楊桂芹 王 琪 劉海英 董維國 朱 鑫

(沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué)畜牧獸醫(yī)學(xué)院，沈陽 110866)

飼糧菊糖添加水平對肉仔雞盲腸、直腸菌群結(jié)構(gòu)及主要菌群數(shù)量的影響

楊桂芹 王 琪 劉海英 董維國 朱 鑫

(沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué)畜牧獸醫(yī)學(xué)院，沈陽 110866)

本試驗旨在研究飼糧菊糖添加水平對肉仔雞盲腸和直腸菌群結(jié)構(gòu)和主要菌群數(shù)量的影響。采用單因素完全隨機化設(shè)計，選用300只1日齡愛拔益加肉仔雞，隨機分成5組，每組6個重復(fù)，每個重復(fù)10只。5組肉仔雞分別飼喂在基礎(chǔ)飼糧中添加0(對照組)、0.5、1.5、2.5和5.0 g/kg菊糖的試驗飼糧。試驗期為6周。采用PCR-變性梯度凝膠電泳(DGGE)和定量PCR(qPCR)技術(shù)對42日齡肉仔雞盲腸和直腸菌群結(jié)構(gòu)及主要菌群數(shù)量進行測定。結(jié)果表明：1)飼糧菊糖添加水平對肉仔雞盲腸和直腸菌群豐富度、盲腸菌群香農(nóng)指數(shù)以及直腸菌群均勻度均無顯著影響(P>0.05)，但顯著降低了盲腸菌群均勻度和直腸菌群香農(nóng)指數(shù)(P<0.05)。PCR-DGGE圖譜上部分優(yōu)勢條帶序列分析表明，飼糧添加菊糖促進了肉仔雞盲腸和直腸厚壁菌門(Firmicutes)中產(chǎn)糞甾醇真細菌(Eubacteriumcoprostanoligenes)、腸單胞球菌(Intestinimonassp.)和盲腸腸球菌(Enterococcuscecorum)等細菌的增殖。2)飼糧菊糖添加水平顯著影響了肉仔雞盲腸、直腸總細菌和大腸桿菌數(shù)量(P<0.05)。二次曲線分析顯示，當(dāng)菊糖添加水平分別為2.71和2.66 g/kg時，盲腸總細菌和大腸桿菌數(shù)量最少；與對照組相比，飼糧添加1.5、2.5、5.0 g/kg菊糖顯著降低了盲腸乳酸菌數(shù)量(P<0.05)，飼糧添加0.5 g/kg菊糖顯著增加了直腸乳酸菌數(shù)量(P<0.05)；飼糧添加5.0 g/kg菊糖時肉仔雞盲腸、直腸雙歧桿菌數(shù)量及直腸產(chǎn)氣莢膜梭菌數(shù)量均為最高，且與對照組差異顯著(P<0.05)。綜上，在本試驗條件下，有利于改善肉仔雞腸道菌群結(jié)構(gòu)和促進有益菌增殖的菊糖添加水平為2.5～5.0 g/kg。

菊糖；菌群結(jié)構(gòu)；菌群數(shù)量；腸道；肉仔雞

腸道微生物及其代謝對肉仔雞的營養(yǎng)、健康與疾病具有重要的影響和調(diào)控作用，通過營養(yǎng)方式干預(yù)宿主腸道微生物健康已經(jīng)成為動物營養(yǎng)學(xué)研究的熱點[1]。菊糖對肉仔雞腸道的有益功能已經(jīng)得到廣泛證實，其應(yīng)用也日益受到重視[2-3]。菊糖，也稱菊粉，是通過D-果糖分子經(jīng)β(1→2)糖苷鍵連接而成(果聚糖)，主要來源于菊芋和菊苣塊根中。菊糖無味、無固定形態(tài)，易溶于水，熔點高達178 ℃，相對體積質(zhì)量1.35，有較強的熱穩(wěn)定性。孫瑞鋒等[4]研究表明，飼糧添加3 g/kg的菊糖可使肉仔雞盲腸大腸桿菌和沙門氏菌數(shù)量分別降低14.50%和36.42%，有效減少了肉仔雞排泄物氨氣散發(fā)量。研究發(fā)現(xiàn)，來源于菊苣根中的菊糖顯著促進了肉仔雞回腸和盲腸雙歧桿菌、乳酸桿菌等有益菌的繁殖[5]；隨著菊糖添加量的增加，公豬大腸和糞中糞臭素濃度隨之減少，而產(chǎn)氣莢膜梭菌在結(jié)腸和直腸的數(shù)量降低，并推測糞臭素濃度的減少可能與產(chǎn)氣莢膜梭菌數(shù)量的減少、中短鏈脂肪酸含量的增加有關(guān)[6]。然而，另外的研究表明，飼糧添加菊糖對肉仔雞腸道菌群無顯著影響[7]。本課題組前期研究結(jié)果表明，飼糧添加菊糖不影響肉仔雞的生產(chǎn)性能，但添加5.0 g/kg的菊糖顯著降低了肉仔雞排泄物、盲腸和直腸吲哚和糞臭素濃度[8]，為進一步研究其對肉仔雞腸道菌群的影響，特進行飼糧菊糖添加水平對肉仔雞盲腸、直腸菌群結(jié)構(gòu)及主要菌群數(shù)量影響的研究。

1 材料與方法

1.1 試驗材料及飼糧

試驗用菊糖為上海某公司生產(chǎn)，純度>92%，相對分子質(zhì)量近似5 000，為白色結(jié)晶粉末，無味?；A(chǔ)飼糧為玉米-豆粕型粉狀料，其組成及營養(yǎng)水平同文獻[8]。

1.2 試驗設(shè)計及飼養(yǎng)管理

試驗采用單因素完全隨機化設(shè)計，選取300只1日齡愛拔益加肉仔雞，隨機分為5組，每組6個重復(fù)，每個重復(fù)10只。Ⅰ組為對照組，飼喂基礎(chǔ)飼糧，Ⅱ、Ⅲ、Ⅳ和Ⅴ組分別飼喂在基礎(chǔ)飼糧中添加0.5、1.5、2.5、5.0 g/kg菊糖的試驗飼糧。試驗雞采用3層全階梯籠養(yǎng)，熱風(fēng)爐供暖，人工喂料，乳頭飲水器供水，機械清糞，自由采食和飲水，試驗期為6周。按常規(guī)方法進行疫苗接種和飼養(yǎng)管理。

1.3 樣品采集

肉仔雞飼養(yǎng)至42日齡時，每個重復(fù)取1只雞(確保每組3雄3雌)，頸靜脈放血處死，迅速解剖，分離盲腸和直腸，液氮速凍后，保存在-80 ℃條件下，備測。

1.4 測定指標和方法

1.4.1 菌群結(jié)構(gòu)

1)DNA提取。盲腸和直腸樣本在4 ℃冰箱解凍后，每2只雞(1雌1雄)的盲腸、直腸分別混合后，采用十六烷基三甲基溴化銨(CTAB)手提法分別提取15個盲腸、15個直腸樣本基因組DNA。

2)細菌16S rDNA片段的PCR擴增：以樣品基因組DNA為模板，采用細菌通用引物GC-338F(5′-CGCCCGGGGCGCGCCCCGGGGCGGGGCGGGGGCGCGGGGGGCCTACGGGAGGCAGCAG-3′，下劃線部分為GC夾)和518R(5′-ATTACCGCGGCTGCTGG-3′)擴增樣品16S rDNA的V3區(qū)序列。PCR擴增體系(50 μL)為：10×PCR buffer 5 μL、dNTP(2.5 mmol/L)3.2 μL、rTaq(5 U/μL)0.4 μL、GC-338F(20 μmol/L)1 μL、518R(20 μmol/L)1 μL、模板DNA 50 ng，補雙蒸水(ddH2O)至50 μL。PCR擴增程序為：94 ℃預(yù)變性5 min；94 ℃變性1 min，55 ℃復(fù)性45 s，72 ℃延伸1 min，30個循環(huán)；最終72 ℃延伸10 min。

3)PCR產(chǎn)物的變性梯度凝膠電泳(DGGE)分析。取10 μL PCR的產(chǎn)物進行DGGE分析。采用變性梯度為35%～55%、濃度為7%的聚丙烯酰胺凝膠在1×TAE緩沖液中56 V、60 ℃條件下電泳16 h。DGGE完畢后，采用銀染法染色。PCR產(chǎn)物采用OMEGA公司DNA Gel Extraction試劑盒純化回收。采用Quantity one分析軟件包對DGGE圖譜的電泳條帶數(shù)目、條帶密度進行數(shù)字化分析。依據(jù)戴斯系數(shù)(Cs)構(gòu)建聚類圖，主成分分析(PCA)采用CANOCO 4.5軟件進行。

計算公式如下：

式中：Cs、H、S和E分別代表戴斯系數(shù)、香農(nóng)指數(shù)、豐富度和均勻度；Nx為x泳道條帶數(shù)；Ny為y泳道條帶數(shù)；j為2個泳道共有的條帶數(shù)；pi為樣品中單一條帶的強度在該樣品所有條帶總強度中所占的比率；N為單一泳道上所有條帶的密度；Ni為第i條帶的密度；Hmax是H的最大值。

4)DGGE圖譜中優(yōu)勢條帶的回收與測序。用滅菌手術(shù)刀完整切下DGGE圖譜中條帶清晰、分離明顯的優(yōu)勢條帶。以2 μL回收產(chǎn)物為模板，338F/518R為引物進行PCR擴增。將重新擴增的DNA片段切膠回收、純化后，連接到PMD18-T載體上，并轉(zhuǎn)化至DH5α感受態(tài)細胞中，篩選陽性克隆進行序列測定，測序結(jié)果與GenBank中的序列進行比對，得到條帶所代表的細菌類型。

1.4.2 主要菌群數(shù)量

總細菌、大腸桿菌、乳酸菌和雙歧桿菌引物序列同文獻[9]。產(chǎn)氣莢膜梭菌引物序列為：上游引物5′-GGGTTTCAACACCTCCGTG-3′，下游引物5′-CGATTAAGAGTAATGCAAGG-3′。取0.5 μL基因組DNA進行定量PCR(qPCR)反應(yīng)。采用20 μL體系(10 μL 2×SG PCR MasterMix，上游引物、下游引物(10 μmoL/L)各0.5 μL，0.5 μL基因組DNA，8.5 μL ddH2O)，在StepOnePlusTM實時熒光定量PCR儀(美國)上擴增。

反應(yīng)程序為預(yù)變性95 ℃ 10 min，40個循環(huán)的95 ℃ 20 s，60 ℃ 30 s。用1%的瓊脂糖凝膠電泳確定有特異擴增后，再擴增2個50 μL體系的PCR，進行PCR產(chǎn)物回收。擴增產(chǎn)物連接T載體。測序正確的質(zhì)粒測定濃度，根據(jù)分子質(zhì)量計算拷貝數(shù)，并進行梯度稀釋，作為標準品，制備標準曲線。將1.4.1中提取的樣本DNA稀釋10倍后上熒光定量PCR儀上檢測，操作過程同標準曲線構(gòu)建。根據(jù)樣品Ct值和標準曲線計算出各樣品菌群數(shù)量，再換算成每克樣品中細菌拷貝數(shù)的lg值。

1.5 數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析

以重復(fù)為單位進行數(shù)據(jù)處理和統(tǒng)計，采用SPSS 17.0軟件的單因素方差分析(one-way ANOVA)過程進行方差分析，采用Duncan氏法進行多重比較，并利用Contrast中的線性和二次項進行趨勢分析。P<0.05為差異顯著。試驗數(shù)據(jù)用“平均值±標準差”表示。

2 結(jié)果與分析

2.1 肉仔雞盲腸菌群結(jié)構(gòu)

由圖1可知，15個盲腸樣品共有50條條帶。M1-1～M5-3樣本中含有的條帶數(shù)目分別為20、18、20、18、19、21、19、16、11、19、15、21、18、18、18條。由表1可知，飼糧菊糖添加水平對盲腸菌群香農(nóng)指數(shù)和豐富度無顯著影響(P>0.05)，Ⅲ、Ⅳ組盲腸菌群均勻度顯著低于對照組和Ⅱ組(P<0.05)。飼糧菊糖添加水平(x)與肉仔雞盲腸菌群均勻度(y)呈顯著的二次曲線關(guān)系(P<0.05)，回歸方程為y=0.243x2-0.136x+0.974(R2=0.671 7)，當(dāng)飼糧菊糖添加水平為2.8 g/kg時，肉仔雞盲腸菌群均勻度最小，為0.950。

M1-1、M1-2、M1-3來自Ⅰ組 M1-1, M1-2 and M1-3 come from group Ⅰ；M2-1、M2-2、M2-3來自第Ⅱ組 M2-1, M2-2 and M2-3 come from group Ⅱ；M3-1、M3-2、M3-3來自Ⅲ組 M3-1, M3-2 and M3-3 come from group Ⅲ；M4-1, M4-2 and M4-3來自Ⅳ組 M4-1, M4-2 and M4-3 come from group Ⅳ；M5-1、M5-2、M5-3來自Ⅴ組 M5-1, M5-2 and M5-3 come from group Ⅴ。圖2、圖3同 The same as Fig.2 and Fig.3。

圖1肉仔雞盲腸菌群PCR-DGGE指紋圖譜

Fig.1 PCR-DGGE fingerprints of microbiota in cecum of broilers

2.2 肉仔雞盲腸菌群相似性

PCR-DGGE圖譜的PCA見圖2。主成分1(PC1)和主成分2(PC2)的貢獻率分別為21.4%、15.6%，二者共解釋了37.0%的DGGE圖譜信息。PC1將樣本分為左右兩部分，Ⅲ組和Ⅳ組樣本被分在左半部分，對照組和Ⅴ組樣本被分在右半部分，Ⅱ組樣本存在于兩側(cè)。PC2將樣本分為上下兩部分，Ⅱ組樣本被分在上半部分，Ⅲ組樣本被分在下半部分，對照組樣本除M1-2在中間外全部在上邊，Ⅳ組樣本除M4-1外全部在下邊，Ⅴ組除M5-3外全部在下邊。結(jié)合PC1與PC2進行分析，與其他樣本離散性最大的是M1-1，說明該樣本與其他樣本腸道菌群相似性最低。

表1 飼糧菊糖添加水平對肉仔雞盲腸菌群結(jié)構(gòu)的影響

同列數(shù)據(jù)肩標相同字母或無字母表示差異不顯著(P>0.05)，不同字母表示差異顯著(P<0.05)。下表同。

In the same column, values with the same or without letter superscripts mean no significant difference (P>0.05), while with different letter superscripts mean significant difference (P<0.05). The same as below.

圖3為依據(jù)樣本的Cs構(gòu)建的聚類圖，在15個樣本中，來自對照組的樣本M1-1與其他樣本相似性最低，相似性系數(shù)為0.44。相似性高的有4簇，分別為M1-2與M1-3、M2-2與M2-3、M5-1與M5-3、M3-3與M4-1，相似性系數(shù)分別為0.73、0.76、0.66、0.65。樣本M1-2、M1-3為同一簇(來自對照組)，M5-1、M5-3為同一簇(來自Ⅴ組)，這兩簇的相似性較低(相似性系數(shù)為0.59)，說明菊糖對肉仔雞盲腸菌群結(jié)構(gòu)產(chǎn)生了一定的影響。這與PCA結(jié)果相似。

圖2 盲腸菌群DGGE圖譜條帶的PCA

圖3 盲腸菌群UPGMA相似性分析

2.3 肉仔雞盲腸菌群DGGE圖譜優(yōu)勢條帶序列分析

試驗對盲腸DGGE指紋圖譜中具有共性、特異性的10條條帶進行了回收、克隆和測序。由表2可知，所有序列與GenBank中16S rDNA序列的相似性在87%～100%。除15號條帶的相似菌來自擬桿菌門(Bacteroidetes)外，其余均來自厚壁菌門(Firmicutes)。37號條帶為M4-1、M4-3、M5-2共有條帶，其所代表的序列的最相似菌為真細菌屬中的產(chǎn)糞甾醇真細菌(Eubacteriumcoprostanoligenes)，相似度為95%。16、18號條帶為各組共有條帶，其所代表的相似菌分別是Dielmafastidiosa和Faecalibacteriumprausnitzii，相似度分別為87%和96%。

表2 肉仔雞盲腸菌群DGGE圖譜優(yōu)勢條帶的序列分析結(jié)果

2.4 肉仔雞直腸菌群結(jié)構(gòu)

由圖4可知，Z1-1～Z5-3樣本中含有的條帶數(shù)目分別是24、21、19、15、19、19、11、9、14、17、13、27、18、14、15條。由表3可知，飼糧菊糖添加水平對直腸菌群均勻度和豐富度均無顯著影響(P>0.05)，Ⅲ組直腸菌群香農(nóng)指數(shù)顯著低于除Ⅴ組之外的其余各組(P<0.05)。

Z1-1、Z1-2、Z1-3來自Ⅰ組 Z1-1, Z1-2 and Z1-3 come from group Ⅰ；Z2-1、Z2-2、Z2-3來自Ⅱ組 Z2-1, Z2-2 and Z2-3 come from group Ⅱ；Z3-1、Z3-2、Z3-3來自Ⅲ組 Z3-1, Z3-2 and Z3-3 come from group Ⅲ；Z4-1、Z4-2、Z4-3來自Ⅳ組 Z4-1, Z4-2 and Z4-3 come from group Ⅳ；Z5-1、Z5-2、Z5-3來自Ⅴ組 Z5-1, Z5-2 and Z5-3 come from group Ⅴ。圖5、圖6同 The same as Fig.5 and Fig.6。

圖4肉仔雞直腸菌群PCR-DGGE指紋圖譜

Fig.4 PCR-DGGE fingerprints of microbiota in rectum of broilers

表3 飼糧菊糖添加水平對肉仔雞直腸菌群多樣性的影響

2.5 肉仔雞直腸菌群相似性

肉仔雞直腸菌群PCR-DGGE圖譜PCA見圖5。PC1和PC2的貢獻率分別為20.6%、14.6%，共解釋了34.60%的DGGE圖譜信息。PC1將樣本分為左右兩部分，對照組、Ⅱ組全部在右側(cè)，Ⅲ、Ⅴ組全部在左側(cè)，Ⅳ組兩側(cè)都存在。PC2將樣本分為上下兩部分，對照組全部在上邊，Ⅱ和Ⅴ組全部在下邊，Ⅲ和Ⅳ組上下都存在。Z3-3和Z4-1距離最為緊密。距離最遠的是Z5-2和Z1-2(分別來自Ⅴ組和對照組)。由圖6可知，15個樣本中，相似性較高的有3簇，分別為Z4-1與Z3-3、Z1-1與Z1-3、Z3-1與Z4-1、Z3-3，相似系數(shù)分別為0.72、0.64、0.60。與其余樣本相似系數(shù)最低的是Z5-2，相似系數(shù)僅為0.27。上述結(jié)果表明Ⅴ組與其余4個組直腸菌群相似性最低。

圖5 直腸菌群DGGE圖譜條帶的PCA

圖6 直腸菌群UPGMA相似性分析

2.6 肉仔雞直腸菌群DGGE圖譜優(yōu)勢條帶序列分析

本試驗回收了6條直腸菌群DGGE圖譜具有共性、特異性的條帶，進行克隆和測序。由表4可知，各序列和GenBank中16S rDNA序列的相似性在95%～100%。2號條帶為Z3-1、Z3-3、Z4-1共有的條帶，其所代表的最相似菌為腸單胞球菌(Intestinimonassp.)，相似度為95%。33號條帶為Z2-3、Z3-1、Z4-3、Z5-1共有條帶，其序列所代表的最相似菌為盲腸腸球菌(Enterococcuscecorum)，相似度為100%。36號條帶為Z2-2、Z2-3、Z4-3共有條帶，其所代表的最相似菌為普拉梭菌(Faecalibacteriumprausnitzii)，相似度為96%。45號條帶為Z2-3、Z5-3共有條帶，其序列所代表的最相似菌為蘇德式芽孢梭菌(Clostridiumsordelli)，相似度為100%。

表4 直腸菌群DGGE圖譜優(yōu)勢條帶的序列分析結(jié)果

2.7 肉仔雞盲腸菌群數(shù)量

由表5可知，各試驗組盲腸總細菌、大腸桿菌數(shù)量均顯著低于對照組(P<0.05)。Ⅲ、Ⅳ、Ⅴ組盲腸乳酸菌數(shù)量顯著低于對照組和Ⅱ組(P<0.05)；Ⅱ、Ⅴ組盲腸雙歧桿菌數(shù)量顯著高于對照組及Ⅲ、Ⅳ組(P<0.05)，以Ⅴ組盲腸雙歧桿菌數(shù)量最多。飼糧菊糖添加水平對盲腸產(chǎn)氣莢膜梭菌數(shù)量無顯著影響(P>0.05)。除雙歧桿菌外，盲腸各細菌數(shù)量與飼糧菊糖添加水平均呈顯著的線性關(guān)系(P<0.05)；同時，盲腸總細菌和大腸桿菌數(shù)量與飼糧菊糖添加水平呈顯著的二次曲線關(guān)系(P<0.05)，當(dāng)飼糧菊糖添加水平分別為2.71和2.66 g/kg時，盲腸總細菌和大腸桿菌數(shù)量最少。

表5 飼糧菊糖添加水平對肉仔雞盲腸主要菌群數(shù)量的影響

2.8 肉仔雞直腸菌群數(shù)量

由表6可知，Ⅲ、Ⅴ組直腸總細菌和大腸桿菌數(shù)量顯著低于對照組及Ⅱ、Ⅳ組(P<0.05)。Ⅱ組直腸乳酸菌數(shù)量顯著高于其他各組(P<0.05)。Ⅴ組直腸雙歧桿菌數(shù)量最多，顯著高于對照組及Ⅲ、Ⅳ組(P<0.05)。Ⅴ組直腸產(chǎn)氣莢膜梭菌數(shù)量顯著高于其余各組(P<0.05)。除大腸桿菌外，直腸各細菌數(shù)量與菊糖添加水平均呈顯著的線性關(guān)系(P<0.05)；同時，直腸雙歧桿菌、產(chǎn)氣莢膜梭菌數(shù)量與飼糧菊糖添加水平呈顯著的二次曲線關(guān)系(P<0.05)，當(dāng)飼糧菊糖添加水平為2.96 g/kg時，直腸雙歧桿菌數(shù)量最少。

表6 飼糧菊糖添加水平對肉仔雞直腸主要菌群數(shù)量的影響

3 討 論

3.1 飼糧菊糖添加水平對肉仔雞盲腸和直腸菌群結(jié)構(gòu)的影響

通過PCR-DGGE圖譜中條帶的位置、數(shù)量和亮度等可綜合反映腸道菌群的多樣性。Rehman等[7]研究表明，在玉米-豆粕型飼糧中添加10 g/kg的菊糖對42日齡肉仔雞空腸和盲腸菌群DGGE圖譜條帶數(shù)量及菌群多樣性指數(shù)無顯著影響。Yang等[10]研究表明，飼糧添加1.2 g/kg的菊糖不顯著影響肉仔雞盲腸菌群多樣性、豐富度和均勻度。體外試驗也證實，添加菊糖對肉仔雞盲腸、直腸食糜發(fā)酵液中菌群多樣性和豐富度的影響均不顯著，但發(fā)酵液中DGGE圖譜條帶數(shù)量有所降低[11]。本試驗結(jié)果表明，飼糧添加菊糖對肉仔雞盲腸、直腸菌群DGGE圖譜條帶數(shù)量均無顯著影響，但各菊糖添加組條帶數(shù)不同程度低于對照組，且多樣性指數(shù)均有所降低；但添加一定量的菊糖后顯著降低了肉仔雞盲腸菌群均勻度和直腸菌群香農(nóng)指數(shù)，該結(jié)論與以上報道略有差異。這與PCR-DGGE技術(shù)的局限性(如DNA的提取效率、DNA的提取和純化方法以及PCR擴增過程的誤差等)有關(guān)。另外，采用DGGE技術(shù)只能對優(yōu)勢菌群進行檢測與分析。本試驗聚類分析和PCA表明，盲腸菌群對照組的M1-2、M1-3與5.0 g/kg菊糖添加組的M5-1、M5-3樣本的相似性僅為0.59；而直腸菌群中，與其余樣本相似性系數(shù)最低的是Z5-2，僅為0.27。上述結(jié)果說明飼糧添加菊糖影響了肉仔雞盲腸和直腸菌群的組成。本試驗對DGGE圖譜優(yōu)勢菌群序列分析表明，飼糧添加菊糖后，DGGE圖譜出現(xiàn)了不同的優(yōu)勢條帶。盲腸樣本的37號條帶僅存在于菊糖添加組，其序列所代表的是厚壁菌門的Eubacteriumcoprostanoligenes，說明添加菊糖能促進該菌生長。直腸樣本2、33、36、45號條帶也只存在于菊糖添加組，其序列所代表的是厚壁菌門的球菌或梭菌類細菌，說明添加菊糖促進了直腸中以上細菌的生長，此結(jié)果與Yang等[10]報道的飼糧添加1.2 g/kg的菊糖有助于不可培養(yǎng)的厚壁菌門毛螺菌科(uncultured Lachnospiraceae)及不可培養(yǎng)的擬桿菌門(uncultured Bacteroidetes)細菌增殖的結(jié)果基本一致。

3.2 飼糧菊糖添加水平對肉仔雞盲腸和直腸主要菌群數(shù)量的影響

家禽腸道微生物一般分為兩大類，即有害菌(病源菌)和有益菌(病源菌抑制菌)。有害菌主要包括大腸桿菌、沙門氏菌和產(chǎn)氣莢膜梭菌等，而乳酸菌和雙歧桿菌被認為是腸道有益菌[12-13]。有益菌的增加會降低有害菌在腸道中的發(fā)酵[14]。有關(guān)飼糧添加菊糖對肉仔雞腸道菌群數(shù)量影響的結(jié)果不完全一致。林晨[15]發(fā)現(xiàn)，菊糖能夠調(diào)節(jié)肉仔雞腸道內(nèi)微生物菌群，且菊粉添加水平越高，大腸桿菌數(shù)量越少，雙歧桿菌和乳酸菌數(shù)量越多。Nabizadeh[16]研究表明，飼糧添加10 g/kg的菊糖顯著降低了肉仔雞盲腸大腸桿菌數(shù)量。Zhao等[17]研究表明，飼糧添加2.5和5.0 g/kg的果聚糖顯著提高了31日齡肉公雞盲腸乳酸菌和雙歧桿菌數(shù)量，降低了盲腸大腸桿菌和產(chǎn)氣莢膜梭菌的數(shù)量，并降低了排泄物氨的散發(fā)量。Kareem等[18]研究表明，乳酸菌代謝物——益生素(postbiotics)分別與0.8%、1.0%的菊糖混合添加顯著提高了42日齡肉仔雞排泄物乳酸菌的數(shù)量，降低了腸桿菌(Enterobacteriaceae)數(shù)量。但另外的研究則表明菊糖對腸道菌群數(shù)量無顯著影響，如Biggs等[19]報道，在玉米-豆粕型飼糧中添加4 g/kg的菊糖對21日齡肉仔雞盲腸乳酸菌、雙歧桿菌、產(chǎn)氣莢膜梭菌和大腸桿菌數(shù)量均無顯著影響。Abdel-Raheem等[20]也證明，益生素和合生素對肉仔雞盲腸乳酸菌和大腸桿菌數(shù)量無顯著影響。不過，Abdelqader等[21]研究表明，菊糖雖然沒有顯著增加產(chǎn)蛋雞回腸、盲腸中乳酸菌、雙歧桿菌數(shù)量，但顯著減少了回腸、盲腸大腸桿菌數(shù)量。本試驗結(jié)果表明，飼糧添加1.5、2.5、5.0 g/kg菊糖顯著降低了盲腸乳酸菌數(shù)量，但添加0.5 g/kg菊糖顯著增加了直腸乳酸菌數(shù)量；飼糧添加1.5、5.0 g/kg菊糖顯著降低了盲腸、直腸總細菌和大腸桿菌數(shù)量，但添加5.0 g/kg菊糖顯著增加了盲腸、直腸雙歧桿菌數(shù)量；飼糧添加菊糖對肉仔雞盲腸產(chǎn)氣莢膜梭菌數(shù)量無顯著影響，但添加5.0 g/kg菊糖顯著增加了直腸產(chǎn)氣莢膜梭菌數(shù)量。本試驗所得結(jié)果與上述報道不完全一致，這與試驗所用雞的日齡、性別、取樣部位、菊糖來源、結(jié)構(gòu)與劑量等不同有關(guān)。另外，菊糖的益生效果也與肉仔雞的飼養(yǎng)環(huán)境和個體因素有很大的關(guān)系[5]。本試驗中，5.0 g/kg菊糖添加組在促進有益菌增殖的同時，也同樣促進了直腸有害菌(產(chǎn)氣莢膜梭菌)的增殖，說明飼糧中添加高水平的菊糖不利于控制有害菌的增殖。菊糖的益生作用主要是源于其特殊的結(jié)構(gòu)不能被家禽的胃和胰分泌的消化酶所消化，而是進入后腸被有益菌如乳酸菌、雙歧桿菌所利用，產(chǎn)生短鏈脂肪酸和乳酸[22-23]，進而降低了有毒代謝物(氨、吲哚、酚類等)的產(chǎn)生[24]。

綜上，飼糧添加菊糖降低肉仔雞排泄物、盲腸和直腸吲哚和糞臭素濃度[8]主要是通過調(diào)整菌群結(jié)構(gòu)，降低腸道總細菌、大腸桿菌數(shù)量，增加乳酸菌和雙歧桿菌的數(shù)量來實現(xiàn)的。

4 結(jié) 論

① 飼糧添加適宜水平的菊糖顯著降低了肉仔雞盲腸菌群均勻度和直腸菌群香農(nóng)指數(shù)，促進了肉仔雞盲腸和直腸厚壁菌門Eubacteriumcoprostanoligenes、Intestinimonassp.和Enterococcuscecorum等細菌增殖。

② 飼糧添加適宜水平的菊糖顯著降低了肉仔雞盲腸、直腸總細菌和直腸大腸桿菌數(shù)量，增加了直腸乳酸菌、盲腸和直腸雙歧桿菌及直腸產(chǎn)氣莢膜梭菌數(shù)量。

③ 在本試驗條件下，肉仔雞飼糧菊糖適宜添加水平為2.5～5.0 g/kg。

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EffectsofInulinSupplementalLevelonMicrobialCommunityStructureandMainMicrobialPopulationsinCecumandRectumofBroilers

YANG Guiqin WANG Qi LIU Haiying DONG Weiguo ZHU Xin

(CollegeofAnimalHusbandryandVeterinary,ShenyangAgriculturalUniversity,Shenyang110866,China)

The purpose of this experiment was to study the effects of inulin supplemental level on microbial community structure and main microbial populations in cecum and rectum of broilers. Three hundred 1-day-old Arbor Acres broilers were selected and randomly distributed into five groups with six replicates per group and ten broilers per replicate by single-factor completely random design. Broilers in those five groups were fed a basal diet supplemented with 0 (control group), 0.5, 1.5, 2.5 and 5.0 g/kg inulin, respectively. The experiment lasted for 6 weeks. The microbial community structure and the main microbial populations in cecum and rectum of 42-day-old broilers were measured using the PCR-denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) and quantitative PCR (qPCR) techniques. The results showed as follows: 1) inulin supplemental level had no significant effects on the cecal and rectal microbial richness, the cecal microbial Shannon-Wiener index and the rectal microbial evenness of broilers (P>0.05), but significantly decreased the cecal microbial evenness and rectal microbial Shannon-Wiener index (P<0.05). Based on the analysis of some dominant bands in PCR-DGGE fingerprint, diet supplemented with inulin promoted the growth ofEubacteriumcoprostanoligenes,Intestinimonassp.,Enterococcuscecorumand so on from Firmicutes in cecum and rectum of broilers. 2) Diet supplemented with inulin significantly affected the populations of total bacteria andEscherichiacoliin cecum and rectum of broilers (P<0.05). Quadratic curve analysis showed that the populations of total bacteria andEscherichiacoliwere the fewest in cecum of broilers when inulin supplemental levels were 2.71 and 2.66 g/kg, respectively. Compared with control group, diet supplemented with 1.5, 2.5 and 5.0 g/kg inulin significantly decreased the population of cecalLactobacillus(P<0.05), while diet supplemented with 0.5 g/kg inulin significantly increased the population of rectalLactobacillus(P<0.05). The populations of cecal and rectalBifidobacteriaand rectalClostridiumperfringenswere the most when diet supplemented with 5.0 g/kg inulin, and the differences were significant compared with control group (P<0.05). Thus, results from the current study suggest that supplementation of 2.5 to 5.0 g/kg inulin to basal diet may have the beneficial effects on improving the microbial community and promoting the growth of beneficial bacteria in intestine of broilers under this experimental condition.[ChineseJournalofAnimalNutrition,2017,29(12)：4408-4418]

inulin; microbial community; microbial population; intestine; broilers

10.3969/j.issn.1006-267x.2017.12.021

S831.5

A

1006-267X(2017)12-4408-11

2017-06-05

國家自然科學(xué)基金項目(31372328)

楊桂芹(1966—)，女，遼寧凌源人，教授，博士，從事家禽營養(yǎng)與飼料科學(xué)研究。E-mail: guiqiny@126.com

Author, YANG Guiqin, professor, E-mail: guiqiny@126.com

(責(zé)任編輯 菅景穎)