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        茄莖中抗氧化物酶的提取方法的研究

        2018-03-29 07:34:24孫風(fēng)梅
        關(guān)鍵詞:方法

        孫風(fēng)梅

        (大同市現(xiàn)代教育培訓(xùn)中心,山西大同037008)

        近年來,人們發(fā)現(xiàn)天然抗氧化劑成分的毒性遠遠低于人工合成的抗氧化劑毒性。因此,科學(xué)家們高度重視天然抗氧化劑的研究與開發(fā)。關(guān)于茄科植物中抗氧化性物質(zhì)的抗氧化性,文獻已經(jīng)進行了一定的研究[1-3],主要研究了辣椒、枸杞、茄桿中抗氧化物的提取以及對其抗氧化活性進行了測定和表征。抗氧化物酶是天然抗氧化劑的一類,目前,抗氧化物酶的制備主要從動物血液或肝臟中獲得,但是由于其安全性較差,人們正逐漸轉(zhuǎn)向從植物中提取。本實驗是利用茄科植物的茄莖,采用分級分離的方法從中提取抗氧化物酶。同時進行抗氧化物酶活力測定的研究,為天然抗氧化劑的開發(fā)應(yīng)用以及復(fù)合抗氧化性酶的性質(zhì)研究提供了一定依據(jù)。

        1 實驗部分

        1.1 主要儀器與試劑

        80-2型電動離心機,752型紫外分光光度計,SHZ-D(Ⅲ)循環(huán)水式真空泵,上海菁化科技有限公司。焦性沒食子酸,磷酸二氫鉀,磷酸氫二鈉,氯化鈉,硝酸銀,硫酸鋅,抗壞血酸,30%過氧化氫,丙酮,硫酸銨,氯化鋇,愈創(chuàng)木酚,以上試劑均為分析純。原料:將茄莖(S.Melongen,S.M.)粉碎過40目。將透析袋剪成適當(dāng)長度的小段于2%(W/V)碳酸氫鈉和10 mmol/L EDTA(pH8.0)中煮沸10 min。冷卻后,于4℃存放。

        1.2 實驗方法

        1.2.1 茄莖抗氧化酶的提取工藝

        圖1 抗氧化物的提取工藝流程

        1.2.2 抗氧化物酶活力測定

        1)SOD的酶活力測定

        按照文獻[4]、[5]二步法進行測定SOD的酶活力,首先測定自氧化速率(v1):取pH為8.2的緩沖液5 mL,水浴中預(yù)熱20 min,立刻加入40 mmol/L的鄰苯三酚溶液15 μL,反應(yīng)3 min,然后加入0.1 mol/L的抗壞血酸溶液20 μL。在λ350nm處測定吸光度,標(biāo)示為A1,以10 mmol/L的鹽酸代替鄰苯三酚作對照進行實驗,測定吸光度記為A2。自氧化速率計算公式為:

        然后測定酶抑制下的氧化速率(v2):按照上述自氧化速率測定方法,在加入鄰苯三酚和HCl前加入10 μL的酶液,測定的吸光度分別標(biāo)記為A3和A4。計算公式為:

        實驗以每毫升每分鐘抑制鄰苯三酚自氧化速率50%的酶量為1個活力單位計算公式為:

        其中:a0為SOD活力,單位u/mL;B為酶樣液的稀釋倍數(shù)/酶樣液的體積(mL);V為反應(yīng)總體積(mL)。

        2)POD的酶活力測定

        按照文獻[6]取pH=5.6磷酸緩沖液2.9 mL,加入0.1 mol/L 2%的過氧化氫溶液,0.1 mL 0.05 mol/L的愈創(chuàng)木酚溶液,酶上清液0.1 mL。在室溫下于752型分光光度計中470 nm比色,對照組不加酶液,加pH=5.6磷酸緩沖液3.0 mL,以每分鐘吸光值改變0.01個過氧化物酶的活力單位。POD的計算公式為:

        其中,a:酶活力,單位u/g;ΔA:反應(yīng)時間內(nèi)吸光值的變化;W:樣品質(zhì)量(g);t:反應(yīng)時間(min);D:酶液的倍數(shù)。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 溫度對SOD、POD的影響

        分別稱取20 g茄莖粉末,按照1.2.1進行水提、硫酸銨分級分離、丙酮分級分離以及硫酸鋅精制提取SOD、POD,對每一步驟得到的提取液在溫度為15、25、35、45、55和65℃ 條件下,按照1.2.2測定SOD和POD酶活力,結(jié)果見圖2。

        圖2 溫度對茄莖SOD和POD活力的影響

        可以看出:不同提取方法下提取的SOD和POD在不同溫度下測定的活力變化趨勢相一致,當(dāng)溫度升高時酶的活力增加,當(dāng)升到一定程度時活力達到最大,但隨著溫度再升高由于增加了氫鍵、范德華引力等相互作用,導(dǎo)致酶的活力下降,不同溫度下SOD和POD活力比較可以看出,提純步驟盡管不同,但每一步得到的SOD酶活力均在55℃時活力最大,對POD而言,在45℃時酶活力達到最大。

        為了進一步考察溫度對提取的茄莖SOD和POD活力影響的顯著性,以提取的SOD、POD在25℃時測定活力為對照,采用SPSS統(tǒng)計方法對提取的茄莖SOD和POD在不同溫度下的活力進行單個樣本的t檢驗,結(jié)果見表1、2。

        表1 茄莖SOD在不同溫度下活力(u/mL)比較

        表2 茄莖POD在不同溫度下活力/u·g-1

        可見:對于SOD各步提純方法得到的t值均大于t4,0.05,說明各步提取方法在不同溫度下的活力差異性顯著。對于POD僅有硫酸鋅精制后得到的t值大于>t4,0.05。說明進行硫酸鋅精制后在不同溫度下的活力差異性顯著。

        2.2 pH對SOD、POD酶活力影響

        分別稱取10 g的茄莖粉末,按照1.2.1方法提取酶液,測定在溫度為55℃的條件下,pH分別為6.0、6.5、7.0、7.5、8.0、8.5各步提取液的SOD活力;將溫度固定在45℃下,考察不同酸度為5.0、5.5、6.0、6.5、7.0、7.5、8.0下各步提取液的POD活力。結(jié)果如圖3所示。

        圖3 pH對茄莖SOD和POD活力的影響

        可以看出:不同提取方法下提取的SOD和POD在不同pH下測定的活力變化趨勢相一致,均呈現(xiàn)先增加后隨pH的增加活力降低的趨勢,對于SOD,當(dāng)pH為6.5時活力達到最大,對于POD,pH為6.5時活力最大。這是由于pH不同,酶分子空間結(jié)構(gòu)的有關(guān)基團的解離程度不同,從而影響了酶活性部位的構(gòu)象,也影響了與底物的結(jié)合的能力,同時影響酶的活性。

        為了考察pH對提取的茄莖SOD和POD活力影響的顯著性,以提取的SOD、POD在pH為7.0時測定的酶活力為對照,采用SPSS統(tǒng)計方法對不同提取方法提取的SOD、POD在不同pH下的酶活力進行單個樣本t檢驗,結(jié)果見表3、4所示。

        表3 提取的茄莖SOD在不同pH下活力/u·mL-1

        表4 提取的茄莖POD在不同pH下活力/u·g-1

        由表3和表4可知,比較各提取步驟提取的SOD、POD在不同pH得的t值均小于t4,0.05,說明pH對水提、硫酸銨提純、丙酮提純、硫酸鋅精制后得到的SOD、POD活力影響差異性不顯著。

        2.3 酶濃度影響

        分別稱取20 g的茄莖粉末,按照1.2.1方法提純,取不同的SOD和POD酶量在溫度55℃、pH為6.5條件下測定SOD的活力,在溫度為45℃、pH為6的條件下測定POD的活力,考察酶濃度對活力的影響,結(jié)果如圖4所示。

        圖4 不同酶濃度對SOD、POD酶活力影響

        由圖4可以看出,不同方法提取的茄莖SOD和POD活力變化趨勢一致,均隨酶量增加而增大,增加一定值后均趨于平衡,不同的提取方法均有一個最適的量。

        2.4 提取方法選

        稱取20 g茄莖粉末按照1.2.1方法進行水提、硫酸銨提純、丙酮提純、硫酸鋅精制,收集各步得到的酶液,在55℃、pH為6.5條件下按照1.2.2 a)方法測定SOD活力;在45℃、pH為6的條件下按照1.2.2 b)方法測定POD的活力。平行實驗3次,計算平均值,結(jié)果見表5。

        表5 不同提取方法下茄莖SOD和POD的活力

        由表5可以看出:不同提取條件得到提取物中SOD、POD活力不同,經(jīng)過水提、硫酸銨鹽析SOD活力達到最大為436.06 u/mL;經(jīng)水提、硫酸銨鹽析、丙酮提純后POD活力達最大,最高活力為可達50.07 u/g。

        3 結(jié)論

        1)SOD的提取最適溫度為55℃,最適pH為6.5,POD的提取最適溫度為45℃。pH為6.0適。SPSS統(tǒng)計方法t檢驗得出:不同溫度下SOD的提取方法差異顯著,而POD在硫酸鋅精制時差異顯著。在不同pH下SOD、POD的提取方法的差異均不顯著。

        2)經(jīng)過初提、硫酸銨鹽析、丙酮精制和超濾逐步進行提純得到酶類提取物,以酶活力為指標(biāo)優(yōu)化了提取SOD和POD的最佳條件,結(jié)果為:SOD可經(jīng)過粗提和硫酸銨分級分離、然后超濾可得;POD需要經(jīng)過初提、硫酸銨分級分離、丙酮分級分離和硫酸鋅精制,再進行超濾可得。

        [1]靳利娥,常麗萍,謝鮮梅.枸杞中抗氧化性物質(zhì)的提取及抗氧化性研究[J].林產(chǎn)化學(xué)與工業(yè),2006,26(3):55-58.

        [2]靳利娥,謝克昌.Antioxidant activities and composition of extracts from chilli[J].Int Food Sci and Tech,2008,43,666-672.

        [3]閻果蘭,張建明,靳利娥,等.茄莖中抗氧化性物質(zhì)的提取及性能研究[J].食品科技,2007(1):91-93.

        [4]杜秀敏,殷文璇,張慧.超氧化物歧化酶研究進展[J].中國生物工程雜志,2002,23(1):77-79.

        [5]Chum O K,Kim D O,Lee C Y.Superoxide radical scavenging activity of the major polyphenols in fresh plums[J].Agric Food Chem,2003,51:8067-8072.

        [6]蔣立科.現(xiàn)代生物化學(xué)實驗技術(shù)[M].北京:中國農(nóng)業(yè)出版社,2003.

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