上述4組Panc-1、AsPC-1細(xì)胞總RNA;分光光度計(jì)檢測(cè)所提取RNA的純度及濃度;cDNA逆轉(zhuǎn)錄試劑盒合成cDNA,SYBR green RT-PCR反應(yīng)試劑盒與不同的引物(引物序列詳見表1)在7500熒光定量PCR儀中進(jìn)行目標(biāo)片段擴(kuò)增;反應(yīng)程序?yàn)椋?5°C 10min)×1個(gè)循環(huán)(95°C 15s)×40個(gè)循環(huán)(62°C 60s)×40個(gè)循環(huán)。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,取平均值。
表1 引物序列
1.2.3Western blot檢測(cè)E-cadherin、Vimention、Zeb1、MMP-2、MMP-9蛋白及Jak2/STAT3信號(hào)通路蛋白p-Jak2、Jak2、p-STAT3、STAT3表達(dá)水平用含有PMSF和磷酸酶抑制劑的RAPI裂解液(裂解液:PMSF:磷酸酶抑制劑=1 000∶10∶100)充分裂解上述4組Panc-1和AsPC-1細(xì)胞,提取總蛋白;并檢測(cè)濃度;根據(jù)不同的蛋白濃度配比不同量PBS,加入4μl 5×SDS上樣緩沖液配制成濃度相同總量為20μl的上樣液;變性(100°C 5min)后加在5%濃縮膠及不同濃度的分離膠(8%~12%)中電泳,先以55V恒壓進(jìn)行,至濃縮膠和分離膠交界線處(通常至Marker條帶顯現(xiàn))轉(zhuǎn)換電壓為110V。恒流轉(zhuǎn)膜,電流為350mA,時(shí)間根據(jù)每個(gè)目的蛋白的分子量不同而異。將轉(zhuǎn)有蛋白的PVDF膜放入5ml 5%脫脂奶粉液中封閉1~2h,棄去封閉液,1×TBST洗膜(3次,5min/次);將膜置于載玻片上,用一抗4°C下孵育過夜,1×TBST液洗膜(3次,5min/次),再置于二抗液(1∶5 000)中室溫?fù)u床低速孵育1~2h,棄去二抗液,1×TBST液洗膜(3次,5 min/次)。用image lab自動(dòng)曝光機(jī)檢測(cè)相應(yīng)的蛋白質(zhì)條帶,分析條帶灰度值。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,取平均值。
1.2.4細(xì)胞免疫熒光技術(shù)檢測(cè)Vimentin蛋白表達(dá)將無菌黏附蓋玻片置于6孔板中,每張玻片上滴25ug/ml的多聚賴氨酸1ml,室溫下過夜。取上述4組對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞,并將細(xì)胞懸液種植在黏附蓋玻片上,培養(yǎng)基培養(yǎng)6~8h,待細(xì)胞貼壁且生長(zhǎng)至70%~80%后,棄去原培養(yǎng)液,分別加入含不同濃度IL-32α的無血清培養(yǎng)液培養(yǎng)24h。棄去培養(yǎng)液洗滌后每孔加4%多聚甲醛1ml,室溫固定10min后棄去,PBS清洗。加入0.3%Triton-100 1ml,室溫孵育10min后棄去,PBS清洗。加入適量5%山羊血清室溫封閉30min后棄去,將蓋玻片覆蓋于一抗液上,置于一抗孵育濕盒內(nèi)4℃過夜,次日將蓋玻片重新置于6孔板中,PBS清洗;避光二抗孵育(37℃60min),PBS清洗;每孔滴加5μg/ml DAPI 1滴并將黏附蓋玻片蓋上,細(xì)胞核染色(37℃3min),PBS清洗;每孔滴加1滴抗熒光淬滅封片。熒光顯微鏡觀察細(xì)胞形態(tài),并選定位置分別拍細(xì)胞核和細(xì)胞質(zhì)染色照。
1.3觀察指標(biāo)觀察不同濃度IL-32α對(duì)胰腺癌細(xì)胞EMT、侵襲轉(zhuǎn)移、Jak2/STAT3信號(hào)通路蛋白的抑制結(jié)果。1.4統(tǒng)計(jì)學(xué)處理應(yīng)用SPSS 19.0統(tǒng)計(jì)軟件;計(jì)量資料以表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用LSD-t檢驗(yàn);P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1不同濃度IL-32α對(duì)胰腺癌細(xì)胞EMT的抑制結(jié)果見圖1。
圖1 不同濃度IL-32α對(duì)胰腺癌細(xì)胞EMT的抑制結(jié)果(a、b:Vimentin、CDH1、Zeb1 mRNA表達(dá)水平比較;c、d:E-cadherin、Vimentin、Zeb1蛋白表達(dá)水平比較,內(nèi)參蛋白為GAPDH;e、f:Vimentin蛋白免疫熒光染色強(qiáng)度比較;與0μg/ml組比較,*P<0.05;與10μg/ml組比較,#P<0.05;與25μg/ml組比較,△P<0.05)
由圖1 a、b可見,胰腺癌Panc-1、AsPC-1細(xì)胞EMT相關(guān)分子標(biāo)志物上皮樣標(biāo)志物E-cadherin的mRNA CDH1表達(dá)水平均呈IL-32α劑量依賴性上調(diào)(均P<0.05),而細(xì)胞間質(zhì)樣標(biāo)志物Vimentin、Zeb1的mRNA表達(dá)水平均呈IL-32α劑量依賴性下調(diào)(均P<0.05)。
由圖1 c、d可見,胰腺癌Panc-1、AsPC-1細(xì)胞E-cadherin的蛋白表達(dá)水平均呈IL-32α劑量依賴性上調(diào)(均P<0.05),而Valentin、Zeb1的蛋白表達(dá)水平均呈IL-32α劑量依賴性下調(diào)(均P<0.05)。
由圖1 e、f可見,胰腺癌Panc-1、AsPC-1細(xì)胞Vimentin蛋白表達(dá)于細(xì)胞質(zhì)中,免疫熒光染色強(qiáng)度呈IL-32α劑量依賴性下調(diào)(均P<0.05)。
2.2不同濃度IL-32α對(duì)胰腺癌細(xì)胞侵襲轉(zhuǎn)移的抑制結(jié)果見圖2。
圖2 不同濃度IL-32α對(duì)胰腺癌細(xì)胞侵襲轉(zhuǎn)移的抑制結(jié)果(a、b:MMP-2、MMP-9 mRNA表達(dá)水平比較;c、d:MMP-2、MMP-9蛋白表達(dá)水平比較,內(nèi)參蛋白為GAPDH;與0μg/ml組比較,*P<0.05;10μg/ml組比較,#P<0.05;與25μg/ml組比較,△P<0.05)
由圖2a、b可見,胰腺癌Panc-1、AsPC-1細(xì)胞中MMP2 mRNA均呈IL-32α劑量依賴性下調(diào)(均P<0.05),胰腺癌AsPC-1細(xì)胞中MMP9 mRNA呈IL-32α劑量依賴性下調(diào)(均P<0.05)。
由圖2c、d可見,胰腺癌Panc-1、AsPC-1細(xì)胞中MMP-2、MMP-9蛋白表達(dá)水平均呈IL-32α劑量依賴性下調(diào)(均P<0.05)。
2.3不同濃度IL-32α對(duì)胰腺癌細(xì)胞Jak2/STAT3信號(hào)通路蛋白的抑制結(jié)果見圖3。
圖3 不同濃度IL-32α對(duì)胰腺癌細(xì)胞Jak2/STAT3信號(hào)通路蛋白的抑制結(jié)果(內(nèi)參蛋白為GAPDH)
由圖3可見,胰腺癌Panc-1、AsPC-1細(xì)胞中Jak2/STAT3信號(hào)通路蛋白p-Jak2、Jak2、p-STAT3的表達(dá)水平均呈IL-32α劑量依賴性下調(diào)(均P<0.05),STAT3的表達(dá)水平不受IL-32α濃度的影響(P>0.05)。
胰腺癌的高度侵襲性通常被認(rèn)為是患者預(yù)后極差的重要原因之一。EMT是腫瘤發(fā)生、發(fā)展過程中重要的生物學(xué)過程;它迫使最初的腫瘤細(xì)胞獲得侵襲轉(zhuǎn)移能力從而轉(zhuǎn)移至腫瘤邊緣,或者通過血液、淋巴液等其他媒介轉(zhuǎn)移至人體的其他部位形成新的腫瘤灶[11]。EMT與胰腺癌患者淋巴結(jié)的轉(zhuǎn)移、門靜脈的癌栓形成以及患者的長(zhǎng)期生存率有顯著的相關(guān)性[12]。逆轉(zhuǎn)EMT正成為越來越重要的臨床治療胰腺癌的目標(biāo)。本研究結(jié)果顯示,IL-32α不但可以從基因?qū)用嫔洗龠M(jìn)轉(zhuǎn)錄因子CDH1,抑制轉(zhuǎn)錄因子Vimentin和Zeb1;還可從蛋白層面上促進(jìn)E-cadherin蛋白的表達(dá),抑制Vimentin和Zeb1蛋白的分泌。MMPs是一系列家族性肽鏈內(nèi)切酶,在EMT過程中具有降解細(xì)胞基底膜的蛋白水解活性。MMPs在胰腺癌中已被證明具有增加細(xì)胞侵襲性,促進(jìn)血管生成以及誘發(fā)藥物抗性等作用;有研究認(rèn)為其在胰腺癌的侵襲轉(zhuǎn)移過程中是另一種重要的監(jiān)控分子[13-14]。本研究結(jié)果顯示,胰腺癌Panc-1、AsPC-1細(xì)胞分泌高水平的MMP-2和MMP-9;且RT-PCR結(jié)果顯示MMP-2、MMP-9的mR-NA可被IL-32α抑制,Western blot結(jié)果也顯示IL-32α可抑制MMP-2、MMP-9蛋白的分泌。但是,值得注意的一個(gè)現(xiàn)象是IL-32α抑制MMPs蛋白程度要遠(yuǎn)大于抑制mRNA程度,這提示IL-32α抑制胰腺癌細(xì)胞MMPs蛋白的表達(dá)可能是通過抑制基因的轉(zhuǎn)錄后水平實(shí)現(xiàn)。綜上,筆者認(rèn)為IL-32α可通過影響蛋白水解酶的激活以及黏附能力來部分抑制胰腺癌細(xì)胞的侵襲轉(zhuǎn)移能力。這些發(fā)現(xiàn)反映了IL-32α影響胰腺癌生物學(xué)屬性的潛在可能,當(dāng)然,這需要進(jìn)一步的體內(nèi)外實(shí)驗(yàn)論證。
關(guān)于IL-32對(duì)腫瘤細(xì)胞EMT及侵襲轉(zhuǎn)移的影響,許多學(xué)者持有不同的觀點(diǎn)。一些研究者認(rèn)為異常分泌的IL-32β可通過調(diào)節(jié)VEGF-STAT3信號(hào)通路來刺激腫瘤細(xì)胞的遷移[3]。也有研究發(fā)現(xiàn)肺腺癌細(xì)胞中IL-32可通過激活NF-κB增強(qiáng)MMP-2、MMP-9的表達(dá),這些觀點(diǎn)與本研究的結(jié)論有所矛盾[4]。筆者認(rèn)為不同類型的腫瘤表達(dá)不同類型和數(shù)量的IL-32受體,這可以部分解釋不同亞型的IL-32對(duì)各種腫瘤細(xì)胞所造成的差異影響。這提示,不同濃度的IL-32α是影響腫瘤細(xì)胞相關(guān)的生物學(xué)性能的另一個(gè)因素。此外,Jak2/STAT3通路被認(rèn)為在胰腺炎誘導(dǎo)的Kras-依賴的胰腺癌腫形成中占有重要的地位[15]。本研究結(jié)果顯示Jak2/STAT3信號(hào)通路可以被IL-32α抑制;這間接表明IL-32α類似AG490(Jak2的特異性抑制劑)具有潛在抑制胰腺癌細(xì)胞侵襲轉(zhuǎn)移的能力,甚至存在逆轉(zhuǎn)慢性胰腺炎誘導(dǎo)胰腺癌的可能。重要的是,本研究中還發(fā)現(xiàn)胰腺癌Panc-1、AsPC-1細(xì)胞都可自發(fā)的分泌高水平p-STAT3;雖然這并不是公認(rèn)的典型與EMT相聯(lián)系的途徑,有研究證實(shí)STAT3通過相關(guān)機(jī)制改變轉(zhuǎn)錄因子Zeb1來影響腫瘤細(xì)胞的EMT[16]。本研究同樣發(fā)現(xiàn)胰腺癌Panc-1、AsPC-1細(xì)胞中Zeb1表達(dá)水平隨著p-STAT3的增多而顯著上升。因此,胰腺癌Panc-1、AsPC-1細(xì)胞中自發(fā)分泌的高水平p-STAT3被IL-32α顯著抑制可以認(rèn)為是其抑制胰腺癌EMT與侵襲轉(zhuǎn)移的一種重要機(jī)制;高水平的p-STAT3可能在維持EMT特性和胰腺癌細(xì)胞的侵襲性中發(fā)揮著重要作用。當(dāng)然,不排除其他可能存在的IL-32α抑制胰腺癌Panc-1、AsPC-1細(xì)胞EMT及侵襲轉(zhuǎn)移的潛在機(jī)制。
綜上所述,胰腺癌具有高度侵襲性和低生存率的特性,本研究結(jié)果表明,IL-32α在一定劑量范圍內(nèi)以劑量依賴性的方式抑制胰腺癌Panc-1、AsPC-1細(xì)胞EMT和侵襲轉(zhuǎn)移。IL-32α對(duì)于胰腺癌的精準(zhǔn)治療有潛在的臨床運(yùn)用前景。相比傳統(tǒng)化療藥物,IL-32α作為一種內(nèi)源性細(xì)胞因子具有無免疫原性以及低細(xì)胞毒性等優(yōu)勢(shì),患者可在一定程度上減輕傳統(tǒng)化療藥物所引起的諸多不良反應(yīng);但這些生物學(xué)功能均需要進(jìn)一步的體內(nèi)外實(shí)驗(yàn)研究。IL-32α及Jak2/STAT3信號(hào)通路或可作為潛在的藥理干預(yù)胰腺癌進(jìn)展的分子靶點(diǎn)。
[1]Shoda H,Fujio K,Yamaguchi Y,et al.Interactions between IL-32 and tumor necrosis factor alpha contribute to the exacerbation of immune-inflammatory diseases[J].Arthritis research&therapy,2006,8(6):R166.
[2]Shioya M,Nishida A,Yagi Y,et al.Epithelial overexpression of interleukin-32alpha in inflammatory bowel disease[J].Clinical and experimental immunology,2007,149(3):480-486.
[3]Park JS,Choi SY,Lee JH,et al.Interleukin-32beta stimulates migration of MDA-MB-231 and MCF-7cells via the VEGF-STAT3 signaling pathway[J].Cellular oncology,2013,36(6):493-503.
[4]Zeng Q,Li S,Zhou Y,et al.Interleukin-32 contributes to invasion and metastasis of primary lung adenocarcinoma via NF-kappaB induced matrix metalloproteinases 2 and 9 expression[J].Cytokine,2014,65(1):24-32.
[5]Sorrentino C,Di Carlo E.Expression of IL-32 in human lung cancer is related to the histotype and metastatic phenotype[J].American journal of respiratory and critical care medicine,2009,180(8):769-779.
[6]Huang C,Yang G,Jiang T,et al.The effects and mechanisms of blockage of STAT3 signaling pathway on IL-6 inducing EMT in human pancreatic cancer cells in vitro[J].Neoplasma,2011,58(5):396-405.
[7]Shaul YD,Freinkman E,Comb WC,et al.Dihydropyrimidine accumulation is required for the epithelial-mesenchymal transition[J].Cell,2014,158(5):1094-109.
[8]Lukaszewicz M,Mroczko B,Szmitkowski M.[The role of metalloproteinasesandtheirinhibitorsinpancreaticcancer][J].Postepy Higieny I Medycyny Doswiadczalnej,2008,62(1):141.
[9]Yu H,Kortylewski M,Pardoll D.Crosstalk between cancer and immune cells:role of STAT3 in the tumour microenvironment[J].Nature Reviews Immunology,2007,7(1):41.
[10]Xiong H,Zhang ZG,Tian XQ,et al.Inhibition of JAK1,2/STAT3 Signaling Induces Apoptosis,Cell Cycle Arrest,and Reduces Tumor Cell Invasion in Colorectal Cancer Cells[J].Neoplasia,2008,10(3):287.
[11]Lim J,Thiery JP.Epithelial-mesenchymal transitions:insights from development[J].Development,2012,139(19):3471.
[12]Kohler I,Bronsert P,Timme S,et al.Detailed analysis of epithelial-mesenchymal transition and tumor budding identifies predictors of long-term survival in pancreatic ductal adenocarcinoma[J].Journal of Gastroenterology&Hepatology,2015,30(S1):78-84.
[13]Gao L,Zheng M,Zhu Y,et al.Selection of Peptide Inhibitor to Matrix Metalloproteinase-2 Using Phage Display and Its Effects onPancreaticCancerCell lines PANC-1 and CFPAC-1[J].International Journal of Biological Sciences,2012,8(5):650.
[14]Haage A,Schneider IC.Cellular contractility and extracellular matrix stiffness regulate matrix metalloproteinase activity in pancreatic cancer cells[J].Faseb Journal Official Publication of the Federation of American Societies for Experimental Biology,2014,28(8):3589-3599.
[15]Lesina M,Kurkowski MU,LUDES K,et al.Stat3/Socs3 activation by IL-6 transsignaling promotes progression of pancreatic intraepithelial neoplasia and development of pancreatic cancer[J].Cancer cell,2011,19(4):456-469.
[16]Guo L,Chen C,Shi M,et al.Stat3-coordinated Lin-28-let-7-HMGA2 and miR-200-ZEB1 circuits initiate and maintain oncostatin M-driven epithelial-mesenchymal transition[J].Oncogene,2013,32(45):5272-5282.