答：采血是動物實(shí)驗(yàn)常見的操作，我們可以在不同的情況下選擇恰當(dāng)?shù)姆椒ǎF(xiàn)總結(jié)如下：

(1)剪尾采血：所需血量較少時采用，適用于涂片、試紙檢測血糖等。鼠尾消毒后，浸在45℃～60℃左右的溫水中10～30 s，使尾部血管充盈，用刀片或剪刀割去尾尖小鼠1～2 mm，大鼠3～5 mm，自尾根向尾尖捋尾巴，讓血液流出。每只實(shí)驗(yàn)動物一般可采血10次以上。小鼠每次可取血0.1 mL；大鼠0.3～0.5 mL。如果長期反復(fù)取血，由近鼠尾末端向近心端操作。

(2)眼眶靜脈叢采血：采血量較多，且動物不致死，適用于實(shí)驗(yàn)中血液指標(biāo)的檢驗(yàn)。取血時拇指及食指壓迫頸部兩側(cè)，使眶后靜脈叢充血。手持硬質(zhì)玻璃滴管(毛細(xì)管內(nèi)徑0.5～1.0 mm)，與鼠面成45度的夾角，由眼內(nèi)角刺入，刺入后再深入小鼠約2～3 mm，大鼠約4～5 mm，穿刺適當(dāng)血液能自然流出。多次建議左右兩眼輪換取血。小鼠每次可采血0.2～0.3 mL；大鼠每次可采血0.5～1.0 mL。

(3)摘眼球取血：此采血方法動物可致死，多用于小鼠。小鼠倒置，盡量將小鼠眼周皮膚往頸后壓，使眼球突出，用眼科彎鑷迅速夾去眼球，血液從眼眶中流入EP管。注意不要反復(fù)用鑷子刺眼眶，容易溶血。每次采血量0.6～0.1 mL。

(4)腹主動脈采血：采血量大，動物致死，多用于大鼠。動物麻醉，仰臥固定，從腹正中線皮膚切開腹腔，使腹主動脈清楚暴露。用注射器抽取血液，速度要慢，防止溶血。小鼠每次可采血1.0～1.5 mL；大鼠每次可采血8 mL以上。