焦洋,羅健,楊彥鳳
(1.重慶子勻環(huán)保工程有限公司,重慶 400039;2.中國兵器工業(yè)第五九研究所,重慶 400039)
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分子探針在細(xì)菌計(jì)數(shù)中的應(yīng)用
焦洋1,羅健1,楊彥鳳2
(1.重慶子勻環(huán)保工程有限公司,重慶 400039;2.中國兵器工業(yè)第五九研究所,重慶 400039)
分子探針是一種已知特異性的分子,在與生物靶分子結(jié)合以后,其帶有的標(biāo)記物可供反應(yīng)后檢測,從而反映出靶分子或其所在結(jié)構(gòu)單元的各種信息。通過詳細(xì)綜述幾種常見的分子探針,并且與其他類型的探針進(jìn)行比較與區(qū)分,認(rèn)為分子探針能夠克服傳統(tǒng)細(xì)菌計(jì)數(shù)法的缺點(diǎn),可以對不同類型的細(xì)菌進(jìn)行計(jì)數(shù),具有快速、適用對象廣泛的特點(diǎn)。但是,還需要開展進(jìn)一步的工作,形成統(tǒng)一的判斷標(biāo)準(zhǔn)和方法標(biāo)準(zhǔn),并提高抗干擾性,以推動分子探針在細(xì)菌檢測技術(shù)中的廣泛應(yīng)用。
水環(huán)境;分子探針;細(xì)菌計(jì)數(shù);細(xì)菌
水環(huán)境中廣泛分布著各種各樣的細(xì)菌,它們構(gòu)成了水體中微生物的主體。尤其是異養(yǎng)細(xì)菌在自然界物質(zhì)和能量代謝圈中具有舉足輕重的作用,能不斷地促進(jìn)水體中有機(jī)物質(zhì)的分解或合成,并引起與之相關(guān)的一系列能量的轉(zhuǎn)化,從而對水體水質(zhì)產(chǎn)生重要的影響,是決定水質(zhì)變化的關(guān)鍵之一。測定水體中細(xì)菌的數(shù)目是研究水體中細(xì)菌作用的基礎(chǔ)。由于細(xì)菌種類的極端多樣性,細(xì)菌計(jì)數(shù)技術(shù)一直受到廣泛的關(guān)注和研究開發(fā)。目前常用的培養(yǎng)計(jì)數(shù)方法存在許多局限。由于分子生物學(xué)領(lǐng)域的突破,采用分子探針的細(xì)菌計(jì)數(shù)技術(shù)得到了迅速發(fā)展,正在成為水環(huán)境微生物學(xué)中十分重要的一個領(lǐng)域。
典型的傳統(tǒng)細(xì)菌計(jì)數(shù)方法主要有平板計(jì)數(shù)法和最大或然計(jì)數(shù)法(MPN法)等等,這些方法均在固體或液體培養(yǎng)基中對待測菌種進(jìn)行培養(yǎng),然后根據(jù)培養(yǎng)后顯現(xiàn)出的宏觀結(jié)果(例如菌落密度(平板計(jì)數(shù)法)、液體培養(yǎng)基的顯色情況(MPN法))來判斷原始樣品中的活菌濃度。這些方法普遍存在以下兩個最主要的不足之處。
(1)培養(yǎng)時間長。細(xì)菌對培養(yǎng)基的適應(yīng)以及細(xì)菌的生長繁殖都需要一定的時間,所以產(chǎn)生可觀測到的結(jié)果需要較長的時間,通常在24 h以上甚至一周左右。
(2)培養(yǎng)條件對結(jié)果影響大。傳統(tǒng)方法中,培養(yǎng)基的營養(yǎng)成分、培養(yǎng)溫度、培養(yǎng)時間等對檢測結(jié)果都有很大的影響,一種培養(yǎng)基往往僅能檢測出一種或數(shù)種能夠在該培養(yǎng)基中生存的細(xì)菌的數(shù)目,這只占實(shí)際細(xì)菌數(shù)量的極少部分,例如通常的平板計(jì)數(shù)只能檢測到水中細(xì)菌數(shù)目的0.1%~10%[1],從而大大影響了結(jié)果的準(zhǔn)確性。表1給出了應(yīng)用平板計(jì)數(shù)法對各類水樣中的細(xì)菌進(jìn)行計(jì)數(shù)時,所能檢測到的細(xì)菌數(shù)占實(shí)際細(xì)菌數(shù)的比例[2]。
表1 平板培養(yǎng)計(jì)數(shù)法的局限性
傳統(tǒng)活菌計(jì)數(shù)方法的上述缺點(diǎn),在很大程度上限制了其在環(huán)境微生物學(xué)中的應(yīng)用范圍。另外,水樣中的細(xì)菌種類繁多,不可能也沒有必要在任何情況下都分門別類地對各種細(xì)菌都單獨(dú)培養(yǎng)計(jì)數(shù)。而且,在實(shí)際情況下,一個有限范圍內(nèi)的各種細(xì)菌之間不可避免地發(fā)生著相互作用[3],水體的宏觀微生物學(xué)特性是它們共同作用的結(jié)果。而所有的傳統(tǒng)技術(shù)在培養(yǎng)過程中都將細(xì)菌置于偏離它們原來的小環(huán)境的、新的人為的操縱條件下[4],使其形成與原來并不完全相同的群落結(jié)構(gòu),甚至引起細(xì)菌偏離在自然狀況下的生理習(xí)性,從而不能反映出它們的實(shí)際生長情況。因此,通過任何傳統(tǒng)活菌計(jì)數(shù)技術(shù)都不能全面客觀地認(rèn)識水體微生物特性。
鑒于科學(xué)研究的需要以及傳統(tǒng)活菌計(jì)數(shù)法的缺陷,研究人員開始致力于研究新的、準(zhǔn)確有效的活菌計(jì)數(shù)方法[5],分子探針技術(shù)作為一種主流方法,逐漸引起人們的關(guān)注。
從化學(xué)和生物學(xué)的意義上理解,分子探針是一種已知特異性的分子,在與靶分子結(jié)合以后,它帶有的標(biāo)記物可供反應(yīng)后檢測,從而反映出靶分子或其所在結(jié)構(gòu)單元的各種信息。例如核酸分子探針,可通過嵌入作用、靜電作用或者采用引物標(biāo)記或衍生方法與核酸連接[6];又如蛋白質(zhì)和酶等生物大分子的熒光探針,能在溶液中與蛋白質(zhì)分子靜電吸引或氫鍵結(jié)合[6]。分子探針不僅僅適用于檢測生物大分子,也適用于對非生物大分子進(jìn)行分析,例如在色譜分析中,利用含有肼基(—NH-NH2)的分子探針可以與醛或酮等含有羥基的化合物發(fā)生縮合反應(yīng),生成相應(yīng)的腙類化合物[6],如下式所示。
靶分子與合適的探針結(jié)合后,可以通過分光光度分析、熒光檢測[6]或者利用化學(xué)反應(yīng)中產(chǎn)生的化學(xué)發(fā)光現(xiàn)象對靶分子被放大的結(jié)構(gòu)、生理生化功能等目標(biāo)特性進(jìn)行檢測。
因此,從結(jié)構(gòu)上來講,可以認(rèn)為分子探針是這樣一類有機(jī)試劑:它由母體、取代基和反應(yīng)基團(tuán)組成。反應(yīng)基團(tuán)與靶分子結(jié)合,取代基不參加反應(yīng)。當(dāng)適宜的分子探針通過反應(yīng)基團(tuán)與靶分子結(jié)合后,靶分子所包含的難以直接獲得的待測信息就通過有機(jī)試劑的母體及取代基的固有特性或者整個有機(jī)試劑與靶分子結(jié)合以后的產(chǎn)物的新特性得以體現(xiàn)。
分子探針的特異性和對微觀體系的放大功能使之在微生物學(xué)上具有廣泛的用途,最常見的是利用分子探針鑒定微生物的種屬以及對微生物進(jìn)行純種分離[7-9]。這些方法普遍利用不同的核酸分子探針測定核酸分子中的核苷酸序列,從而精確地揭示微生物種類和遺傳的多樣性,可以跟蹤特定的基因寄宿主微生物,并可以在同一時間研究多種微生物。
用分子探針進(jìn)行活菌計(jì)數(shù),實(shí)質(zhì)在于利用分子探針鑒別細(xì)菌的“活性”,即側(cè)重于從整體上把握細(xì)胞的生理特性,但是,用分子探針進(jìn)行活菌計(jì)數(shù)應(yīng)當(dāng)明確下面兩個要點(diǎn):
●對水樣中各種已知或未知種類的細(xì)菌,建立統(tǒng)一的“死”與“活”的界定標(biāo)準(zhǔn)
●合理選擇分子探針
第一點(diǎn)是分子探針進(jìn)行活菌計(jì)數(shù)的理論依據(jù)。一切活菌計(jì)數(shù)法都必然有其合理的依據(jù),例如平板計(jì)數(shù)法,實(shí)際上認(rèn)為在培養(yǎng)基上能夠生長的細(xì)菌是具有“活性”的細(xì)菌。因而用分子探針對活菌計(jì)數(shù),也必須有參照的標(biāo)準(zhǔn)。在對微生物進(jìn)行計(jì)數(shù)時,基于不同標(biāo)準(zhǔn)的檢測結(jié)果存在著重大差異[10]。所以針對分子探針法建立合理的界定標(biāo)準(zhǔn),是具體技術(shù)開發(fā)和應(yīng)用的基礎(chǔ)。
第二點(diǎn)是分子探針進(jìn)行活菌計(jì)數(shù)的技術(shù)核心,具體體現(xiàn)為三個方面:一是所選擇的分子探針對“死”“活”兩種狀態(tài)下的細(xì)胞的滲透能力或與細(xì)胞中靶分子的結(jié)合能力要有顯著差異。二是在同時使用兩種或兩種以上分子探針測定活菌數(shù)和總細(xì)菌數(shù)時,探針之間不能發(fā)生對檢測結(jié)果產(chǎn)生影響的化學(xué)反應(yīng),而且探針的響應(yīng)結(jié)果應(yīng)有明顯差異(例如兩種熒光探針的熒光光譜波長應(yīng)有較大間隔)。三是引入的分子探針不會在有限的時間內(nèi)破壞細(xì)菌的活性而造成檢測結(jié)果的嚴(yán)重失真。
下面介紹幾種常見的分子探針,利用它們可以對細(xì)胞進(jìn)行染色計(jì)數(shù)。
(1)碘化丙錠[6]
碘化丙錠(PI)是一種菲啶類核酸熒光分子探針,分子結(jié)構(gòu)如下式所示。
其中,菲啶環(huán)是它的熒光團(tuán)。它具有較大的水溶性和較小的膜滲透性,排斥活細(xì)菌,只能進(jìn)入細(xì)胞膜遭到破壞的細(xì)菌。碘化丙錠與兩種核酸(DNA和RNA)基本上屬于無序結(jié)合,DNA的每4~5個堿基對同一個染料分子化學(xué)計(jì)量結(jié)合。碘化丙錠只能對死細(xì)胞進(jìn)行染色,染色后能夠發(fā)出波長為630 nm的紅色熒光。
(2)吖啶橙(AO)
吖啶橙屬于吖錠類熒光分子探針,分子結(jié)構(gòu)如下式所示。
這個分子對細(xì)胞膜具有很強(qiáng)的滲透能力,既能夠進(jìn)入細(xì)胞膜遭到破壞的細(xì)菌內(nèi),也能夠進(jìn)入細(xì)胞膜完好的細(xì)胞內(nèi),然后通過嵌入或靜電作用與DNA和RNA作用[6]。當(dāng)與DNA結(jié)合時,該染料有綠色熒光,最大發(fā)射波長為525 nm;當(dāng)與RNA結(jié)合時,最大發(fā)射波長移至650 nm左右,為紅色熒光。
(3)DAPI
DAPI的化學(xué)名稱為4’,6-二脒基-2-苯基吲哚,分子結(jié)構(gòu)如下式所示。
它是一種含有吲哚環(huán)的熒光分子探針,能夠進(jìn)入活細(xì)菌及死細(xì)菌的體內(nèi)與dsDNA的小溝槽結(jié)合,選擇性地鍵合到A-T堿基一簇,在激發(fā)光源的作用下發(fā)射藍(lán)色熒光[6]。
(4)16S rRNA 寡聚核苷酸探針[11]
細(xì)胞的活性可通過核糖體的含量表現(xiàn)出來。利用16S rRNA 寡聚核苷酸標(biāo)記探針原位雜交,可以反映出核糖體含量。由于這類探針只在核苷酸含量很高時才能具有可檢出的結(jié)果(1000~10 000個/單細(xì)胞),所以能與16S rRNA寡聚核苷酸探針雜交的細(xì)菌被認(rèn)為是具有代謝活性的。用四甲基若丹明標(biāo)記寡聚核苷酸分子探針,在綠色激發(fā)光下能放射出紅色熒光。
以上列舉的是細(xì)菌計(jì)數(shù)中常用的幾種分子探針。在實(shí)際工作中,往往將兩種或兩種以上分子探針聯(lián)合使用以同時測定細(xì)菌的總數(shù)和活菌數(shù)目。例如,Williams等人發(fā)明了一種聯(lián)合應(yīng)用DAPI和PI(碘化丙錠)同時對活菌和死細(xì)菌進(jìn)行計(jì)數(shù)的方法[11],就是利用DAPI能對活細(xì)菌與死細(xì)菌同時染色,而PI只能對死細(xì)菌染色,且染色后發(fā)射光譜明顯不同的特點(diǎn)同時對細(xì)菌總數(shù)和死菌數(shù)目進(jìn)行測定,二者之差即為活菌數(shù)目。另一種目前廣泛使用的用于活菌計(jì)數(shù)的試劑叫作Live/Dead BacLight,它由兩種核酸分子探針組成,一種是上面提到的碘化丙錠,另一種叫作SYSO9。后者既能滲透活細(xì)胞的細(xì)胞膜,也能滲透死細(xì)胞的細(xì)胞膜。當(dāng)兩種染色劑并存時,碘化丙錠穿透被破壞的細(xì)胞膜后與SYTO9試劑競爭性地同核酸結(jié)合。由于碘化丙錠與核酸的結(jié)合能力較強(qiáng),就將SYTO9試劑從核酸中置挀出樸。這樣,有完整細(xì)胞膜的活細(xì)菌呈現(xiàn)綠色熒光,細(xì)胞膜被破壞的死細(xì)菌呈現(xiàn)出紅色熒光。利用落射熒光顯微鏡配合適當(dāng)?shù)臑V光設(shè)備,活細(xì)菌和死細(xì)菌就能分別或同時被觀察到。
它能夠滲透細(xì)菌的細(xì)胞膜進(jìn)入細(xì)胞中?;罴?xì)菌的酯酶具有活性,能夠切斷FDA分子的二乙酸基團(tuán),從而使FDA顯出熒光性[15]。
較之傳統(tǒng)細(xì)菌計(jì)數(shù)法,分子探針具有不可比擬的優(yōu)越性,主要體現(xiàn)在以下幾點(diǎn)。
快速。例如用吖啶橙對細(xì)菌染色時,大約只需要30 min的培養(yǎng)時間;用Live/Dead BacLight對細(xì)菌染色,培養(yǎng)時間也在15~20 min。這些方法均大大縮短了細(xì)菌計(jì)數(shù)的時間,使得在線監(jiān)測成為可能,同時也在一定程度上避免了將細(xì)菌從原來的生存環(huán)境中長期分離而引起偏差。
適用對象廣泛。鑒于分子探針的靶物通常是細(xì)胞內(nèi)普遍存在的生物大分子,不因細(xì)菌的種類不同而存在或缺乏。所以在一般情況下,其計(jì)數(shù)結(jié)果與細(xì)菌的種類無關(guān)。這種普適性也使得計(jì)數(shù)的結(jié)果更接近于水樣中細(xì)菌的實(shí)際情況。
可同光電技術(shù)等結(jié)合,使操作更為方便靈活。例如,利用分光光度計(jì)或者流式細(xì)胞儀能夠即刻獲得結(jié)果。
但是,在現(xiàn)階段,利用分子探針對細(xì)菌進(jìn)行計(jì)數(shù),也存在著許多尚待解決的問題。首先是方法的結(jié)果比較不穩(wěn)定,各種分子探針得到的結(jié)果之間可比性相對較差,這是因?yàn)檫@些方法基于各自不同的鑒定標(biāo)準(zhǔn)。其次是干擾因子對結(jié)果的影響較大。例如對于多細(xì)胞真核生物,也可能被檢測出來,造成檢測的不準(zhǔn)確性;又如水體中有很多類似于細(xì)菌的可染色微粒,用DAPI和AO染色的結(jié)果不能將這些微粒從細(xì)菌中區(qū)分出去,造成結(jié)果失真[5];細(xì)胞膜的通透性的變化對測定的結(jié)果也會產(chǎn)生影響[4]。
鑒于前面討論過的分子探針對細(xì)菌計(jì)數(shù)的核心問題,結(jié)合現(xiàn)階段存在的問題,可以考慮從兩個方面對分子探針技術(shù)進(jìn)行改進(jìn)和完善。
首先是建立更加科學(xué)合理、更為全面的界定標(biāo)準(zhǔn)。這里涉及概念的標(biāo)準(zhǔn)化和方法的標(biāo)準(zhǔn)化。概念的標(biāo)準(zhǔn)化,即以定義的形式明確被檢測對象的基本特征。當(dāng)概念明確后,就能限定操作結(jié)果的范圍,從而避免其他干擾因素引起的混亂。例如,利用分子探針對活菌計(jì)數(shù)時,有關(guān)于“活性”的概念,目前就主要是從下面三個層次闡述的[16]:一是生長繁殖能力(viability)。這個概念對于檢驗(yàn)細(xì)菌的“活性”而言最為嚴(yán)格,它不僅涉及代謝活力,也涉及細(xì)胞膜的完整性。但是,在DNA遭到了不可逆的破壞、生長環(huán)境缺乏營養(yǎng)或者生長極其緩慢等情況下,就難以對生長繁殖能力進(jìn)行衡量;二是代謝活力(activity)。這個概念相對于第一個概念來說要“寬松”一些,它反映了細(xì)菌進(jìn)行生命活動的可能性。但是如果由于細(xì)胞損傷、饑餓等引起能量或代謝途徑的缺失時,用這個概念去衡量細(xì)菌的“活性”存在著一定的問題;三是細(xì)胞膜的完整性(integrity of membrane)。如果細(xì)胞膜不完整,細(xì)菌就不能維持膜電位,代謝將終止,從而可認(rèn)為該細(xì)菌已經(jīng)“死亡”。而且其內(nèi)部結(jié)構(gòu)將暴露在外界環(huán)境中,最終將會分解。這三個層次的概念在不同程度上對細(xì)菌的“活性”進(jìn)行了界定,顯然由第一個概念所得到的計(jì)數(shù)結(jié)果相對比較嚴(yán)格,但是基于此概念的檢測手段必然更為復(fù)雜。第三個概念最具有直觀性,相應(yīng)也最為簡單,因此目前多數(shù)分子探針都是基于第三個概念對細(xì)菌進(jìn)行計(jì)數(shù)的。
方法標(biāo)準(zhǔn)化,即在建立概念明確的基礎(chǔ)上,建立相應(yīng)的標(biāo)準(zhǔn)方法。標(biāo)準(zhǔn)方法一旦確定,就使得檢測結(jié)果之間具有可比性,技術(shù)更加規(guī)范化。
其次是開發(fā)更準(zhǔn)確、更具有針對性的技術(shù)。更準(zhǔn)確,是指所采用的分子探針技術(shù)能夠更好地排除前述的干擾因素,對細(xì)菌能夠具有更強(qiáng)的專一性。這一點(diǎn)對于方法的標(biāo)準(zhǔn)化也是十分重要的。更具有針對性,是指能夠開發(fā)出具有明確使用目的的分子探針。例如在研究水體受污染程度時,往往需要了解水體中厭氧微生物和好氧微生物的情況,而目前尚未有專門針對這兩類微生物的分子探針。一般認(rèn)為,好氧細(xì)菌普遍含有超氧化物歧化酶(SOD),而專性厭氧細(xì)菌中這種酶的含量很少(或完全沒有),因此,如果能夠開發(fā)出專門針對SOD的分子探針,無疑對于研究好氧微生物與厭氧微生物的關(guān)系具有十分重要的意義。由此可見,專一性的分子探針的出現(xiàn),必將對環(huán)境微生物的研究起到重要的推動作用。
[1] Vives-Rego J, Lebaron P, Nebe-von Caron G. Current and future applications of flow cytometry in aquatic microbiology [J]. FEMS Microbiology Reviews, 2000, 24 (4): 429- 448.
[2] 張錫輝. 高等環(huán)境化學(xué)原理及應(yīng)用[M]. 北京: 化學(xué)工業(yè)出版社, 2001: 227- 228.
[3] 沈德中. 污染環(huán)境的生物修復(fù)[M]. 北京: 化學(xué)工業(yè)出版社, 2002.
[4] Dunbar J, S White, L J Forney. Genetic diversity through the looking glass: effect of enrichment bias[J]. Applied & Environmental Microbiology, 1997, 63(4): 1326- 1330.
[5] Lina Boulos, Michele Prevost, Benoit Barbeau,etal. Live/Dead BacLightTM: application of a new rapid staining method for direct enumeration of viable and total bacteria in drinking water [J]. Journal of Microbiological Methods, 1999, 37: 77- 86.
[6] 張華山, 王紅, 趙媛媛. 分子探針與檢測試劑[M]. 北京: 科學(xué)出版社, 2002.
[7] 黃立南, 屈良皓, 陳月琴. rRNA技術(shù)及其在分子微生物生態(tài)上的應(yīng)用[J]. 微生物學(xué)雜志, 2001, 21(1): 37- 41.
[8] Patrick Dabert, Jean-Philippe Delgenes, Rene Moletta,etal. Contribution of molecular microbiology to the study in water pollution removal of microbial community dynamics [J]. Environmental Science & Bio/Technology, 2002(1): 39- 49.
[9] 余利巖, 徐平, 姚天爵. 新型Actinobacteria熒光原位雜交(FISH)探針的設(shè)計(jì)和應(yīng)用[J]. 中國抗生素雜志, 2000, 25(6): 401- 406.
[10] Tor Kristian Stevik, Jon Fredrik Hanssen, Petter Deinboll Jenssen. A comparison between DAPI direct count (DDC) and most probable number (MPN) to qualify protozoa infiltration systems [J]. Microbiological Method, 1998, 33: 13- 21.
[11] S C Williams, Y Hong, D C A Danavall,etal. Distinguishing between living and non-living bacteria: evaluation of the vital stain propidium iodide and the combined use with molecular probes in aquatic samples [J]. Microbial Methods, 1998, 32: 225- 236.
[12] Vishvesh K. Bhupathiraju, Mark Hernandez, Paula Krauter,etal. A new direct microscopy based method for evaluating bioremediation in-situ bioremediation[J]. Journal of Hazardous Materials, 1999,67(3): 299- 312.
[13] D. B. Kosolapov, A. I. Kopylov. Enumeration of Active Cells in the Bacterioplankton of the Rybinsk Reservoir Using 5-Cyano-2,3-Ditolyl Tetrazolium Chloride: A Comparison with Other Methods [J]. Microbiology, 2001, 70 (5): 594- 599.
[14] Veronique Creach, Anne-Claire Baudoux, Georges Bertru,etal. Direct estimate of active bacteria: CTC use and limitations [J]. Microbiological Methods, 2003, 52: 19- 28.
[15] A G Markelove, M G Vladimirova, E S Kuptsova. A Comparison of Cytochemical Methods for the Rapid Evaluation of Microalgal Viability [J]. Plant Physiology, 2000, 47(6): 815- 819.
[16] G. Nebe-Von-Caron, P Stephens, A R Badley. Materials and Methods [J]. Proceedings RMS March, 1999, 34(1): 321- 327.
Application of Molecular Probes in Bacteria Counting
JIAO Yang1, LUO Jian1, YANG Yan-feng2
(1.Chongqing Ziyun Environment Engineering Co., Ltd., Chongqing 400039, China; 2.No.59 Institute, China Ordnance Industry, Chongqing 400039, China)
Molecular probes are a kind of molecules that can specifically be combined with bio-targeted molecules. The markers of the probes can be detected after the reaction, thus reflecting the information of the targeted molecules or the structures including the molecules. In this paper, several molecular probes are further described in detail and compared with other kinds of probes. It is concluded that molecular probes can overcome the deficiencies of traditional bacterial counting methods, and different types of bacteria can be counted in a rapid manner. Molecular probes can be applicable to a wide range of objects. On the other hand, further work needs to be done to unify the identification standard of judgment and method, so as to improve the anti-interference of the method, thus promoting the application of molecular probes in bacteria detection.
water environment; molecular probe; bacteria counting; bacteria
2017-06-12
焦洋(1978—),男,貴州貴陽人,工程師,碩士,主要研究方向?yàn)楣I(yè)廢水處理,E-mail:122089103@qq.com
羅健(1971—),男,四川瀘縣人,工程師,主要研究方向?yàn)榄h(huán)境工程微生物, E-mail:673359479@qq.com
10.14068/j.ceia.2017.04.020
X835
A
2095-6444(2017)04-0088-05