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        高通量測(cè)序分析不同斷奶時(shí)間對(duì)南方黃牛犢牛瘤胃細(xì)菌菌群的影響

        2018-03-07 06:52:00盛笑昱羽中茅慧玲
        中國(guó)畜牧雜志 2018年2期
        關(guān)鍵詞:菌門(mén)犢牛瘤胃

        杜 琪 ,盛笑昱 ,楊 斌 ,王 羽中*,茅慧玲 *

        (1.浙江農(nóng)林大學(xué)動(dòng)物科技學(xué)院,浙江臨安 311300;2.浙江大學(xué)奶業(yè)科學(xué)研究所,浙江杭州 310012)

        斷奶是反芻動(dòng)物飼養(yǎng)過(guò)程中必須經(jīng)歷的一個(gè)階段,而早期斷奶是提高生產(chǎn)效率的技術(shù)手段之一。目前,犢牛斷奶的標(biāo)準(zhǔn)主要有3種:根據(jù)體重?cái)嗄蹋ㄕ?6.4%);根據(jù)日齡斷奶(占43%);根據(jù)干物質(zhì)采食量斷奶(占26.9%) ,此法較為推薦。大型品種犢牛當(dāng)連續(xù)3 d的干物質(zhì)采食量達(dá)到700~1 000 g時(shí)即可斷奶[1]。成功斷奶很大程度上依賴(lài)于斷奶前瘤胃的充分發(fā)育,因此,瘤胃發(fā)育狀況可作為合理的斷奶時(shí)間選擇標(biāo)準(zhǔn)之一。反芻動(dòng)物剛出生時(shí)主要依靠皺胃消化乳類(lèi)為主的日糧[2],隨之向反芻轉(zhuǎn)變的過(guò)程需要瘤胃的不斷發(fā)育和相關(guān)微生物的定植,從而利用植物性飼料[3]。幼齡反芻動(dòng)物通過(guò)接觸植物性飼料,刺激胃腸道尤其是瘤胃的發(fā)育,促進(jìn)瘤胃微生物區(qū)系的建立[4]。Rey等[5]研究認(rèn)為,瘤胃微生物的定植過(guò)程迅速,且為相繼發(fā)生。然而,早期斷奶幼齡反芻動(dòng)物的瘤胃微生物定植規(guī)律尚未可知。因此,本研究以南方黃牛犢牛為試驗(yàn)對(duì)象,采用根據(jù)干物質(zhì)采食量斷奶的方法,利用高通量測(cè)序技術(shù)探討不同斷奶時(shí)間犢牛瘤胃細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)以及多樣性的差異,進(jìn)一步研究早期斷奶犢牛瘤胃微生物的定植規(guī)律,為幼齡反芻動(dòng)物實(shí)施早期斷奶技術(shù)提供理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 試驗(yàn)設(shè)計(jì) 選取剛出生的健康無(wú)疾病的南方黃牛犢牛18頭,根據(jù)體重、出生日期相同或相近的原則,隨機(jī)分為4組,對(duì)照組3頭不早期斷奶(Normal Weaned,NW),早期斷奶組(Early weaned,EW)分為EW500組、EW750和EW1000組,每組5頭牛。NW組犢牛隨母牛一起生活,不飼喂開(kāi)食料及代乳粉,并于120日齡斷奶。3個(gè)早期斷奶組逐漸增加開(kāi)食料、青飼料的飼喂量,當(dāng)犢牛連續(xù) 3 d每日進(jìn)食固體飼料干物質(zhì)分別達(dá)500 g(EW500)、750 g(EW750)和1 000 g(EW1 000)時(shí),停喂代乳粉。

        EW組犢牛出生后4 h內(nèi)喝初乳,之后隨母自由進(jìn)食到6日齡。自7日齡起,每日飼喂乳液3 L,其中代乳粉1.5 L;14日齡起全部飼喂代乳粉,每日3 L直至斷奶。自10日齡起,開(kāi)食料和草料放在飼草中供犢牛自由采食。

        各組犢牛斷奶后,于晨飼前利用口腔取樣裝置[6]通過(guò)犢牛口腔采取瘤胃內(nèi)容物。-80℃保存,用于提取DNA,測(cè)定瘤胃細(xì)菌的多樣性。

        1.2 試驗(yàn)日糧 試驗(yàn)日糧由代乳粉、開(kāi)食料組成(北京精準(zhǔn)牧業(yè)有限公司)。代乳粉營(yíng)養(yǎng)成分見(jiàn)表1,開(kāi)食料組成及營(yíng)養(yǎng)成分見(jiàn)表2。

        表1 代乳粉的營(yíng)養(yǎng)成分

        表2 0~3月?tīng)倥i_(kāi)食料組成及營(yíng)養(yǎng)成分(風(fēng)干物質(zhì))

        1.3 測(cè)定項(xiàng)目與方法

        1.3.1 DNA提取 參照Gagen等[7]的珠磨法提取DNA。所有DNA樣品用Qubit2.0(Invitrogen)測(cè)定濃度。

        1.3.2 細(xì)菌16S rRNA基因序列擴(kuò)增 16S rDNA基因序列擴(kuò)增采用519F/907R通用引物[8]:上游為5'-GCCTC CCTCGCGCCATCAG-3';下游為5'-GCCTTGCCAGC CCGCTCAG-3'。為區(qū)分每個(gè)不同的樣本,在通用引物的上游序列中隨機(jī)添加8個(gè)核苷酸堿基的序列標(biāo)簽,即Barcoded-tag,形成Barcoded融合引物。PCR反應(yīng)條件:95℃預(yù)變性5 min;95℃變性40 s,55℃退火40 s,72℃延伸1 min,共30循環(huán);72℃延伸7 min[8]。

        1.3.3 IlluminaMiSeq測(cè)序及下機(jī)數(shù)據(jù)分析 IlluminaMiSeq測(cè)序委托北京諾禾致源生物信息科技有限公司完成。

        利用MOTHUR 軟件[9]中的trim.seqs語(yǔ)句將Barcode錯(cuò)配數(shù)≥1、引物錯(cuò)配數(shù)≥2、序列最短長(zhǎng)度<200 bp、最大模糊堿基數(shù)≥1的下機(jī)數(shù)據(jù)去除,并用該語(yǔ)句去除Barcode和primer,除雜后的文件以FASTA序列文件保存。去雜后的數(shù)據(jù)與Silva 數(shù)據(jù)庫(kù)中的小核糖體RNA全長(zhǎng)序列進(jìn)行比對(duì)。比對(duì)后的序列利用MOTHUR軟件中的screen.seqs語(yǔ)句進(jìn)行二次去雜。利用MOTHUR軟件中的chimera.uchime語(yǔ)句去除嵌合序列。

        利用 MOTHUR 軟件中的filter.seqs和cluster語(yǔ)句,以16S rRNA基因序列distance對(duì)去雜及去嵌合體后的序列進(jìn)行OTU聚類(lèi)。利用RDP(Ribosomal Database Project)分類(lèi)器賦予每條序列物種單元分類(lèi),物種分類(lèi)單元分為6層,依次為domain、phylum、class、order、family、genus。RDP分類(lèi)對(duì)genus的域值為0.8。

        測(cè)序深度評(píng)估:利用MOTHUR軟件計(jì)算每個(gè)樣品在OTU=0.03水平下的稀疏曲線(Rarefaction Curve),用于評(píng)估不同樣本之間的豐度。

        Alpha多樣性評(píng)估:利用MOTHUR軟件計(jì)算Chao、Shannon和Simpson指數(shù)。

        Beta多樣性評(píng)估:利用在線軟件http://bioinforma tics.psb.ugent.be/webtools/Venn/繪 制 韋 恩(Venn)圖,用于顯示不同處理之間共有和特有的OTU情況;用jest和thetayc算法計(jì)算每個(gè)樣品在OTU=0.03水平下的群落結(jié)構(gòu)的相似度;通過(guò)計(jì)算所有處理間的生態(tài)距離,繪制主坐標(biāo)分析PCoA(Principal Coordinate Analysis)圖。

        1.4 統(tǒng)計(jì)分析 數(shù)據(jù)采用Excel2010進(jìn)行整理,結(jié)果采用SAS 8.0統(tǒng)計(jì)軟件的Duncan′s方差分析對(duì)各組進(jìn)行多重比較,以P<0.05作為差異顯著性判斷標(biāo)準(zhǔn)。

        微生物各門(mén)屬和OUT需在每個(gè)處理組的至少3頭犢牛中出現(xiàn)(如果有組別少于或等于3頭,則需該組犢牛中都出現(xiàn))。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 多樣性分析 4個(gè)處理組瘤胃內(nèi)容物中細(xì)菌的稀疏曲線見(jiàn)圖1,雖然沒(méi)有得到完全的平緩,但斜率在不斷減小,說(shuō)明趨向于飽和。

        圖1 瘤胃內(nèi)容物細(xì)菌16S rRNA基因序列的稀疏曲線

        4個(gè)處理組的OTU覆蓋率均在95%以上(表3),能夠很好地反映樣品菌群情況。其中EW組的覆蓋率顯著高于NW組(P<0.05),說(shuō)明EW組的飽和性好于NW組。NW組犢牛瘤胃內(nèi)容物的OTU數(shù)、Chao指數(shù)和shannon指數(shù)顯著高于EW組(P<0.05),即NW組瘤胃內(nèi)細(xì)菌菌群豐度和多樣性高于EW組。

        基于UniFrac的加權(quán)主坐標(biāo)分析其第1主成分和第2主成分的貢獻(xiàn)率分別為20.35%和10.98%(圖2)。EW組的犢牛個(gè)體差異較為顯著,分布較為渙散,然而EW組和NW組分離較遠(yuǎn),說(shuō)明早期斷奶會(huì)給瘤胃細(xì)菌分布造成差異。

        圖2 瘤胃內(nèi)細(xì)菌結(jié)構(gòu)Unifrac加權(quán)主坐標(biāo)分析圖

        圖3 不同斷奶時(shí)間犢牛瘤胃液中細(xì)菌群落共享和獨(dú)有的OTU的Venn分析

        不同處理之間共有和特有的OTU 情況見(jiàn)圖3,4組共有OTU數(shù)為204個(gè),NW組特有240個(gè)OTU,而EW組特有的OTU數(shù)較少,EW500、EW750和EW1000組特有的OTU數(shù)分別為59、72和83。

        表3 97%相似性水平下物種豐富度和多樣性指數(shù)

        2.2 物種分類(lèi) 由表4可知,瘤胃內(nèi)細(xì)菌主要?dú)w于厚壁菌門(mén)、擬桿菌門(mén)和變型菌門(mén)三大類(lèi)。本研究中相對(duì)含量大于0.1%的門(mén)共有7個(gè)。統(tǒng)計(jì)結(jié)果表明,NW組瘤胃內(nèi)細(xì)菌最多的是厚壁菌門(mén)(53.9%),顯著高于EW750組和EW1000組(P<0.05);與NW組相比,EW組擬桿菌門(mén)相對(duì)較高,且在EW750組和EW1000組達(dá)顯著水平(P<0.05)。

        由表5可知,在相對(duì)含量大于0.1%的菌屬中,各組中均以普雷沃氏菌屬、瘤胃球菌屬和丁酸弧菌屬為優(yōu)勢(shì)菌屬,且普雷沃氏菌占比例最多。EW組的普雷沃氏菌屬較NW組有所增加(P>0.05)。NW組丁酸弧菌屬顯著低于EW500組(P<0.05)。NW組分支桿菌屬和顫螺菌屬顯著高于EW組(P<0.05)。EW組琥珀酸菌屬顯著高于NW組(P<0.05)。纖維桿菌屬以EW750組最多(0.46%;P<0.05)。各組間瘤胃球菌屬、月形單胞菌屬、梭菌屬和糞球菌屬相對(duì)含量無(wú)顯著差異(P>0.05)。

        3 討 論

        前期研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),早期斷奶有利于提高犢牛的生長(zhǎng)性能,促進(jìn)瘤胃發(fā)酵,增加揮發(fā)性脂肪酸含量,降低氨態(tài)氮濃度,提高瘤胃內(nèi)源性酶活,改變瘤胃纖維降解菌的組成,且不同斷奶時(shí)間存在一定差異[10]。然而,瘤胃微生物大多為未培養(yǎng)微生物,依靠常用的熒光定量PCR技術(shù)并不能充分反映瘤胃細(xì)菌菌群的變化,只局限于一定豐度細(xì)菌或特定微生物,對(duì)未知微生物均未涉及。本試驗(yàn)應(yīng)用Illumina-MiSeq高通量測(cè)序技術(shù),突破傳統(tǒng)的培養(yǎng)方法和分子生物學(xué)方法,可以獲得大量測(cè)序數(shù)據(jù),通過(guò)比對(duì)或聚類(lèi)分析,研究瘤胃微生物群落物種組成的變化,同時(shí)探尋一些低豐度或未知的細(xì)菌,能更加全面了解早期斷奶對(duì)幼齡反芻動(dòng)物瘤胃細(xì)菌菌群的影響以及不同斷奶時(shí)間造成的差異。

        對(duì)于成年牛而言,瘤胃是一個(gè)非常重要的發(fā)酵場(chǎng)所,其中含有復(fù)雜的厭氧微生物,包括細(xì)菌、古菌、真菌、原蟲(chóng)和病毒。這些微生物可以利用飼料生產(chǎn)出揮發(fā)性脂肪酸、氨態(tài)氮和微生物蛋白等;還可與宿主產(chǎn)生互作,影響宿主的健康、生產(chǎn)性能等[5]。然而,犢牛剛出生時(shí)瘤胃尚未發(fā)育,瘤胃內(nèi)處于無(wú)菌且無(wú)胚芽狀態(tài),隨著日糧的攝入及外界環(huán)境中的微生物進(jìn)入瘤胃,逐漸形成復(fù)雜多樣的微生物區(qū)系[11]。大多數(shù)瘤胃細(xì)菌如蛋白分解菌、纖維素分解菌和其他種類(lèi)細(xì)菌在14日齡犢牛的瘤胃微生物區(qū)系中即可發(fā)現(xiàn)[12]。Jami等[13]認(rèn)為,瘤胃菌群同時(shí)受日糧和年齡的影響。本研究各組優(yōu)勢(shì)菌門(mén)為厚壁菌門(mén)和擬桿菌門(mén),與前人研究結(jié)果一致[14]。Thoetkiattikul等[15]研究發(fā)現(xiàn),飼喂高纖維(88%)和低淀粉(2%)飼糧的奶牛瘤胃內(nèi)擬桿菌門(mén)和厚壁菌門(mén)含量分別高達(dá)66.53%和24.98%。Rey等[5]對(duì)奶牛從出生至斷奶時(shí)期瘤胃菌群的定植進(jìn)行研究,發(fā)現(xiàn)犢牛2日齡時(shí)瘤胃細(xì)菌主要包含變形菌門(mén)(70%)和擬桿菌門(mén)(14%),之后擬桿菌門(mén)隨日齡增長(zhǎng)逐漸取代變形菌門(mén)。厚壁菌門(mén)中多數(shù)為梭菌目,具有纖維消化作用。本研究結(jié)果顯示,EW組的厚壁菌門(mén)較NW組少,可能原因是與NW組未采食開(kāi)食料相比,EW組10日齡即開(kāi)始采食開(kāi)食料,飼糧的攝入改變了菌群組成。

        表4 相對(duì)含量大于0.1%(序列占測(cè)序總量比例)的菌門(mén)

        表5 相對(duì)含量大于0.1%(序列占測(cè)序總量比例)的菌屬

        奶牛瘤胃中普雷沃氏菌屬、丁酸菌屬、纖維桿菌屬和密螺旋體屬等為優(yōu)勢(shì)菌屬[16],與本研究的結(jié)果有所差異,這可能是試驗(yàn)動(dòng)物不同所造成。Wood等[17]利用純培養(yǎng)的方法分離出普雷沃氏菌屬,分析能夠占到瘤胃細(xì)菌的60%,它擁有高活性的半纖維分解菌[18],可以降解植物非纖維多糖和蛋白質(zhì)[19]。Rey等[5]研究認(rèn)為,在15~83日齡,隨著固體飼料的攝入,普雷沃氏菌屬占有主導(dǎo)地位。利用454焦磷酸測(cè)序及分類(lèi)學(xué)分析鹿[20]和成年奶牛[13]瘤胃菌群,結(jié)果也顯示普雷沃氏菌屬是優(yōu)勢(shì)菌屬。本研究結(jié)果與這些報(bào)道較為一致,與NW組相比,EW組犢牛瘤胃中普雷沃氏菌屬增多。這些結(jié)果說(shuō)明犢牛越早采食固體飼料,其瘤胃菌群越接近于成年牛。丁酸弧菌屬是瘤胃中主要的產(chǎn)丁酸菌,同樣也是主要的半纖維素降解菌[21],琥珀酸菌屬雖然不能發(fā)酵碳水化合物和氨基酸,但能將琥珀酸鹽轉(zhuǎn)化為丙酸[22]。本研究發(fā)現(xiàn),EW500組的丁酸弧菌屬和琥珀酸菌屬較NW組均顯著增加,該兩菌屬的變化與瘤胃內(nèi)揮發(fā)性脂肪酸丁酸和丙酸含量的結(jié)果一致[10]。揮發(fā)性脂肪酸是經(jīng)由瘤胃上皮代謝的,它對(duì)瘤胃容積和瘤胃乳頭的發(fā)育有刺激作用,能夠促進(jìn)瘤胃的發(fā)育[23]。由此可見(jiàn),與傳統(tǒng)飼喂相比,盡早接觸固體飼料可以使?fàn)倥A鑫冈跀嗄糖熬偷玫捷^好的發(fā)育,為斷奶后的健康生長(zhǎng)奠定基礎(chǔ)。Li等[24]首次在瘤胃上皮發(fā)現(xiàn)分支桿菌屬的定植,并認(rèn)為該菌屬?zèng)]有發(fā)酵飼料的功能。此外,有研究報(bào)道在動(dòng)物飼喂高精料日糧時(shí)分支桿菌屬對(duì)瘤胃上皮的健康有負(fù)面影響[25]。本試驗(yàn)中分支桿菌屬在EW組顯著降低,其原因有待進(jìn)一步探究。

        然而,本研究發(fā)現(xiàn)早期斷奶3個(gè)組間瘤胃微生物變化并不明顯,可能原因是這3個(gè)組同時(shí)采食固體飼料,且飼料組成相同。

        4 結(jié) 論

        早期斷奶可以改變犢牛的瘤胃細(xì)菌多樣性和物種豐度,丁酸弧菌屬、琥珀酸菌屬、纖維桿菌屬增加,分支桿菌屬降低,而3個(gè)早期斷奶組間差異并不顯著。從瘤胃微生物角度考慮,推薦在犢牛連續(xù)3 d每日進(jìn)食固體飼料干物質(zhì)達(dá)500 g時(shí)斷奶。

        [1] Morrill J L. The calf: birth to12 weeks[M]//Large dairy herd management. Sweden: Hawkesbury Agricultural College, 1992:401.

        [2] Davis C L, Drackley J K.The development, nutrition, and management of the young calf[M]. Ames IA: Iowa State University Press,1998.

        [3] Heinrichs J. Rumen development in the dairy calf[J]. Adv Dairy Technol, 2005, 17:179-187.

        [4] 馬志遠(yuǎn), 李飛, 李發(fā)弟, 等. 早期斷奶對(duì)湖羊羔羊生長(zhǎng)性能及胃腸道發(fā)育的影響[J]. 動(dòng)物營(yíng)養(yǎng)學(xué)報(bào), 2015, 27(5):1385-1393.

        [5] Rey M, Enjalbert F, Combes S,et al. Establishment of ruminal bacterial community in dairy calves from birth to weaning is sequential[J]. J Appl Microbiol, 2014, 116(2):245-257.

        [6] Shen J S, Chai Z, Song L J,et al. Insertion depth of oral stomach tubes may affect the fermentation parameters of ruminal fluid collected in dairy cows[J]. J Dairy Sci, 2012, 95(10):5978-5984.

        [7] Gagen E J, Denman S E, Padmanabha J,et al. Functional gene analysis suggests different acetogen population in the bovine rumen and tammar wallaby forestomach[J]. Appl Environ Microbiol, 2010, 76:7785-7795.

        [8] Wang Y, Qian P Y. Conservative fragments in bacterial 16S rRNA genes and primer design for 16S ribosomal DNA amplicons in metagenomicstudies[J]. PLoS One, 2009,4:e7401.

        [9] Schloss P D, Westcott S L, Ryabin T,et al. Introducing mothur: open-source, platform-independent, communitysupported software for describing and comparing microbial communities[J]. Appl Environ Microbiol, 2009, 75(23):7537-7541.

        [10] Mao H L, Xia Y F, Tu Y,et al. Effects of various weaning times on growth performance, rumen fermentation and microbial population[J]. Asian-Aust J Anim Sci, 2017, 30:11-12.

        [11] Ziolecki A, Briggs C A.The microflora of the rumen of young calf: II. Source, nature and development[J]. J Appl Bacteriol,1961, 24(2):148-163.

        [12] Li M, Zhou M, Adamowicz E,et al. Characterization of bovine ruminal epithelial bacterial communities using 16S rRNA sequencing PCR-DGGE and qRT-PCR analysis[J]. Veter Microbiol, 2012, 155:72-80.

        [13] Jami E, Israel A, Kotser A,et al. Exploring the bovine rumen bacterial community from birth to adulthood[J]. ISME J, 2013,7(6):1069-1079.

        [14] Wu S T, Baldwin R L, Li W Z,et al. The Bacterial community composition of the bovine rumen detected using pyrosequencing of 16S rRNAgenes[J]. Metageno, 2012, 1:1-11.

        [15] Thoetkiattikul H, Mhuantong W, Laothanachareon T,et al.Comparative analysis of microbial profiles in cow rumen fed with different dietary fiber by tagged 16S rRNA gene pyrosequencing[J]. Curr Microbiol, 2013, 67(2):130-137.

        [16] 徐俊, 胡麗芳, 侯玉潔, 等. 不同牧草來(lái)源飼糧對(duì)奶牛瘤胃液中細(xì)菌群落結(jié)構(gòu)多樣性的影響[J].動(dòng)物營(yíng)養(yǎng)學(xué)報(bào), 2015,27(11): 3549-3557.

        [17] Wood J, Scott K P, Avgustin G,et al. Estimation of the relative abundance of different Bacteroides and Prevotellaribotypes in gut samples by restriction enzyme profiling of PCR-amplified 16SrRNA gene sequences[J]. Appl Environ Microbiol, 1998,64:3683-3689.

        [18] Matsui H, Ogata K, Tajima K,et al. Phenotypic characterization of polysaccharidases produced by four Prevotella type strains[J]. Curr Microbiol, 2000, 41(1):45-49.

        [19] Kamrad N. Rumen microbial ecosystem[J]. Curr Sci, 2005,89(1):124-135.

        [20] Pitta D W,Pinchak W E, Down S E,et al. Rumen bacterial diversity dynamics associated with changing from bermudagrass hay to grazed winter wheat diets[J]. Microbial Ecol, 2010, 59(3):511-522.

        [21] Diez-Gonzalez F, Bond D R, Jennings E,et al. Alternative schemes of butyrate production in Butyrivibrio fibrisolvens and their relationship to acetate utilization, lactate production, and phylogeny[J]. Arch Microbiol, 1999, 171(5): 324-330.

        [22] Van Gylswyk N O. Succiniclasticumruminis gen nov, spnov, a ruminal bacterium converting succinate to propionate as the sole energy-yielding mechanism[J]. Inter JSystemBacteriol,1995, 45(2):297.

        [23] Paez Lama S, Grilli D, Egea V,et al. Rumen development and blood metabolites of Criollo kids under two different rearing systerms[J]. Livest Sci, 2014, 167:171-177.

        [24] Li M, Zhou M, Adamowicz E,et al. Characterization of bovine ruminal epithelial bacterial communities using 16s rrna sequencing, pcr-dgge, and qrt-pcr analysis[J]. Veter Microbiol,2012,155(1):72-80.

        [25] Liu J H, Bian G R, Zhu W Y,et al. High-grain feeding causes strong shifts in ruminal epithelial bacterial community and expression of toll-like receptor genes in goats[J]. Front Microbiol, 2015, 6: 167.

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