鄭偉,張建新,譚克,陳思澈,范逸怡,黨勝春
(江蘇大學(xué)附屬醫(yī)院 普通外科,江蘇 鎮(zhèn)江 212001)
胰腺癌是一種臨床上常見的惡性腫瘤,其發(fā)病特點(diǎn)為起病隱匿、臨床癥狀不典型、腫瘤進(jìn)展迅速,早期即可出現(xiàn)周圍組織器官的轉(zhuǎn)移。使得對(duì)于胰腺癌患者的早期診斷顯得尤為困難,多數(shù)患者確診時(shí)已屬于腫瘤晚期,手術(shù)切除率僅為10%~15%[1],胰腺癌患者5年的生存率僅為1%~5%[2-3]。近年來吉西他濱作為輔助治療胰腺癌的一線化療藥物,但總體療效并不理想。根據(jù)Dragovich等[4]報(bào)道,單獨(dú)靜脈使用吉西他濱的臨床獲益率并不顯著,僅為23.8%。中位生存期5.7個(gè)月,6個(gè)月累計(jì)生存率46%,9個(gè)月累計(jì)生存率24%,中位疾病進(jìn)展時(shí)間2.1個(gè)月。這一現(xiàn)象提示胰腺癌細(xì)胞可能對(duì)抗癌藥物具有抗藥性,但其中的機(jī)制并不清楚。G蛋白信號(hào)調(diào)控因子2(G-protein signaling modulator 2,GPSM2)是一類信號(hào)調(diào)控因子,其主要作用是介導(dǎo)G蛋白信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路的調(diào)控,相關(guān)研究[5]發(fā)現(xiàn),GPSM2在胰腺癌組織中呈現(xiàn)出高表達(dá),表明高表達(dá)的GPSM2對(duì)胰腺癌的發(fā)生具有促進(jìn)作用,同時(shí)也發(fā)現(xiàn)其與胰腺癌的侵襲及遷移能力有關(guān)。本研究通過構(gòu)建GPSM2敲低表達(dá)和自然高表達(dá)的胰腺癌裸鼠模型,以吉西他濱作為干擾因素。在一定時(shí)間內(nèi)觀察裸鼠模型的瘤體生長情況來分析GPSM2的低表達(dá)對(duì)胰腺癌化療敏感性的影響。
MIA-PaCa-2細(xì)胞株,High DMEM基礎(chǔ)培養(yǎng)基(Hyclone公司),F(xiàn)BS胎牛血清(GIBCO公司),雙抗(北京夏斯生物科技有限公司),胰蛋白酶(Worthington公司),轉(zhuǎn)染試劑:Lipofectamine 2000(Invitrogen公司),realtime PCR試劑盒(南京百斯凱科技有限公司1),TRIzol(南京百斯凱科技有限公司),RNA溶解液(南京百斯凱科技有限公司),DEPC(北京博奧拓達(dá)科技有限公司),DNA凝膠回收試劑盒(天根生化科技有限公司),小量抽提試劑盒(杭州愛思進(jìn)生物技術(shù)有限公司)。
1.2.1 構(gòu)建GPSM2低表達(dá)的慢病毒表達(dá)載體應(yīng)用Oligo軟件設(shè)計(jì)引物,正義鏈:5'-GAT CC-(GN18)-(TTC AAG AGA)-(N18C)-TTT TTT G-3';反義鏈:3'-G(CN18)-(AAG TTC TCT)-(N18G)-AAA AAA CTT AA-5',合成引物(上海申工合成)。將DNA Oligo分別用TE(pH8.0)溶解,濃度為100 μmol/L。取相應(yīng)的正義鏈和反義鏈Oligo溶液,按配比配置退火反應(yīng)體系。在PCR儀上進(jìn)行退火處理,退火處理后得到濃度為10 μmol/L的shRNA模板。將所得模板溶液稀釋50倍,終濃度為200 nmol/L,用于連接反應(yīng)。取 10 μG LV3載體,進(jìn)行酶切處理。37 oC 酶切 1 h,瓊脂糖電泳,使用Agarose Gel DNA Purification Kit Ver 2.0回收,電泳檢測估算濃度,稀釋濃度至50 ng/μL。進(jìn)行載體的連接反應(yīng)后得到GPSM2下調(diào)表達(dá)的慢病毒表達(dá)載體。
1.2.2 GPSM2下調(diào)表達(dá)穩(wěn)轉(zhuǎn)細(xì)胞株的構(gòu)建 MIAPaCa-2胰腺癌細(xì)胞轉(zhuǎn)染前24 h接種于10 cm培養(yǎng)皿中,轉(zhuǎn)染前2 h再換用8 mL High DMEM新鮮培養(yǎng)基(不含抗生素,含10%FBS),轉(zhuǎn)染時(shí)細(xì)胞融合度為60%~70%。用GPSM2下調(diào)表達(dá)慢病毒載體轉(zhuǎn)染MIA-PaCa-2細(xì)胞株,37 ℃、5%CO2孵育轉(zhuǎn)染細(xì)胞4 h后,換完全培養(yǎng)基。每2天換用含3 μg/mL Puromycin新鮮完全培養(yǎng)基持續(xù)培養(yǎng)轉(zhuǎn)染MIA-PaCa-2細(xì)胞株45 d。
1.2.3 GPSM2下調(diào)表達(dá)穩(wěn)轉(zhuǎn)細(xì)胞株的鑒定 按TRIzol法分別提取MIA-PaCa-2細(xì)胞(空白對(duì)照組)、重組慢病毒載體轉(zhuǎn)染的MIA-PaCa-2細(xì)胞(shRNA GPSM2轉(zhuǎn)染組)、空載慢病毒載體轉(zhuǎn)染的MIAPaCa-2細(xì)胞(陰性對(duì)照組)的總RNA,42 ℃逆轉(zhuǎn)錄50 min,72 ℃預(yù)變性10 min,獲單鏈cDNA模板。實(shí)時(shí)熒光定量反應(yīng)體系共25 μL,反應(yīng)程序:95 ℃3 min,95 ℃ 30 s、55 ℃ 20 s、72 ℃ 20 s 40個(gè)循環(huán);然后72 ℃延伸 10 min。采用RQ=2-△△CT進(jìn)行計(jì)算GPSM2 mRNA的相對(duì)表達(dá)量。
1.2.4 裸鼠成瘤模型的構(gòu)建 裸鼠16只,雄性,4~6周齡,18~22 g。隨機(jī)分兩組,每組8只,于無特定病原體(SPF)條件下飼養(yǎng)。本實(shí)驗(yàn)所用動(dòng)物獲得了江蘇大學(xué)動(dòng)物倫理委員會(huì)批準(zhǔn)。胰蛋白酶消化處于對(duì)數(shù)生長期,生長狀態(tài)良好的GPSM2低表達(dá)與自然表達(dá)的MIA-PaCa-2細(xì)胞,分別制成5×106/mL細(xì)胞懸液,一組用1 mL注射器取0.20 mL GPSM2下調(diào)表達(dá)的穩(wěn)轉(zhuǎn)胰腺癌細(xì)胞株懸液接種于裸鼠右側(cè)腋窩皮下[6](每只裸鼠接種1×106個(gè)細(xì)胞);另一種用1 mL注射器取0.20 mL GPSM2自然表達(dá)的穩(wěn)轉(zhuǎn)胰腺癌細(xì)胞株懸液接種于裸鼠右側(cè)腋窩皮下(每只裸鼠接種1×106個(gè)細(xì)胞)。接種后于SPF條件飼養(yǎng)2周,按瘤體生長曲線穩(wěn)定,自發(fā)消退率低,裸鼠反應(yīng)性低、壽命一定,瘤體病理學(xué)檢測與對(duì)應(yīng)接種細(xì)胞一致等條件[7]作為裸鼠成瘤模型構(gòu)建成功標(biāo)準(zhǔn),并進(jìn)行下一步實(shí)驗(yàn)。
1.2.5 腫瘤化療敏感性實(shí)驗(yàn) 構(gòu)建好的裸鼠成瘤模型進(jìn)行實(shí)驗(yàn)分組:將上述兩組裸鼠再各自分為兩組。采用腹腔注射的給藥方式,一組注射吉西他濱,注射劑量100 mg/kg,另一組注射等體積生理鹽水,每周注射3次(每周一、三、五各注射1次),連續(xù)注射4周。每周4次用游標(biāo)卡尺測量并記錄各組裸鼠瘤體長徑及短徑(每周首次注射前及每次注射后24 h),末次注射后第3天取瘤體測量瘤體長短經(jīng),共測量16次。計(jì)算瘤體體積(V)變化,V=a2×b/2(a為瘤體長徑、b為瘤體短徑),以裸鼠瘤體體積的平均值繪制腫瘤生長曲線。
采用RQ=2-△△CT進(jìn)行計(jì)算相對(duì)表達(dá)量。計(jì)量資料實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示。3組細(xì)胞mRNA表達(dá)量差異及腫瘤體積差異用單因素方差分析,GPSM2表達(dá)與吉西他濱間的交互作用采用析因設(shè)計(jì)方差分析。SPSS 22.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,作圖用的是Graphpad prism 5軟件,P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
為了驗(yàn)證GPSM2下調(diào)表達(dá)的穩(wěn)轉(zhuǎn)細(xì)胞株是否構(gòu)建成功,對(duì)各組細(xì)胞株的GPSM2 mRNA進(jìn)行了熒光定量RCP檢測,結(jié)果顯示陰性對(duì)照組及空白對(duì)照組的GPSM2 mRNA表達(dá)量明顯高于shRNA GPSM2轉(zhuǎn)染組GPSM2 mRNA表達(dá)量,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均為P=0.000),分別為后者的39.5倍和45.5倍;而陰性對(duì)照組與空白對(duì)照組之間差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.058)(圖1)。
圖1 各組細(xì)胞GPSM2 mRNA表達(dá)量Figure 1 Expression levels of GPSM2 mRNA in each group of cells
各組裸鼠瘤體形態(tài)分析顯示,GPSM2自然表達(dá)+生理鹽水組裸鼠的瘤體體積最大,GPSM2自然表達(dá)+吉西他濱組瘤體體積稍大于GPSM2低表達(dá)+生理鹽水組,GPSM2低表達(dá)+吉西他濱組瘤體最小(圖2)。
選取每周首次注射前及每次注射后24 h(共4周)及末次注射后3 d取瘤體16個(gè)時(shí)間點(diǎn),測量并計(jì)算瘤體體積,繪制各組裸鼠瘤體的生長曲線。裸鼠瘤體體積生長速度及瘤體體積大小均為:GPSM2自然表達(dá)+生理鹽水組>GPSM2自然表達(dá)+吉西他濱組>GPSM2低表達(dá)+生理鹽水組>GPSM2低表達(dá)+吉西他濱組(圖3)。析因設(shè)計(jì)方差分析結(jié)果示(表1):⑴ 注射吉西他濱對(duì)于抑制裸鼠瘤體生長的主效應(yīng)具有明顯意義(P=0.000);⑵ 抑制GPSM2基因表達(dá)對(duì)于抑制裸鼠瘤體生長的主效應(yīng)具有明顯意義(P=0.000);⑶ 注射吉西他濱與抑制GPSM2基因表達(dá)對(duì)于抑制裸鼠瘤體生長的交互效應(yīng)尚未達(dá)到明顯統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.073)。同時(shí)單因素方差分析顯示,吉西他濱聯(lián)合下調(diào)GPSM2基因表達(dá)對(duì)于腫瘤生長的抑制作用相對(duì)于單獨(dú)吉西他濱或單獨(dú)下調(diào)GPSM2基因表達(dá)的單獨(dú)效應(yīng)均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.000、0.003)。
圖2 各組移植瘤大體情況 A:GPSM2自然表達(dá)+生理鹽水組;B:GPSM2自然表達(dá)+吉西他濱組;C:GPSM2低表達(dá)+生理鹽水組;D:GPSM2低表達(dá)+吉西他濱組Figure 2 The tumor xenografts in each group A: Natural GPSM2 expression plus saline group; B: Natural GPSM2 expression plus gemcitabine group; C: Low GPSM2 expression plus saline group; D: Low GPSM2 expression plus gemcitabine group
圖3 移植瘤生長曲線Figure 3 Growth curves of the tumor xenografts
表1 各組裸鼠瘤體體積及統(tǒng)計(jì)學(xué)分析結(jié)果Table 1 The tumor volume and statistical analysis of the nude mice were analyzed
G蛋白偶聯(lián)受體(G protein coupled receptors,GPCRs)是一類位于細(xì)胞膜表面,擁有7個(gè)跨膜螺旋結(jié)構(gòu)的蛋白質(zhì)超家族[8],它是人體細(xì)胞內(nèi)最為重要的信號(hào)通路,目前發(fā)現(xiàn)其參與了心血管系統(tǒng)、神經(jīng)系統(tǒng)、代謝系統(tǒng)等多個(gè)系統(tǒng)疾病、腫瘤的發(fā)生及腫瘤微血管生成,通過抑制GPCR可促進(jìn)腫瘤血管正?;痆9-10]。由于是一種信號(hào)通路,決定了其作為藥物靶點(diǎn)的特性,據(jù)報(bào)道[11],在已發(fā)現(xiàn)的5 0 0個(gè)藥物靶點(diǎn)中,絕大多數(shù)屬于GPCR。而臨床上大約有40%的藥物是以GPCR作為靶點(diǎn)[12-13]。
GPSM是一類負(fù)性調(diào)控GPCR的蛋白質(zhì)家族。早在1996年,Dohlman等[14]在酵母中發(fā)現(xiàn)GPSM蛋白。目前證實(shí)其廣泛表達(dá)于人體各種組織細(xì)胞當(dāng)中,且都擁有一個(gè)高度保守的結(jié)構(gòu)域[15-16]。這個(gè)結(jié)構(gòu)域是GPSM發(fā)揮生物學(xué)效應(yīng)的基礎(chǔ),去掉該結(jié)構(gòu)域?qū)?dǎo)致GPSM蛋白失去活性。研究[17]顯示GPSM蛋白是一種G蛋白信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)負(fù)性調(diào)控的鳥苷酸酶激活蛋白(GTPase activating proteins,GAPs)。通過與G蛋白偶聯(lián)受體的Gα亞基結(jié)合,顯著增加GTP酶的活性(加快達(dá)1 000倍),縮短激活的Gα-GTP的半衰期,從而抑制G蛋白信號(hào)通路,最終產(chǎn)生各種生物效應(yīng)[18]。目前發(fā)現(xiàn)GPSM在人體內(nèi)的表達(dá)參與了多種信號(hào)通路的調(diào)控,并發(fā)現(xiàn)與神經(jīng)性聽力損傷、高血壓、心臟病等一系列疾病相關(guān)[19-22]。研究[23]顯示GPSM與多種惡性腫瘤的發(fā)生、發(fā)展、轉(zhuǎn)移及耐藥形成有關(guān)。GPSM的表達(dá)產(chǎn)物參與了細(xì)胞的有絲分裂過程,通過調(diào)控細(xì)胞紡錘體的定位,影響細(xì)胞有絲分裂的G2/S期,進(jìn)而對(duì)腫瘤的發(fā)生發(fā)展有著重要影響。進(jìn)一步研究還發(fā)現(xiàn),GPSM的表達(dá)與腫瘤血管異常有關(guān)[24-26]。Hamzah等[27]通過研究發(fā)現(xiàn),GPSM5的缺失可促使腫瘤血管正?;?,有學(xué)者[28]提出GPSM通過影響腫瘤血管的正?;档土四[瘤放化療及免疫治療的療效,但是其中的機(jī)制并不清楚。我們猜想可能與GPCR信號(hào)通路抑制有關(guān)。
GPSM分為6個(gè)亞組,即GPSM2屬于B/R4亞組中的一員[29],在基因人染色體中的定位區(qū)域?yàn)?q31-1q32,其結(jié)構(gòu)包括5個(gè)外顯子和4個(gè)內(nèi)含子。其編碼的蛋白質(zhì)包含一個(gè)由120個(gè)氨基酸組成的高度保守的結(jié)構(gòu)域[30]。主要表達(dá)與人體細(xì)胞膜、細(xì)胞質(zhì)及細(xì)胞核[31]。目前發(fā)現(xiàn)GPSM2在多種惡性腫瘤組織中呈現(xiàn)高表達(dá)。研究[32-33]發(fā)現(xiàn)GPSM2與前列腺癌、乳腺癌、卵巢癌、非小細(xì)胞肺癌的發(fā)病有直接關(guān)系。但是有關(guān)GPSM2在胰腺癌當(dāng)中的研究較少。
通過前期研究[34],本課題組在胰腺癌組織中檢測到GPSM2呈現(xiàn)出明顯的高表達(dá),且GPSM2的表達(dá)水平還與胰腺癌的TNM分期及腫瘤分化程度相關(guān),進(jìn)一步研究還發(fā)現(xiàn),高表達(dá)的GPSM2促進(jìn)了胰腺癌細(xì)胞的侵襲和遷移能力。但是未對(duì)GPSM2與胰腺癌化療敏感性做相關(guān)研究。本實(shí)驗(yàn)通過在前期研究所獲結(jié)果的基礎(chǔ)上。通過構(gòu)建動(dòng)物模型,以吉西他濱作為處理因素來探討GPSM2的表達(dá)對(duì)胰腺癌化療敏感性的影響。
為了探索GPSM2對(duì)胰腺癌化療敏感性的影響,本研究通過構(gòu)建GPSM2敲低表達(dá)和自然高表達(dá)的胰腺癌裸鼠模型來探索這一問題,首先筆者根據(jù)前期研究的成果,發(fā)現(xiàn)在胰腺癌的眾多細(xì)胞株中,MIA-PaCa-2細(xì)胞株中GPSM2的表達(dá)量明顯較其他細(xì)胞株高,所以構(gòu)建GPSM2敲低表達(dá)慢病毒載體轉(zhuǎn)染MIA-PaCa-2細(xì)胞株得到GPSM2下調(diào)表達(dá)的穩(wěn)轉(zhuǎn)胰腺癌細(xì)胞株(GPSM2 homo 1211轉(zhuǎn)染的MIA-PaCa-2細(xì)胞株),通過檢測比較兩組細(xì)胞株中mRNA的表達(dá)水平來鑒定GPSM2下調(diào)表達(dá)穩(wěn)轉(zhuǎn)細(xì)胞株是否構(gòu)建成功,本研究通過RT-PCR技術(shù)測得下調(diào)表達(dá)的穩(wěn)轉(zhuǎn)胰腺癌細(xì)胞株(GPSM2 homo 1211轉(zhuǎn)染的MIA-PaCa-2細(xì)胞株)的表達(dá)水平明顯較MIA-PaCa-2細(xì)胞株低,表明GPSM2下調(diào)表達(dá)細(xì)胞株構(gòu)建成功。然后分別選用下調(diào)表達(dá)的穩(wěn)轉(zhuǎn)胰腺癌細(xì)胞株(GPSM2 homo 1211轉(zhuǎn)染的MIA-PaCa-2細(xì)胞株)和MIA-PaCa-2細(xì)胞株,構(gòu)建裸鼠成瘤模型。結(jié)果顯示:成功構(gòu)建了GPSM2下調(diào)表達(dá)的穩(wěn)轉(zhuǎn)胰腺癌細(xì)胞株。多因素析因設(shè)計(jì)方差分析腫瘤化療敏感性實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示:⑴ 吉西他濱對(duì)于抑制裸鼠瘤體生長的主效應(yīng)具有明顯意義(P=0.000),表明吉西他濱對(duì)于裸鼠瘤體的生長具有明顯的抑制作用。⑵ 下調(diào)GPSM2基因表達(dá)對(duì)于抑制裸鼠瘤體生長的主效應(yīng)具有明顯意義(P=0.000),表明抑制GPSM2基因的表達(dá)對(duì)裸鼠瘤體的生長具有抑制作用。⑶ 注射吉西他濱與抑制GPSM2基因表達(dá)對(duì)于抑制裸鼠瘤體生長的交互效應(yīng)尚未達(dá)到明顯統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.073),表明本研究過程中,抑制GPSM2基因的表達(dá)對(duì)于增強(qiáng)吉西他濱化療敏感性尚不明顯。但單因素方差分析將實(shí)驗(yàn)注射組裸鼠瘤體體積大小分別與對(duì)照注射組、實(shí)驗(yàn)未注射組比較均有明顯差異(P=0.000、0.003),說明通過抑制GPSM2基因表達(dá)的同時(shí)予以化療對(duì)于裸鼠瘤體生長的抑制作用較單獨(dú)抑制GPSM2基因表達(dá)和單獨(dú)化療更為有效。通過分析和討論有關(guān)實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)原理、實(shí)施方案以及相關(guān)統(tǒng)計(jì)學(xué)結(jié)果,并查閱相關(guān)文獻(xiàn)。筆者認(rèn)為在本研究的過程中,裸鼠模型的樣本數(shù)量、裸鼠情況及吉西他濱注射劑量可能對(duì)于實(shí)驗(yàn)結(jié)果的偏差產(chǎn)生了一定影響,使本研究未達(dá)到預(yù)期成果。根據(jù)本研究結(jié)果,得出以下結(jié)論:⑴ 抑制GPSM2基因的表達(dá)對(duì)胰腺癌細(xì)胞生長具有抑制作用。⑵ 抑制GPSM2基因表達(dá)對(duì)于增強(qiáng)胰腺癌細(xì)胞化療敏感性的作用尚未具有明顯意義,但通過抑制GPSM2基因表達(dá)的同時(shí)予以化療對(duì)于抑制胰腺癌細(xì)胞生長的效果較單獨(dú)抑制GPSM2基因表達(dá)和單獨(dú)化療更為有效,對(duì)于增加胰腺癌的化療療效同樣具有明顯的作用。通過檢測胰腺癌組織中GPSM2的表達(dá)可能成為增加胰腺癌患者化療療效的重要指標(biāo),并以GPSM2作為靶點(diǎn),設(shè)計(jì)針對(duì)GPSM2的靶向治療藥物,有望改善胰腺癌患者的治療效果。
后續(xù)研究將擴(kuò)大動(dòng)物模型樣本數(shù)量、采用不同吉西他濱注射劑量以及構(gòu)建耐藥動(dòng)物模型,并通過細(xì)胞學(xué)實(shí)驗(yàn)和相關(guān)分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)來進(jìn)一步驗(yàn)證GPSM2的表達(dá)對(duì)胰腺癌化療敏感性的影響。
[1]潘博, 郭俊超, 廖泉, 等. 吉西他濱與胰腺癌化療耐藥[J]. 中國普外基礎(chǔ)與臨床雜志, 2005, 12(5):530–532. doi:10.3969/j.issn.1007–9424.2005.05.037.Pan B, Guo JC, Liao Q, et al. Mechanism of Gemcitabine Resistance in Pancreatic Cancer Chemotherapy[J]. Chinese Journal of Bases and Clinics in General Surgery, 2005, 12(5):530–532.doi:10.3969/j.issn.1007–9424.2005.05.037.
[2]Zhang Q, Zeng L, Chen Y, et al. Pancreatic Cancer Epidemiology,Detection, and Management[J]. Gastroenterol Res Pract, 2016,2016:8962321. doi: 10.1155/2016/8962321.
[3]Siegel RL, Miller KD, Jemal A. Cancer statistics, 2016[J]. CA Cancer J Clin, 2016, 66(1):7–30. doi: 10.3322/caac.21332.
[4]Dragovich T, Burris HR, Loehrer P, et al. Gemcitabine plus celecoxib in patients with advanced or metastatic pancreatic adenocarcinoma: results of a phase II trial[J]. Am J Clin Oncol,2008, 31(2):157–162. doi: 10.1097/COC.0b013e31815878c9.
[5]魏彪, 張建新, 崔磊, 等. GPSM2過表達(dá)對(duì)人胰腺癌細(xì)胞遷移能力的影響[J]. 中國普通外科雜志, 2017, 26(3):311–316. doi:10.3978/j.issn.1005–6947.2017.03.007.Wei B, Zhang JX, Cui L, et al. Effects of GPSM2 over-expression on migration ability of human pancreatic cancer cells[J]. Chinese Journal of General Surgery, 2017, 26(3):311–316. doi:10.3978/j.issn.1005–6947.2017.03.007.
[6]王磊, 沈澤天, 朱錫旭. 吉西他濱對(duì)人胰腺癌裸鼠移植瘤的放療增敏作用[J]. 現(xiàn)代腫瘤醫(yī)學(xué), 2010, 18(9):1701–1704. doi:10.3969/j.issn.1672–4992.2010.09.09.Wang L, Shen ZT, Zhu XX. The radioenhancement effect of gemcitabine on human pancreatic cancer graft in nude mice[J].Journal of Modern Oncology, 2010, 18(9):1701–1704. doi:10.3969/j.issn.1672–4992.2010.09.09.
[7]陳志高. 腫瘤疾病動(dòng)物模型選擇及制作技術(shù)規(guī)范的研究[D]. 北京: 中國農(nóng)業(yè)大學(xué), 2006:1–45.Chen ZG. Selection of animal models for cancer and the technology[D]. Beijing: China Agricultural University, 2006:1–45.
[8]Lagerstr?m MC, Schi?th HB. Structural diversity of G proteincoupled receptors and significance for drug discovery[J]. Nat Rev Drug Discov, 2008, 7(4):339–357. doi: 10.1038/nrd2518.
[9]吳子彥. G蛋白偶聯(lián)受體激酶5(GRK5)在血管新生中的作用及機(jī)制研究[D]. 上海:復(fù)旦大學(xué), 2011:1–86.Wu ZY. Effect of G-protein-coupled receptor 5 (GRK5) on angiogenesis and the mechanism[D]. Shanghai: Fudan University,2011:1–86.
[10]Armulik A, Abramsson A, Betsholtz C. Endothelial/pericyte interactions[J]. Circ Res, 2005, 97(6):512–523.
[11]Overington JP, Al-Lazikani B, Hopkins A L. How many drug targets are there?[J]. Nat Rev Drug Discov, 2006, 5(12):993–996.
[12]Zhang R, Xie X. Tools for GPCR drug discovery[J]. Acta Pharmacol Sin, 2012, 33(3):372–384. doi: 10.1038/aps.2011.173.
[13]Sun J, Singh V, Kajino-Sakamoto R, et al. Neuronal GPCR controls innate immunity by regulating noncanonical unfolded protein response genes[J]. Science, 2011, 332(6030):729–732. doi: 10.1126/science.1203411.
[14]Dohlman HG, Thorner J. RGS proteins and signaling by heterotrimeric G proteins[J]. J Biol Chem, 1997, 272(7):3871–3874.
[15]Berman DM, Gilman AG. Mammalian RGS proteins: barbarians at the gate[J]. J Biol Chem, 1998, 273(3):1269–1272.
[16]Wieland T, Chen CK. Regulators of G-protein signalling: a novel protein family involved in timely deactivation and desensitization of signalling via heterotrimeric G proteins[J]. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol, 1999, 360(1):14–26.
[17]McCudden CR, Willard FS, Kimple RJ, et al. G alpha selectivity and inhibitor function of the multiple GoLoco motif protein GPSM2/LGN[J]. Biochim Biophys Acta, 2005, 1745(2):254–264.
[18]杜延順, 秉仁. 蛋白信號(hào)調(diào)節(jié)因子的結(jié)構(gòu)分類和功能[J]. 理科學(xué)進(jìn)展, 2005, 6(3):215–219.Du YS, Bing R. The Structure, Classification and Function of RGS Proteins[J]. Progress in Physiological Sciences, 2005, 6(3):215–219.
[19]Bhonker Y, Abu-Rayyan A, Ushakov K, et al. The GPSM2/LGN GoLoco motifs are essential for hearing[J]. Mamm Genome, 2016,27(1/2):29–46. doi: 10.1007/s00335–015–9614–7.
[20]Yariz KO, Walsh T, Akay H, et al. A truncating mutation in GPSM2 is associated with recessive non-syndromic hearing loss[J]. Clin Genet, 2012, 81(3):289–293. doi: 10.1111/j.1399–0004.2011.01654.x.
[21]Osei-Owusu P, Blumer KJ. Regulator of G Protein Signaling 2: A Versatile Regulator of Vascular Function[J]. Prog Mol Biol Transl Sci, 2015, 133:77–92. doi: 10.1016/bs.pmbts.2015.02.001.
[22]Zhang P, Mende U. Functional role, mechanisms of regulation, and therapeutic potential of regulator of G protein signaling 2 in the heart[J]. Trends Cardiovasc Med, 2014, 24(2):85–93. doi: 10.1016/j.tcm.2013.07.002.
[23]Dima SO, Tanase C, Albulescu R, et al. An exploratory study of inflammatory cytokines as prognostic biomarkers in patients with ductal pancreatic adenocarcinoma[J]. Pancreas, 2012, 41(7):1001–1007. doi: 10.1097/MPA.0b013e3182546e13.
[24]Cho H, Park C, Hwang IY, et al. Rgs5 targeting leads to chronic low blood pressure and a lean body habitus[J]. Mol Cell Biol, 2008,28(8):2590–2597. doi: 10.1128/MCB.01889–07.
[25]Li J, Adams LD, Wang X, et al. Regulator of G protein signaling 5 marks peripheral arterial smooth muscle cells and is downregulated in atherosclerotic plaque[J]. J Vasc Surg, 2004, 40(3):519–528.
[26]Berger M, Bergers G, Arnold B, et al. Regulator of G-protein signaling-5 induction in pericytes coincides with active vessel remodeling during neovascularization[J]. Blood, 2005,105(3):1094–1101.
[27]Hamzah J, Jugold M, Kiessling F, et al. Vascular normalization in Rgs5-deficient tumours promotes immune destruction[J]. Nature,2008, 453(7193):410–414. doi: 10.1038/nature06868.
[28]譚葉, 丁曉, 陸海軍, 等. RGS5在腫瘤抗血管生成的研究進(jìn)展[J].中華臨床醫(yī)師雜志: 電子版, 2014, 8(8):1549–1552. doi:10.3969/cma.j.issn.1674–0785.2014.08.033.Tan Y, Ding X, Lu HJ, et al. View of antiangiogenesis of regulator of G protein signaling 5 in tumor[J]. Chinese Journal of Clinicians:Electronic Edition, 2014, 8(8):1549–1552. doi:10.3969/cma.j.issn.1674–0785.2014.08.033.
[29]Zheng B, De Vries L, Gist FM. Divergence of RGS proteins:evidence for the existence of six mammalian RGS subfamilies[J].Trends Biochem Sci, 1999, 24(11):411–414.
[30]Nguyen CH, Ming H, Zhao P, et al. Translational control by RGS2[J]. J Cell Biol, 2009, 186(5):755–765. doi: 10.1083/jcb.200811058.
[31]Heximer SP, Lim H, Bernard JL, et al. Mechanisms governing subcellular localization and function of human RGS2[J]. J Biol Chem, 2001, 276(17):14195–14203.
[32]Han ZS, Ju G. Effects of electrical stimulation of the central nucleus of the amygdala and the lateral hypothalamic area on the oval nucleus of the bed nuclei of the stria terminalis and its adjacent areas in the rat[J]. Brain Res, 1990, 536(1/2):56–62.
[33]Bhat K, Wang F, Ma Q, et al. Advances in biomarker research for pancreatic cancer[J]. Curr Pharm Des, 2012, 18(17):2439–2451.
[34]彭云, 崔磊, 史堅(jiān)強(qiáng), 等. G蛋白信號(hào)調(diào)節(jié)蛋白2在胰腺癌組織中的表達(dá)及臨床意義[J]. 江蘇大學(xué)學(xué)報(bào):醫(yī)學(xué)版, 2016, 26(3):231–234.doi:10.13312/j.issn.1671–7783.y160054.Peng Y, Cui L, Shi JQ, et al. Expression of G-protein signaling modulator 2 in pancreatic cancer tissues[J]. Journal of Jiangsu University: Medicine Edition, 2016, 26(3):231–234. doi:10.13312/j.issn.1671–7783.y160054.