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        稀釋液中添加還原型谷胱甘肽對豬精液液態(tài)保存效果的影響

        2017-05-16 08:14:31嚴子祎汪順偉岳順利孫中桐周佳勃
        黑龍江動物繁殖 2017年3期
        關(guān)鍵詞:頂體質(zhì)膜還原型

        嚴子祎,孫 琪,王 娜,楊 康,汪順偉,孫 夢,岳順利,孫中桐,周佳勃*

        (東北農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,黑龍江省動物細胞與遺傳工程重點實驗室,哈爾濱150030)

        稀釋液中添加還原型谷胱甘肽對豬精液液態(tài)保存效果的影響

        嚴子祎,孫 琪,王 娜,楊 康,汪順偉,孫 夢,岳順利,孫中桐,周佳勃*

        (東北農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,黑龍江省動物細胞與遺傳工程重點實驗室,哈爾濱150030)

        為了研究還原型谷胱甘肽對豬精液液態(tài)保存效果的影響,實驗通過在稀釋液中分別添加不同濃度的還原型谷胱甘肽,研究了它對豬精液液態(tài)保存后的精子活力、頂體完整率、質(zhì)膜完整率、DNA損傷率、體外受精卵裂率及囊胚率等影響。結(jié)果表明,向稀釋液中添加1 mmol/L,5 mmol/L,10 mmol/L GSH均能顯著提高精子保存質(zhì)量。其中添加1 mmol/L還原型谷胱甘肽效果最好,10 mmol/L效果較差,但大部分指標仍顯著高于對照組。證實了稀釋液中添加還原型谷胱甘肽有助于提高液態(tài)保存豬精液的質(zhì)量。

        豬精液;還原型谷胱甘肽(GSH);人工授精

        隨著家畜人工授精技術(shù)的廣泛應(yīng)用,精液保存技術(shù)越來越受重視。目前,豬的人工授精精液主要使用液態(tài)保存方法,與凍精相比能夠獲得較高的受精率,從而提高遺傳資源利用率。從液態(tài)保存效果來看,常溫保存更有利于豬的繁殖,能產(chǎn)生更大的經(jīng)濟效益[1]。

        人們發(fā)現(xiàn)使用長效稀釋液的精液在保存期是無法避免受精能力降低的。精子線粒體代謝活性氧(ROS),氧自由基會造成氧化損傷,這是受精能力下降的重要原因。因此在稀釋液中添加抵抗自由基的成分是十分必要的[2]。

        由于物種和抗氧化劑作用機理的不同,抗氧化劑在精液冷凍保存中的添加量和作用效果不盡相同。根據(jù)抗氧化劑化學(xué)性質(zhì)和作用機理可以分為維生素、酶類等幾種。

        谷胱甘肽屬于非蛋白類巰基化合物,在哺乳動物細胞中發(fā)揮著重要的生物學(xué)活性作用[3]。谷胱甘肽在細胞外源性和內(nèi)源性化合物的解毒和抗氧化作用、細胞增殖、氨基酸轉(zhuǎn)運、蛋白質(zhì)和DNA合成、二硫化物及其它化學(xué)中起著重要的作用,同時還維持著細胞內(nèi)氧化還原反應(yīng)的正常進行。它是機體內(nèi)最主要的非蛋白巰基化合物。豬精子質(zhì)膜含有大量的不飽和脂肪酸,從而為精卵結(jié)合提供必要的條件。ROS可以導(dǎo)致精子細胞質(zhì)膜的脂類物質(zhì)發(fā)生過氧化,質(zhì)膜不可逆地喪失流動性,造成精子質(zhì)膜損傷,因而造成細胞內(nèi)酶缺失,還會引起DNA損傷。精液中消除自由基的非酶系統(tǒng)主要物質(zhì)就是谷胱甘肽。GSH廣泛分布于活細胞中,它可與ROS發(fā)生反應(yīng),并作為谷胱甘肽過氧化物酶的輔助因子催化減少過氧化氫[4]。大量證據(jù)表明,精子中也存在GSH,但其濃度卻存在種屬差異。豬和兔精子中GSH的含量非常低,分別為0.3 nmol/109個精子及0.1 nmol/109個精子。但是豬的精液中存在較高水平的谷胱甘肽[5]。由于豬精液在液態(tài)保存過程需要稀釋,谷胱甘肽的濃度會發(fā)生變化,所以弄清楚最佳谷胱甘肽濃度對于改進液態(tài)保存液的配方,提高人工授精效率有重要意義。

        1 材料

        1.1 實驗動物

        實驗公豬為東北農(nóng)業(yè)大學(xué)實驗基地的36月齡健康可育的公豬。公豬在標準化的管理條件下根據(jù)標準化的飼喂程序飼養(yǎng)。所有試劑除非特殊說明均為Sigma公司出品并嚴格按照使用說明使用。

        1.2 主要試劑

        稀釋液、卵母細胞成熟液、受精液和胚胎培養(yǎng)液的配制參見文獻[2]。還原型谷胱甘肽等所有藥品均來源于Sigma公司。

        1.3 主要儀器

        倒置熒光顯微鏡,熒光顯微系統(tǒng)由Olympus(日本)生產(chǎn)。恒溫精子保存箱由余姚市福瑞杰電器廠(中國)生產(chǎn)。醫(yī)用超凈臺由蘇州凈化儀器有限公司生產(chǎn)。高壓濕熱滅菌鍋MLS-3020由SANYO公司生產(chǎn)。

        2 方法

        2.1 精液采集與處理

        公豬經(jīng)過人工方法采集精液。采集精液后用保溫瓶在50 min內(nèi)運回實驗室。當(dāng)精子活力不低于0.7的情況下方能進行實驗。將來自3~5頭公豬的精液經(jīng)過混合用于實驗。取回的豬精液加入等體積的稀釋液中混勻,30℃、150 g離心7 min。離心后去上清,用保存液1∶10稀釋下層精子塊,2 ml凍存管分裝,每管分裝1.8 ml稀釋液,精子終密度約為4×107個/ml。

        2.2 精液的降溫與保存

        裝入凍存管中的精液放入30℃含有100 ml水的200 ml燒杯中,并將燒杯放入17℃恒溫箱內(nèi)降溫保存。將分裝有精子的保存稀釋液凍存管插在泡沫漂浮板上,之后把泡沫漂浮板放到裝有30℃水的200 ml燒杯中,確定保存稀釋液液面在水面以下,放入17℃恒溫箱中儲存,150 min后取出200 ml燒杯,每8 h上下輕輕搖晃凍存管,避免精子沉淀。

        2.3 精子質(zhì)量檢測

        先將凍存管中精液振蕩混勻,然后再從小瓶中吸取50 μl的精液,檢測精子活力、質(zhì)膜及頂體完整率。每天檢查一次,共計10 d。

        精子活力的檢測。取50μl精液用1 ml稀釋液稀釋,在37℃下培養(yǎng)20 min。然后取20μl滴到37℃預(yù)熱的血球計數(shù)板上,蓋上蓋玻片,在40倍相差顯微鏡下觀察,計算精子活力。

        精子頂體狀態(tài)檢測。頂體完整性采用考馬斯亮藍染色方法檢測:將50μl的精液加入到1 ml的PBS鹽溶液中,迅速混合然后2 000 g離心5 min。沉淀物加入1 mL多聚甲醛溶液重懸固定30 min。2 000 g離心5 min,使用PBS重懸,平鋪在載玻片上,室溫下干燥。將載玻片在考馬斯亮藍G-250中處理5 min,使用蒸餾水清洗掉多余染劑。室溫下干燥,相差顯微鏡下觀察頂體完整性。

        精子質(zhì)膜的完整性檢測。采用低滲腫脹法檢測。從各實驗組的精液振蕩混勻取出50μl,放入37℃ 1 ml 低滲液中,混勻,30 min后取出20 μl滴在干凈的血球計數(shù)板上,40倍相差顯微鏡下觀察5個視野,計算質(zhì)膜完整(腫脹和彎尾精子)的百分率。

        精子DNA狀態(tài)檢測。進行彗星電泳法檢測精子DNA狀態(tài)。按照文獻[2]的方法進行,計算DNA發(fā)生斷裂的精子比例。

        精子體外受精能力檢測。按照文獻[2]的方法進行,取出成熟培養(yǎng)42~44 h的卵母細胞,去卵丘細胞。挑選胞質(zhì)飽滿均勻,有極體的卵母細胞移入預(yù)平衡過的受精液中洗3~5次。然后移入到50 μl受精滴中,加入50μl精液,在39℃、5% CO2培養(yǎng)箱中共同孵育6 h。將共孵育6 h的卵母細胞在胚胎培養(yǎng)液(PZM-3)中洗滌3~5次,移入平衡過的500 μl胚胎培養(yǎng)液中培養(yǎng)。培養(yǎng)24~48 h檢查卵裂率,培養(yǎng)6~7 d檢查囊胚率。2.4 統(tǒng)計分析

        用SPSS13.0軟件對數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計分析,數(shù)據(jù)經(jīng)過LSD轉(zhuǎn)變后用ANOVA模塊進行分析,P<0.05認為差異顯著,所有實驗均至少重復(fù)3次。

        3 結(jié)果與分析

        3.1 添加不同濃度谷胱甘肽對精子活力的影響

        表2 添加不同濃度還原型谷胱甘肽對精子頂體完整率的影響Table 2 Effects of supplemented with different concentrations reduced glutathione on percentages of acrosome-integrated sperm

        表1 添加不同濃度還原型谷胱甘肽對精子活力的影響Table 1 Effects of supplemented with different concentrations reduced glutathione on sperm motility

        (相同符號之間差異不顯著,p>0.05)

        3.2 稀稀釋液中添加不同濃度谷胱甘肽對精子頂體完整率的影響

        (相同符號之間差異不顯著,p>0.05)

        由表2可知,添加GSH保存10 d后頂體完整率仍維持在60%以上,頂體完整率下降趨勢并未像活力下降一樣明顯。其中添加1 mmol/L效果最好,與添加5 mmol/L、10 mmol/L組別差異不顯著。

        3.3 稀釋液中添加不同濃度還原型谷胱甘肽對精子質(zhì)膜完整性的影響。

        由表3可知,添加1 mmol/L、5 mmol/L GSH均能顯著提高精子質(zhì)膜的完整率,保存8 d后仍能維持60%,二者差異不顯著,但1 mmol/L效果更好。添加10 mmol/L GSH結(jié)果略好于對照組,但差異不顯著。

        表3 添加不同濃度還原型谷胱甘肽對精子質(zhì)膜完整性的影響Table 3 Effects of supplemented with different concentrations GSH on percentages of sperm tail coiling

        (相同符號之間差異不顯著,p>0.05) 3.4 稀釋液中添加不同濃度還原型谷胱甘肽對精子DNA損傷率的影響

        煤礦地面主要通風(fēng)機是礦井通風(fēng)系統(tǒng)的心臟,為地面新鮮空氣源源不斷地進入井下,到達用風(fēng)地點及排出地面提供動力,礦井主要通風(fēng)機性能測試是保障通風(fēng)機安全運行的必要條件之一。為了確保礦井主要通風(fēng)機的安全穩(wěn)定運行,《煤礦安全規(guī)程》規(guī)定煤礦新安裝的主要通風(fēng)機在投入使用前需要進行1次通風(fēng)機性能測試,以后每5年至少進行1次風(fēng)機性能測試[1],礦井通風(fēng)機性能測試工作中最為重要的就是風(fēng)機風(fēng)量測試工作,目前常用的風(fēng)量測量方法有靜壓差法和動壓法。

        表4 添加不同濃度還原型谷胱甘肽對精子DNA損傷率的影響Table 4 Effects of supplemented with different concentrations reduced glutathione on percentages of sperm DNA damage

        由表4可知,添加1 mmol/L、5 mmol/L GSH均能顯著降低精子DNA損傷率,二者差異在前6 d不顯著,其中1 mmol/L效果略好。添加10 mmol/L GSH則與對照組無顯著差異。

        3.5 稀釋液中添加不同濃度還原型谷胱甘肽對卵裂率和囊胚率的影響

        表5 添加不同濃度谷胱甘肽對卵裂率和囊胚率的影響Table 5 Effects of supplemented with different concentrations reduced glutathione on rates of cleavage and blastocyst

        由表5可知,各組別在前4 d卵裂率和囊胚率均無顯著差異。添加1 mmol/L、5 mmol/L GSH均能較好地維持精子體外受精后的卵裂率和囊胚率,前者效果稍好于后者。10 mmol/L與對照組無顯著差異。

        4 討論

        谷胱甘肽廣泛分布于活細胞中,它可與ROS發(fā)生反應(yīng),并作為谷胱甘肽過氧化物酶的輔助因子催化減少過氧化氫[2]。大量研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),精子中存在GSH,但其濃度因物種不同而存在差異[6]。

        本試驗在常溫保存稀釋液中添加還原型GSH,以期得到保護豬精子的作用。結(jié)果顯示,向稀釋液中添加1 mmol/L、5 mmol/L、10 mmol/L還原型GSH均能提高精子活力、頂體完整率、質(zhì)膜完整率、卵裂率和囊胚率。而且精子在10 d后活力依然能維持在30%以上,也就是仍具備人工授精的條件。并且添加GSH同樣降低了精子的DNA損傷率。其中添加1 mmol/L GSH效果最佳,這可能由于GSH是GPX和GR系統(tǒng)的輔助因子,能夠調(diào)節(jié)酶的活性,保護精子膜上多不飽和脂肪酸免受氧化,在抵抗脂質(zhì)過氧化中起到了重要作用。Gadea J等和Donelly ET等則發(fā)現(xiàn)GSH能夠提高山羊和人精子活力,保護精子DNA免受ROS損傷[7,8]。有報道發(fā)現(xiàn),一定濃度的GSH能夠提高人精子體外受精能力,并能保護DNA鏈的完整性[9]。這些研究結(jié)果以及我們的實驗結(jié)果都可以說明,在豬精子常溫保存方面,還原型GSH能夠具有同樣的功能。另外,添加10 mmol/L 還原型GSH雖然提高了精子保存的各項指標,但在精子質(zhì)膜完整率、DNA損傷率和體外受精率沒有顯著提高。說明即使添加高濃度的還原型GSH并不能夠進一步提高精液保存效果。

        本實驗通過研究還原性谷胱甘肽對豬精液液態(tài)保存效果的影響,發(fā)現(xiàn)添加1 mmol/L的還原型GSH有助于維持豬精液的還原狀態(tài),減輕自由基對精子的損傷,還能夠提高精子的受精能力。這些結(jié)果對于豬精液液態(tài)保存和保存液研發(fā)具有指導(dǎo)性意義。

        [ 1 ]張春龍, 周佳勃,岳順利,等. 添加N-乙酰半胱氨酸對豬精子常溫保存的影響[J]. 黑龍江畜牧獸醫(yī),2016, 85-87.

        [ 2 ]孫琪. 不同抗氧化劑對豬精液常溫保存的影響[D]. 東北農(nóng)業(yè)大學(xué) 碩士學(xué)位論文, 2004

        [ 3 ]Kovacs-Nolan J, Rupa P, Matsui T, et al. In vitro and exvivo uptake of glutathione (GSH) aczross the intestinal epithelium and fate of oral GSH after in vivo supplementation[J]. J Agric Food Chem. 2014,62(39):9499-9506.

        [ 4 ]Mailloux RJ, Craig Ayre D, Christian SL.Induction of mitochondrial reactive oxygen species production by GSH mediated S-glutathionylation of 2-oxoglutarate dehydrogenase[J]. Redox Biol.2016, 8:285-97.

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        [ 6 ]Luberda Z. The role of glutathione in mammalian gametes[J]. Reprod Biol. 2005, 5(1):5-17.

        [ 7 ]Gadea J, Gumbao D, Gómez-Giménez B, et al. Supplementation of the thawing medium with reduced glutathione improves function of frozenthawed goat spermatozoa[J]. Reprod Biol. 2013, 13(1):24-33.

        [ 8 ]Donnelly ET, McClure N, Lewis SE. Glutathione and hypotaurine in vitro: effects on human sperm motility, DNA integrity and production of reactive oxygen species[J]. Mutagenesis. 2000,15(1):61-68.

        [ 9 ]Ghorbani M, Vatannejad A, Khodadadi I, et al.Protective effects of glutathione supplementation against oxidative stress during cryopreservation of human spermatozoa[J]. Cryo Letters. 2016, 37(1):34-40.

        S828.3

        A

        1005-2739(2017)03-0006-05

        2017-01-13

        國家自然科學(xué)基金項目(編號:31372-311);東北農(nóng)業(yè)大學(xué)人才基金項目(編號:2012RCB18; 2012RCA03);哈爾濱市科技創(chuàng)新人才項目(編號:2013R FLXJ005)

        嚴子祎(1996 - ) ,女,本科。

        E-mail:1027664580@qq.com

        周佳勃(1974-) ,博士,副教授。

        E-mail: chowjb@163.com

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