亚洲免费av电影一区二区三区,日韩爱爱视频,51精品视频一区二区三区,91视频爱爱,日韩欧美在线播放视频,中文字幕少妇AV,亚洲电影中文字幕,久久久久亚洲av成人网址,久久综合视频网站,国产在线不卡免费播放

        ?

        動(dòng)物頸脊髓壓迫模型的研究進(jìn)展

        2017-06-06 11:54:50田自開徐浩欽王瑞軍彭寶淦
        關(guān)鍵詞:脊髓型動(dòng)物模型氣囊

        姜 昊,田自開,徐浩欽,王瑞軍,彭寶淦

        動(dòng)物頸脊髓壓迫模型的研究進(jìn)展

        姜 昊,田自開,徐浩欽,王瑞軍,彭寶淦

        脊髓型頸椎病是導(dǎo)致成人脊髓功能障礙最常見的疾病。矛盾的是,對(duì)于脊髓型頸椎病患者脊髓神經(jīng)組織進(jìn)展性功能喪失的病理生物學(xué)機(jī)制卻不甚清楚。經(jīng)過(guò)20世紀(jì)本領(lǐng)域科學(xué)家的大量研究證實(shí),脊髓壓迫模型不論是在研究治療脊髓型頸椎病功效方面還是在探索其發(fā)病機(jī)制方面都是重要的。脊髓壓迫的臨床前研究需要一個(gè)可分級(jí)、可量化、可重復(fù)的動(dòng)物模型。筆者從動(dòng)物的選擇、動(dòng)物模型的制作和脊髓損傷神經(jīng)功能評(píng)估三個(gè)方面分別來(lái)闡述動(dòng)物脊髓壓迫模型的建立。

        脊髓型頸椎??;脊髓壓迫;脊髓損傷

        脊髓型頸椎病是一種常見的運(yùn)動(dòng)和感覺功能漸進(jìn)損害性疾病。脊髓型頸椎病是由于頸椎退行性改變?cè)斐傻念i脊髓的損害[1,2]。據(jù)報(bào)道,脊髓型頸椎病在人群中的發(fā)病率約為1.6/105,且在亞洲男性及歐洲白人女性中發(fā)病率最高[3,4]。近些年,越來(lái)越多的學(xué)者致力于動(dòng)物頸脊髓壓迫的研究,且國(guó)內(nèi)外學(xué)者為了更好應(yīng)對(duì)脊髓型頸椎病病理機(jī)制及其與相關(guān)疾病的關(guān)系進(jìn)行研究,建立了多種脊髓壓迫模型[5-7]。筆者現(xiàn)從動(dòng)物的選擇、動(dòng)物模型的制作和脊髓損傷動(dòng)物實(shí)驗(yàn)?zāi)P蜕窠?jīng)功能評(píng)估等方面分別來(lái)闡述動(dòng)物脊髓壓迫模型的建立。

        1 動(dòng)物的選擇及模型制作

        1.1 動(dòng)物的選擇 脊髓壓迫的臨床前研究需要一個(gè)實(shí)驗(yàn)結(jié)果可分級(jí)、可量化、可重復(fù)的動(dòng)物模型。通常,脊髓壓迫模型目標(biāo)是產(chǎn)生非極量損害,可通過(guò)干預(yù)程度的調(diào)節(jié)來(lái)改善或加重?fù)p傷的程度。用于脊髓壓迫的動(dòng)物種類很多,如鼠、猴、羊、犬、豬、貓、兔等。從解剖角度來(lái)說(shuō),猴、猿、狗等動(dòng)物,越接近人類,越易可靠的觀察脊髓受壓后肢體功能情況,但是考慮實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的來(lái)源及價(jià)格狀況,鼠因其相對(duì)便宜、具有較強(qiáng)的抗感染能力和生命力且易于處理,普遍應(yīng)用于實(shí)驗(yàn)室脊髓壓迫研究的初期試驗(yàn)。但是,若要考慮愈接近人類的實(shí)驗(yàn),則推薦選擇猴、猿等動(dòng)物。

        1.2 模型制作

        1.2.1 螺釘壓迫脊髓模型 該模型為使用螺釘通過(guò)頸前路或頸后路穿透椎體或者椎板壓迫硬膜囊從而形成椎管內(nèi)占位,造成脊髓壓迫。1982年,Schramm[8]設(shè)計(jì)了后路螺釘直接壓迫模型,通過(guò)后路椎板,擰入直徑3 mm,螺距0.5 mm螺釘,擰入速率0.25 mm/次,4~7次/d,建立50%的壓迫模型。由于脊髓慢性壓迫所致脊髓病的發(fā)展和病理過(guò)程并未被完全闡明,Kanchiku等[9]等通過(guò)塑料螺釘建立了一個(gè)前路壓迫模型,并且用其來(lái)研究因慢性受壓所致脊髓病的病理表現(xiàn)。組織學(xué)發(fā)現(xiàn),灰質(zhì)損傷與壓扁的前角及前角細(xì)胞的消失和壞死有關(guān),且在灰質(zhì)中發(fā)現(xiàn)輕度的膠質(zhì)細(xì)胞增生,然而,白質(zhì)顯示海綿樣變性、軸索變性和輕微脫髓鞘改變。筆者發(fā)現(xiàn),脊髓誘發(fā)電位可以用一個(gè)導(dǎo)管電極通過(guò)頸椎硬膜外將其安全記錄下來(lái)。通過(guò)脊髓動(dòng)作電位,研究者不僅可以精確判定脊髓的病理學(xué)狀況,還可以觀察不同壓縮程度模型的神經(jīng)損害癥狀。近些年來(lái),螺釘壓迫脊髓模型被廣泛應(yīng)用于各領(lǐng)域,Ning等[10]采用螺釘制作大鼠亞急性脊髓受壓模型,研究重組人紅細(xì)胞生成素阻止大鼠運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元細(xì)胞凋亡,數(shù)據(jù)顯示,重組人紅細(xì)胞生成素可以被用于阻止由于亞急性壓迫引起的損傷,且可以保護(hù)頸椎亞急性脊髓損傷后運(yùn)動(dòng)功能,該方法的優(yōu)點(diǎn):采用螺釘建立脊髓壓迫模型可以根據(jù)螺釘?shù)臄Q入控制壓迫程度,利于長(zhǎng)期持續(xù)加壓;缺點(diǎn):植入壓迫螺釘需要在不同時(shí)間反復(fù)擰入螺釘,這種造模方法的感染率和病死率較高。

        1.2.2 腫瘤細(xì)胞壓迫模型 腫瘤細(xì)胞壓迫模型為通過(guò)后路接種一定濃度的腫瘤細(xì)胞系到指定的區(qū)域,使腫瘤組織在硬膜外腔生長(zhǎng),逐漸對(duì)脊髓產(chǎn)生壓迫。1980年,Ikeda等[11]利用病毒誘導(dǎo)表皮樣癌建立兔腫瘤壓迫脊髓模型,壓迫模型組織學(xué)結(jié)果揭示:一個(gè)階段的脊髓受壓通常位于后外側(cè)或者前外側(cè),在壓迫早期,脊髓壓迫階段存在白質(zhì)的腫脹,在壓迫晚期,白質(zhì)的改變更加明顯,且伴隨著壞死和出血,相比于白質(zhì),灰質(zhì)相對(duì)保持完好。Delattre等[12]建立壓迫模型,研究地塞米松在腫瘤壓迫模型脊髓中劑量反應(yīng),研究結(jié)果支持地塞米松治療由腫瘤引起的硬膜外脊髓壓迫,而且證實(shí)高劑量地塞米松在治療方面優(yōu)于低劑量。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)表明,地塞米松可直接降低壓迫階段區(qū)域毛細(xì)血管對(duì)于小分子物質(zhì)的通透性[12]。腫瘤細(xì)胞壓迫法常被人們用來(lái)制作脊髓壓迫模型,但這種方法的局限性包括:(1)惡性腫瘤細(xì)胞會(huì)損害正常脊髓組織,甚至引起脊髓神經(jīng)纖維和神經(jīng)細(xì)胞功能的改變;(2)其生長(zhǎng)速度較快,不適于脊髓慢性壓迫的研究;(3)無(wú)法控制腫瘤組織的形狀及大小,并且難以復(fù)制、重復(fù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果等。

        1.2.3 膨脹材料壓迫模型 隨著科技的飛速發(fā)展,可膨脹材料逐漸進(jìn)入人們的視野,采用可膨脹材料置于硬膜外特定位置壓迫脊髓建立壓迫模型變得日益成熟。1981年,de la Torre[13]把酪蛋白塑料物質(zhì)移植到椎板與脊髓之間建立了新型脊髓壓迫模型,并用此模型研究了脊髓損傷時(shí)誘發(fā)電位的改變。Kim等[14]采用膨脹的尿烷化合物為膨脹材料制作脊髓壓迫模型,此材料24 h內(nèi)膨脹至原有體積的230%,且能保持16 d。組織病理學(xué)觀察發(fā)現(xiàn),脊髓壓迫階段神經(jīng)元缺失,偶爾在剩余的神經(jīng)元出現(xiàn)染色質(zhì)溶解;靜脈竇狀小管膨脹和灰質(zhì)小空泡也被發(fā)現(xiàn),未發(fā)現(xiàn)白質(zhì)的脫髓鞘改變。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)表明,在慢性壓迫情況下,運(yùn)動(dòng)功能障礙只有在大量運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元缺失的情況下才發(fā)生,在模型中可以觀察到,運(yùn)動(dòng)神經(jīng)元減少先于運(yùn)動(dòng)功能障礙[14]。2012年,Wang等[15]采用由聚乙烯醇和聚丙烯醇構(gòu)成的滲透聚合物網(wǎng)絡(luò)凝膠吸水材料制作脊髓壓迫模型用來(lái)研究透明質(zhì)酸四糖在大鼠慢性脊髓壓迫后自我修復(fù)的關(guān)系,組織學(xué)觀察發(fā)現(xiàn),在輕度壓迫和重度壓迫組大鼠出現(xiàn)不同程度的脫髓鞘改變,而對(duì)照組大鼠脊髓形態(tài)正常,髓鞘排列緊密。2015年,Cheng等[16]利用吸水膨脹材料制作脊髓壓迫模型,研究發(fā)現(xiàn)頸脊髓前動(dòng)脈和前根動(dòng)脈在慢性頸脊髓壓迫后有明顯改變,頸脊髓前動(dòng)脈和前根動(dòng)脈在慢性頸脊髓壓迫組神經(jīng)功能改變方面有重要作用。以上材料,無(wú)論是酪蛋白塑料物質(zhì)、甲基纖維素-聚丙烯腈還是尿烷化合物等都有其膨脹速度快的缺點(diǎn),用于研究脊髓慢性壓迫有一定局限性。而且膨脹材料需要提前植入實(shí)驗(yàn)動(dòng)物,觀察是否有炎性反應(yīng)或組織變化以防排異反應(yīng)。試想將來(lái)如果有一種可以人為控制膨脹速度、膨脹方向、長(zhǎng)期穩(wěn)定保持形狀、與組織無(wú)排異反應(yīng)的材料,脊髓壓迫模型的研究將迎來(lái)飛速發(fā)展。

        1.2.4 氣囊壓迫模型 氣囊壓迫模型的原理是在硬膜囊外椎板下植入一個(gè)小氣囊,氣囊外連接一個(gè)導(dǎo)管向氣囊內(nèi)充氣,從而對(duì)脊髓造成壓迫損傷。1953年,Tarlov等[17]首次采用氣囊設(shè)備制作脊髓壓迫模型,該設(shè)備是應(yīng)用液壓原理,其核心是一個(gè)金屬壓縮機(jī)組和一個(gè)壓縮單元,由聚乙烯和金屬管連接兩個(gè)橡膠氣球,將手術(shù)植入裝置,待動(dòng)物恢復(fù)后,通過(guò)擰緊壓縮螺釘使硬膜外氣囊充氣壓迫脊髓,螺釘擰入的圈數(shù)決定了氣囊膨脹和脊髓受壓的程度。Vanicky等[18]建立了一個(gè)新型氣囊模型,采用一個(gè)Fogarty導(dǎo)管經(jīng)過(guò)胸10椎弓植入硬膜外,通過(guò)灌注鹽水使氣囊膨脹從而對(duì)脊髓造成壓迫。最近,Cao等[7]運(yùn)用氣囊技術(shù)制作脊髓壓迫模型,結(jié)果發(fā)現(xiàn)如果經(jīng)顱運(yùn)動(dòng)誘發(fā)電位信號(hào)丟失被發(fā)現(xiàn)且立即去除對(duì)脊髓的壓迫,術(shù)后小鼠的功能正常,然而,在延遲5 min去除脊髓壓迫組,術(shù)后會(huì)有嚴(yán)重的功能不足。因?yàn)橹谱鞔四P蛢H需一個(gè)微小手術(shù),且造模過(guò)程快速、設(shè)備易于操作,氣囊模型被多次用于動(dòng)物實(shí)驗(yàn)研究。然而,氣囊膨脹時(shí)囊內(nèi)壓力并非呈直線樣改變等缺點(diǎn)仍限制其廣泛使用。

        1.2.5 后縱韌帶骨化模型 慢性脊髓壓迫歸因于頸椎病、椎間盤突出[19]、后縱韌帶骨化等誘發(fā)的退行性脊髓變化,如髓鞘破壞、白質(zhì)和灰質(zhì)中軸突和少突細(xì)胞喪失等。1981年,Hosoda等[20]采用轉(zhuǎn)基因技術(shù)培養(yǎng)出一種隨著年齡增長(zhǎng)致頸椎體鈣化沉積物增多的小鼠,該小鼠通常踮腳尖爬行,稱為Twy(tiptoe-walking Yoshimura)小鼠。Takenouchi等[21]利用Twy小鼠對(duì)慢性壓迫的病理及組織學(xué)改變進(jìn)行了研究,在慢性壓迫小鼠脊髓檢測(cè)到細(xì)胞凋亡的表達(dá)和神經(jīng)元缺失、脫髓鞘改變等,并且證實(shí)細(xì)胞凋亡可能導(dǎo)致組織退變。Yu等[22]利用Twy小鼠進(jìn)行研究發(fā)現(xiàn),在脊髓壓迫階段伴隨神經(jīng)元密度的明顯減少;并且免疫組化分析證實(shí),在Twy小鼠脊髓壓迫區(qū)域證實(shí)膠質(zhì)纖維酸性蛋白(glial fibrillary acidic portein,GFAP)是增加的。Twy小鼠是僅有的無(wú)創(chuàng)慢性進(jìn)行性動(dòng)物壓迫模型;病程發(fā)展緩慢,符合慢性壓迫的病理改變;無(wú)異物植入,不存在排異反應(yīng)。但此模型在慢性壓迫過(guò)程中不能認(rèn)為控制壓迫程度等精細(xì)調(diào)節(jié),且無(wú)法重復(fù)實(shí)驗(yàn)結(jié)果。

        2 脊髓損傷動(dòng)物實(shí)驗(yàn)?zāi)P蜕窠?jīng)功能評(píng)估

        2.1 Talov評(píng)分標(biāo)準(zhǔn) 修訂版Talov運(yùn)動(dòng)功能評(píng)估標(biāo)準(zhǔn)分5級(jí)[7]:(1)0級(jí),不能自主運(yùn)動(dòng);(2)1級(jí),可察覺關(guān)節(jié)、下肢活動(dòng);(3)2級(jí),關(guān)節(jié)可活動(dòng)自如,但無(wú)法站立;(4)3級(jí),可以站立和行走,但不能跑動(dòng);(5)4級(jí),正常。Talov法比較簡(jiǎn)單,用于脊髓損傷程度的初步評(píng)估,不能觀察脊髓損傷后恢復(fù)的全過(guò)程。Cao等[7]采用此標(biāo)準(zhǔn)對(duì)脊髓損傷的山羊行神經(jīng)行為評(píng)分,以初步評(píng)估脊髓損傷的程度。

        2.2 BBB評(píng)分標(biāo)準(zhǔn) BBB(Basso-Beattie-Bresnahan)評(píng)分標(biāo)準(zhǔn)[16,23]包括下肢運(yùn)動(dòng)、軀干的姿態(tài)和穩(wěn)定性、步態(tài)、協(xié)調(diào)性、爪位置、腳趾間隙和尾巴位置。BBB評(píng)分主要代表脊髓損傷后的恢復(fù)情況,體現(xiàn)脊髓損傷后恢復(fù)的全過(guò)程。Cheng等[16]采用BBB評(píng)分來(lái)評(píng)估大鼠慢性脊髓壓迫模型癱瘓程度。

        2.3 斜扳試驗(yàn) 斜扳試驗(yàn)同樣為評(píng)估脊髓損傷后小鼠運(yùn)動(dòng)功能的方法[24,25],該方法為把動(dòng)物放置在一個(gè)可以調(diào)節(jié)不同傾斜度的斜面上,增大傾斜角度,則動(dòng)物可以維持其位置5 s的傾斜度為最大角度。斜扳試驗(yàn)設(shè)備簡(jiǎn)單、檢測(cè)迅速、重復(fù)性好,適用于對(duì)整體功能進(jìn)行評(píng)價(jià),缺點(diǎn)為無(wú)法體現(xiàn)細(xì)微運(yùn)動(dòng)恢復(fù)情況。Morris等[24]采用斜扳試驗(yàn)測(cè)量脊髓損傷小鼠的最大角度,來(lái)評(píng)估脊髓損傷后小鼠的運(yùn)動(dòng)功能。

        2.4 皮層體感誘發(fā)電位 皮層體感誘發(fā)電位[26](cortical somatosensory evoked potentials, CSEP)是檢測(cè)脊髓感覺的電生理檢查之一,能夠準(zhǔn)確對(duì)脊髓功能做出診斷及定量分析。CSEP分4型,Ⅰ型主要指Franke A級(jí),Ⅱ型主要指Franke B、C級(jí),Ⅲ型主要指Franke C、D級(jí),Ⅳ型主要指Franke D、E級(jí)(表1)。其反應(yīng)靈敏,能較早反應(yīng)病情變化,可根據(jù)潛伏期縮短程度判斷預(yù)后情況。Jiang等[26]對(duì)脊髓損傷的山羊行CSEP檢測(cè),以準(zhǔn)確的分析損傷脊髓的功能。

        表1 Frankel脊髓損傷分級(jí)

        綜上所述,設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物模型的目的是為了模擬臨床疾病的發(fā)病機(jī)制,盡管許多學(xué)者應(yīng)用以上方法進(jìn)行動(dòng)物實(shí)驗(yàn),然而,無(wú)論任何方法均有其自身的局限性,目前仍需要?jiǎng)?chuàng)建一種動(dòng)物模型使其病理過(guò)程恰如其分的復(fù)制到動(dòng)物模型上,因此,此需要滿足以下要求:(1)可重復(fù)性;(2)可定量分級(jí);(3)再現(xiàn)性好;(4)適用性廣泛。在研究中可要根據(jù)實(shí)驗(yàn)的需求選用合適的動(dòng)物模型。總之,相信不久的將來(lái)構(gòu)建脊髓壓迫模型的方法會(huì)不斷得到改進(jìn)和完善,并更好地服務(wù)于脊髓型頸椎病的病理生理學(xué)機(jī)制和治療等研究。

        [1]Wang T, Wang H, Liu S, et al. Anterior cervical discectomy and fusion versus anterior cervical corpectomy and fusion in multilevelcervical spondylotic myelopathy: A meta-analysis [J]. Medicine( Baltimore), 2016, 95(49): e5437. DOI: 10.1097/ MD.0000000000005437.

        [2]Zárate-Kalfopulos B, Araos-Silva W, Reyes-Sánchez A, et al. Hybrid decompression and fixation technique for the treatment of multisegmental cervical spondylotic myelopathy [J]. Int J Spine Surg, 2016, 10(2016): 30. DOI: 10.14444/3030.

        [3]Boogaarts H D, Bartels R H. Prevalence of cervical spondylotic myelopathy [J]. Eur Spine J, 2015, 24(2): 139-141. DOI: 10.1007/s00586-013-2781-x.

        [4]Kalsi-Ryan S, Karadimas S K, Fehlings M G. Cervical spondylotic myelopathy: the clinical phenomenon and the currentpathobiology of an increasingly prevalent and devastating disorder [J]. Neuroscientist, 2013, 19(4): 409-421. DOI: 10.1177/1073858412467377.

        [5]Bostr?m A F, Hielm-Bj?rkman A K, Chang Y M, et al. Comparison of cross sectional area and fat infiltration of the epaxial muscles in dogs with and withoutspinal cord compression [J]. Res Vet Sci, 2014, 97(3): 646-651. DOI: 10.1016/j.rvsc.2014.09.006.

        [6]Marques S A, de Almeida F M, Mostacada K, et al. A highly reproducible mouse model of compression spinal cordinjury [J]. Methods Mol Biol, 2014, 1162: 149-156. DOI: 10.1007/978-1-4939-0777-9_12.

        [7]Cao P, Zheng Y, Zheng T, Sun C, et al. A model of acute compressive spinal cord injury with a minimally invasive balloon in goats [J]. J Neurol Sci, 2014, 337(1-2): 97-103. DOI: 10.1016/j.jns.2013.11.024.

        [8]Schramm J. A model for chronic spinal cord compression in cats [J]. Neurochirurgia(Stuttg), 1982, 25(4): 113-115. DOI: 10.1055/s-2008-1053972.

        [9]Kanchiku T, Taguchi T, Keneko K, et al. A new rabbit modelfor thestudy on cervical compressive myelopathy [J]. J 0rthop Res, 2001, 19(4): 605-613. DOI: 10.1016/ S0736-0266(00)00058-9.

        [10]Ning B, Zhang A, Song H, et al. Recombinant human erythropoietin prevents motor neuron apoptosis in a rat model of cervical sub-acute spinal cord compression [J]. Neurosci Lett, 2011, 490(1): 57-62. DOI: 10.1016/ j.neulet.2010.12.025.

        [11]Ikeda H, Ushio Y, Hayakawa T, et al. Edema and circulatory disturbance in the spinal cord compression by epidural neoplasms in rabbits [J]. J Neurosurg, 1980, 52(2): 203-209. DOI: 10.3171/jns.1980.52.2.0203.

        [12]DelattreJ Y, Arbit E, Thaler H T, et al. A dose-response study of dexamethasone in a model of spinal cord compression caused by epidural tumor [J]. J Neurosurg, 1989, 70(6): 920-925. DOI: 10.3171/jns.1989.70.6.0920.

        [13]de la Torre J C. Spinal cord injury models [J]. Prog Neurobiol, 1984, 22(4): 289-344.

        [14]Kim P, Haisa T, Kawamoto T, et al. Delayed myelopathy induced by chronic compression in the rat spinal cord [J]. Ann Neurol, 2004, 55(4): 503-511. DOI: 10.1002/ana.20018.

        [15]Wang J, Rong W, Hu X, et al. Hyaluronan tetrasaccharide in the cerebrospinal fluid is associated with self-repair of rats after chronicspinal cord compression [J]. Neuroscience, 2012, 3(210): 467-480. DOI: 10.1016/j.neuroscience.2012.03.016.

        [16]Cheng X, Long H, Chen W, et al. Three-dimensional alteration of cervical anterior spinal artery and anterior radicular artery in rat model of chronic spinal cord compression by micro-CT [J]. Neurosci Lett, 2015, 8(606): 106-112. DOI: 10.1016/j.neulet.2015.08.050.

        [17]Tarlov IM, Klinger H, Vitale S. Spinal cord compression studies. I. Experimental techniques to produce acute and gradual compression [J]. AMA Arch Neurol Psychiatry, 1953, 70(6): 813-819.

        [18]Vanicky I, Urdzíková L, Saganová K, et al. A simple and reproducible model of spinal cord injury induced by epidural balloon inflation in the rat [J]. J Neurotrauma, 2001, 18(12):1399-1407. DOI: 10.1089/08977150152725687.

        [19]Baptiste D C, Fehlings M G. Pathophysiology of cervical myelopathy [J]. Spine J, 2006, 6(6):190-197. DOI: 10.1016/j.spinee.2006.04.024.

        [20]Hosoda Y, Yoshimura Y, Higaki S. A new breed of mouse showing multiple osteochondral lesions: Twy mouse [J]. Ryumachi, 1981, 21:157-164.

        [21]Takenouchi T, Setoguchi T, Yone K, et al. Expression of apoptosis signal-regulation kinase 1 in mouse spinal cord underchronic mechanical compression: possible involvement of the stress-activated mitogen-activated protein kinase pathways in spinal cord cell apoptosis [J]. Spinal( Phila Pa 1976), 2008, 33(18): 1943-1950. DOI: 10.1097/BRS.0b013e3181822ed7.

        [22]Yu W R, Baptiste D C, Liu T, Odrobina E, et al. Molecular mechanisms of spinal cord dysfunction and cell death in the spinal hyperostotic mouse: implications for the pathophysiology of human cervical spondylotic myelopathy [J]. Neurobiol Dis, 2009, 33(2):149-163. DOI: 10.1016/j.nbd.2008.09.024.

        [23]Long H Q, Xie W H, Chen W L, et al. Value of micro-CT for monitoring spinal microvascular changes after chronic spinal cord compression [J]. Int J Mol Sci, 2014, 15(7):12061-12073. DOI: 10.3390/ijms150712061.

        [24]Morris S H, Howard J J, Rasmusson D D, et al. Validity of transcranial motor evoked potentials as early indicators of neural compromise in rat model ofspinal cord compression [J]. Spine( Phila Pa 1976), 2015, 40(8): 492-497. DOI: 10.1097/BRS.0000000000000808.

        [25]Celik H, Karatay M, Erdem Y. The biochemical, histopathological and clinical comparison of the neuroprotective effects of subcutaneous adalimumab and intravenous methylprednisolone in an experimental compressive spinal cord trauma model [J]. Turk Neurosurg, 2016, 26(4): 622-631. DOI: 10.5137/1019-5149.JTN.13210-14.1.

        [26]Jiang H, Wang J, Xu B, et al. A model of acute central cervical spinal cord injury syndrome combined with chronic injury in goats [J]. Eur Spine J, 2017, 26(1): 56-63. DOI: 10.1007/s00586-016-4573-6.

        (2017-01-20 收稿 2017-04-10 修回)

        (本文編輯 潘奕婷)

        Advances in the animal model of cervical cord compression

        JIANG Hao, TIAN Zikai, XU Haoqin, WANG Ruijun, and PENG Baogan. Department of Spine Surgery, General Hospital of Chinese People's Armed Police Force, Beijing 100039,China

        PENG Baogan, E-mail: pengbaogan@163.com

        Cervical spondylotic myelopathy is the most common cause of spinal cord dysfunction in adults. Paradoxically, the pathobiological mechanisms associated with the progressive loss of neural tissue in the spinal cord of cervical spondylotic myelopathy patients is not clearly understood. The results of many studies in this field in 20th century have shown that spinal cord compression models are indispensible not only in investigating the efficacy of therapeutic interventions but also in gaining a better understanding into the molecular pathways involved. Preclinical studies on spinal cord compression require a reproducible, gradable, and quantifiable animal model. In this paper, the author elaborates on the establishment of an animal model of spinal cord compression from the aspects of the selection of animals, the production of animal models and neurological assessment in spinal cord injury.

        cervical spondylotic myelopathy; spinal cord compression; spinal cord injury

        R681.55

        10.13919/j.issn.2095-6274.2017.05.014

        武警總醫(yī)院臨床類創(chuàng)新預(yù)研(WZ2015003)

        100039 北京,武警總醫(yī)院脊柱外科

        彭寶淦,E-mail:pengbaogan@163.com

        猜你喜歡
        脊髓型動(dòng)物模型氣囊
        肥胖中醫(yī)證候動(dòng)物模型研究進(jìn)展
        胃癌前病變動(dòng)物模型復(fù)制實(shí)驗(yàn)進(jìn)展
        潰瘍性結(jié)腸炎動(dòng)物模型研究進(jìn)展
        頸椎前后路聯(lián)合術(shù)治療脊髓型頸椎病的效果觀察
        高田氣囊案
        糖尿病性視網(wǎng)膜病變動(dòng)物模型研究進(jìn)展
        脊髓型頸椎病前路減壓融合術(shù)的預(yù)后因素分析
        Observation on Activities of Air Sac in Opened Body Cavity of Chicken
        防跌倒警示牌在脊髓型頸椎病患者中的應(yīng)用
        氣囊助浮大型導(dǎo)管架下水可行性研究
        国产乱人精品视频av麻豆网站| 97久久综合精品国产丝袜长腿| 亚洲黄色电影| а√天堂8资源中文在线| 亚洲一区亚洲二区中文字幕| 99久久久精品免费香蕉| 人妻少妇精品视频无码专区 | 国产目拍亚洲精品一区二区| 久久久久成人精品无码| 国语对白福利在线观看| 精品国产亚洲av久一区二区三区| 亚洲中文字幕在线一区二区三区 | 无码视频一区=区| 国产亚洲精久久久久久无码77777| av狠狠色丁香婷婷综合久久 | 亚洲天堂av一区二区三区不卡| 人妻被猛烈进入中文字幕| 人妻丰满熟妇av无码区免| 亚洲av无码偷拍在线观看| 亚洲中文字幕第一页免费| 国产精品日日摸夜夜添夜夜添| 久久久久亚洲av无码专区网站| 朋友的丰满人妻中文字幕| 亚洲中文字幕一区二区在线| 久久亚洲高清观看| 欲色天天网综合久久| 国产a∨天天免费观看美女| 国产精品一区二区三区四区亚洲| 色窝综合网| 国产啪精品视频网站丝袜| 欧美日韩国产精品自在自线| 日本成年一区久久综合| 久久这里只有精品黄色| 少妇邻居内射在线| 亚洲成av人片在www| 国产青青草在线观看视频| 国产美女一区三区在线观看| 国产盗摄XXXX视频XXXX| 欧美巨大xxxx做受l| 青春草在线视频免费观看| 亚洲综合精品中文字幕|