武嘉庚
(青海省藥品檢驗檢測院藏藥室,青海西寧810000)
姜黃素通過下調(diào)m icroRNA-211表達促進結(jié)腸癌細胞的凋亡及其機制
武嘉庚
(青海省藥品檢驗檢測院藏藥室,青海西寧810000)
目的檢測姜黃素對結(jié)腸癌細胞中微小RNA 211(m icroRNA 211,m iR-211)表達的影響并探討miR-211調(diào)控結(jié)腸癌細胞增殖和凋亡的可能機制。方法使用MTT法和流式細胞術(shù)檢測不同濃度姜黃素在不同時間點對結(jié)腸癌細胞增殖和凋亡的影響;使用實時熒光定量PCR(qRT-PCR)檢測不同濃度姜黃素對結(jié)腸癌細胞中m iR-211表達的影響;使用生物信息學預測m iR-211下游靶基因TP53INP1并使用熒光素酶報告基因法驗證其結(jié)合;用m iR-211模擬物(m iR-211 m im ics)檢測其對姜黃素處理的結(jié)腸癌細胞增殖的影響,同時使用W estern blot法檢測其對TP53INP1蛋白表達的影響;用TP53INP1小干擾RNA檢測其對姜黃素處理的結(jié)腸癌細胞增殖和凋亡的影響。結(jié)果相較于未處理組,姜黃素在10~50μmol/L濃度可抑制腫瘤細胞增殖并促進其凋亡(P<0.05)。姜黃素可抑制腫瘤細胞中miR-211的表達,并具有時間和劑量依賴性(P<0.05);此外,miR-211下游靶基因TP53INP1蛋白表達量上調(diào)(P<0.05)。用miR-211轉(zhuǎn)染結(jié)腸癌細胞可逆轉(zhuǎn)姜黃素對其增殖的抑制作用,并且TP53INP1表達下調(diào)(P<0.05);用TP53INP1小干擾RNA可逆轉(zhuǎn)姜黃素對結(jié)腸癌細胞增殖和凋亡的影響(P<0.05)。結(jié)論姜黃素可通過下調(diào)m iR-211抑制結(jié)腸癌細胞增殖并促進其凋亡,并且TP53INP1是m iR-211下游調(diào)控蛋白之一。
結(jié)腸癌;m iR-211;姜黃素;TP53INP1;凋亡
結(jié)腸癌在全球范圍內(nèi)是腫瘤引起死亡的重要原因之一[1],并且其發(fā)生率逐年升高。由于早期篩查經(jīng)濟成本受限,大部分明確診斷的結(jié)腸癌均處于晚期階段。雖然目前治療手段不斷改善,但結(jié)腸癌的預后仍舊不佳。因此,新的治療方式仍需不斷開發(fā)。
植物提取的化學物質(zhì)由于其抗腫瘤特點受到廣泛關(guān)注。姜黃素作為一種提純的中藥單體,研究發(fā)現(xiàn)具有多種藥理作用,包括抗炎、抗氧化、抗腫瘤等。在多種腫瘤的研究中發(fā)現(xiàn),姜黃素可明顯抑制腫瘤細胞增殖并促進其凋亡,但具體分子機制研究不清[2]。微小RNA(microRNA,miRNA)是體內(nèi)一種非編碼RNA,在細胞增殖、凋亡、分化等過程中發(fā)揮重要作用。近年來研究發(fā)現(xiàn),miRNA異常表達跟腫瘤的發(fā)生、發(fā)展密切相關(guān)[3];并且姜黃素可調(diào)控miRNA表達影響腫瘤的進展。MicroRNA 211(miR-211)在腫瘤發(fā)生、發(fā)展過程中具有重要作用,但姜黃素能否通過調(diào)控miR-211表達影響腫瘤進展尚不明確。本研究旨在探討miR-211在姜黃素抑制結(jié)腸癌細胞HCT116增殖和凋亡中的作用及其分子機制。
1.1 材料
人結(jié)腸癌細胞系HCT116(凱基公司,中國),DMEM培養(yǎng)基(Invitrogen公司,美國),血清(Hyclone公司,美國),姜黃素(Sigma公司,美國),MTT粉(Sigma公司,美國),Annexin V-FITC/PI凋亡檢測試劑盒(上海生物工程有限公司,中國),雙熒光素酶報告基因表達質(zhì)粒和雙熒光素酶報告基因檢測試劑盒(Promega公司,美國),Trizol、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒以及實時熒光定量PCR試劑盒(寶生物工程公司,中國)。miR-211正向引物5'-CTGCTTGGACCTGTGA CCTGT-3',反向引物5'-TCTGCAGTAGAGGTGACCA-3';U6正向引物5'-GCTTCGGCAGCACATATAC TAAAAT-3',反向引物5'-CGCTTCACGAATTTGCGT GTCAT-3',均由寶生物工程合成。miR-211模擬物(miR-211 mimics)、miR-211下游靶基因TP53INP1(tumor protein P53-inducible nucle ar protein 1,TP53INP1)siRNA構(gòu)建以及轉(zhuǎn)染試劑盒(銳博公司,中國),TP53INP1兔抗人單克隆抗體(Abcam公司,英國),抗β-actin多克隆抗體、二抗(凱基公司,中國),PVDF膜(Millipore公司,德國)。
1.2 方法
1.2.1 細胞培養(yǎng)及藥物處理使用DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng)HCT116細胞,培養(yǎng)基含10%胎牛血清、100 u/ml青霉素、100μg/ml鏈霉素;培養(yǎng)條件:37℃,5%二氧化碳CO2。當細胞生長至70%~80%融合時,細胞給予不同濃度姜黃素(10、20、30、40和50μmol/L)處理不同時間(6、12、24和48 h),檢測其增殖和凋亡情況。
1.2.2 MTT檢測細胞增殖HCT116細胞(5 000個/孔)種植于96孔板中,培養(yǎng)過夜便于貼附;加入不同濃度姜黃素,分別于不同時間點用MTT法檢測細胞活力。未處理組細胞作為陰性對照。每孔加入5mg/m l MTT 20μl,繼續(xù)培養(yǎng)4 h;棄去培養(yǎng)液終止反應,每孔加入150μl DMSO溶解藍紫色沉淀,低速震蕩10min;在波長490 nm處檢測吸光度值。結(jié)果分析以未處理組為100%,計算抑制率。每組試驗重復3次。
1.2.3 Annexin V-FITC/PI染色和流式細胞術(shù)檢測細胞凋亡HCT166細胞以10 000個細胞/孔種植于96孔板中,培養(yǎng)過夜便于貼附;加入不同濃度姜黃素培養(yǎng)12 h或者加入30μmol/L姜黃素培養(yǎng)不同時間。未處理組細胞作為陰性對照。胰酶消化細胞,PBS洗滌,加入300μl結(jié)合液重懸,加入10μl Annexin V-FITC室溫避光孵育15min,上機前加入5μl PI,并補充200μl結(jié)合液,流式細胞儀上機檢測。Annexin V陽性細胞為凋亡細胞。所有試驗重復3次。
1.2.4 實時熒光定量PCR(quantitative real-time PCR,qRT-PCR)檢測細胞中m iR-211表達實驗分為3部分:總RNA的提取、RNA逆轉(zhuǎn)錄成cDNA、實時熒光定量PCR。總RNA提取使用Trizol法:當細胞生長至培養(yǎng)瓶80%~90%時,棄去培養(yǎng)基,PBS洗滌,加入1m l Trizol裂解細胞,轉(zhuǎn)移至EP管,靜置5min;加入氯仿200μl,震蕩15 s,室溫靜置5min,離心取上清;加入等體積異丙醇,混勻后室溫靜置10min,離心;棄上清液,加入預冷75%乙醇1ml洗滌,棄上清;加入DEPC水溶解沉淀;紫外分光光度計檢測吸光度,計算RNA濃度。逆轉(zhuǎn)錄按照試劑盒說明書要求進行操作:反應體系20μl,其中5×Prime Script Buffer 4μl,逆轉(zhuǎn)錄酶1μl,預混引物1μl,RNA 1μg;反應條件42℃30min,85℃5 s;cDNA冷凍保存。qRT-PCR在ABI7500 Fast上進行,反應體系按照說明書操作;兩步法擴增,預變性階段95℃30 s1個循環(huán);PCR反應階段:95℃3 s,60℃30 s,40個循環(huán)。結(jié)果分析根據(jù)miR-211和U6測出的CT值差異,采用ΔΔCT法計算miR-211相對表達量。所有試驗重復3次。
1.2.5 細胞轉(zhuǎn)染對于TP53INP1敲除實驗,HCT116細胞按105個/孔種植于6孔板中,DMEM完全培養(yǎng)基培養(yǎng)24 h后,無血清培養(yǎng)基沖洗;根據(jù)轉(zhuǎn)染操作說明瞬時轉(zhuǎn)染TP53INP1 siRNA和對照siRNA。對于miR-211過表達實驗,人miR-211mimics,分別轉(zhuǎn)染進入HCT116細胞。轉(zhuǎn)染24 h后加入40μmol/L姜黃素處理24 h,收集細胞進一步分析。
1.2.6 W estern blot檢測TP53INP1蛋白表達HCT116細胞處理后加入含蛋白酶抑制劑的RIPA裂解細胞,冰上作用40min,10 000 r/min 15min,獲得上清液;根據(jù)BCA法測定蛋白濃度;蛋白樣本處理:加入1/5體積5×SDS-PAGE上樣緩沖液,充分混勻,100℃煮沸5min;電泳:制備SDS-PAGE凝膠,根據(jù)蛋白濃度每孔加入一定量蛋白樣本,電泳;轉(zhuǎn)膜:切膠并剪下相應大小PVDF膜,在轉(zhuǎn)膜液用一定電流將蛋白轉(zhuǎn)入PVDF膜上;脫脂奶粉封閉非特異性位點;一抗anti-TP53INP1(1∶1 000),anti-β-actin(1∶2 000)4℃孵育過夜;二抗孵育;顯色反應。結(jié)果采用Image J軟件計算灰度值進行數(shù)據(jù)分析。所有試驗重復3次。
1.2.7 熒光素酶報告基因法檢測m iR-211與靶基因TP53INP1的結(jié)合pGL3-TP53INP1-3’UTR和pGL3-TP53INP1-3’UTR mutant質(zhì)粒購自Promega公司。在轉(zhuǎn)染前,HCT116細胞按105個/孔接種于24孔板中,培養(yǎng)24 h。根據(jù)檢測試劑盒說明書操作,熒光素酶報告基因表達質(zhì)粒和pRL-TK共同轉(zhuǎn)染細胞,同時給予miR-211 mimics和對照組。24h后檢測熒光素酶活性。螢火蟲熒光素酶活性根據(jù)相應海腎熒光素酶活性進行標化。所有試驗重復3次。
1.3 統(tǒng)計學方法
采用SPSS 19.0統(tǒng)計軟件進行數(shù)據(jù)分析,計量資料用均數(shù)±標準差(x±s)表示,多組間均數(shù)的比較用單因素方差分析,在方差分析有統(tǒng)計學意義的基礎上,再行LSD-t檢驗(兩濃度組間)或配對t檢驗(兩時間點間)進行兩兩比較,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 姜黃素對結(jié)腸癌細胞HCT116增殖和凋亡的影響
HCT116結(jié)腸癌細胞用不同濃度姜黃素(10、20、30、40和50μmol/L)處理,不同時間(6、12、24和48h)細胞活性用MTT法檢測。結(jié)果顯示(見圖1A),相較于未處理組,10~50μmol/L濃度姜黃素對HCT116均有不同程度抑制,隨著劑量的增加抑制率上升,隨著處理時間的延長抑制率同樣逐漸增加;其中24和48 h抑制效應顯著增加,分別是17%~55%和20%~76%(P<0.05)。
用流式細胞術(shù)檢測姜黃素對HCT116細胞凋亡的影響。不同濃度姜黃素處理24 h后,結(jié)果顯示(見圖1B),10~50μmol/L姜黃素對HCT116凋亡均有不同程度促進(9.25%~42.34%,P<0.05)。30μmol/L姜黃素處理不同時間結(jié)果顯示(見圖1C),隨著時間延長,姜黃素促進凋亡效應逐漸增加(6.34%~32.23%,P<0.05)。
2.2 姜黃素對HCT116細胞m iR-211表達的影響
HCT116細胞用不同濃度姜黃素處理24h后,收集細胞,用qRT-PCR法檢測HCT116細胞中miR-211的表達。結(jié)果顯示(見圖2),相較于未處理組,10~50μmol/L姜黃素均可抑制miR-211的表達,且具有劑量依賴性(14%~62%,P<0.05)。
2.3 MiR-211下游靶基因的預測及驗證
為了進一步研究miR-211對HCT116細胞增殖和凋亡的影響,采用生物信息學方法,用Target Scan數(shù)據(jù)庫篩選miR-211跟增殖和凋亡相關(guān)的下游靶基因。結(jié)合文獻分析,本研究選擇TP53INP1作為miR-211潛在下游靶基因。為了驗證預測的TP53INP1是否為miR-211靶基因,能否和TP53INP1的3’UTR結(jié)合,將miR-211mimics與構(gòu)建的TP53INP1-wt、TP53INP1-mut質(zhì)粒轉(zhuǎn)染HCT116細胞,24 h后檢測熒光素酶活性。結(jié)果顯示(見圖3),相較于對照組,miR-211mimics可抑制TP53INP1-wt載體熒光素酶活性(抑制率為41%,P<0.05),而對TP53INP1-mut熒光素酶活性無明顯影響。實驗結(jié)果與數(shù)據(jù)庫預測結(jié)果一致,說明miR-211可以和TP53INP1 3’UTR結(jié)合。
圖1 不同濃度姜黃素處理HCT116不同時間對其增殖和凋亡的影響
2.4 過表達m iR-211對HCT116細胞TP53INP1蛋白表達和增殖的影響
檢測高表達miR-211對姜黃素處理的HCT116細胞生物學活性的影響。Western blot結(jié)果顯示(見圖4A),相較于對照組,高表達miR-211可抑制姜黃素處理組HCT116細胞TP53INP1蛋白水平的表達(P<0.05)。MTT結(jié)果顯示(見圖4B),相較于姜黃素處理組,高表達miR-211可緩解姜黃素對HCT116細胞增殖的抑制作用(P<0.05)。
圖2 不同濃度姜黃素對HCT116細胞中m iR-211表達的影響
圖3 m iR-211作用于TP53INP1 3’UTR抑制熒光素酶活性
2.5 抑制TP53INP1基因表達對HCT116細胞增殖和凋亡的影響
用siRNA技術(shù)研究TP53INP1在姜黃素抗腫瘤效應中的作用。用TP53INP1 siRNA和對照siRNA分別轉(zhuǎn)染HCT116細胞,再給予40μmol/L姜黃素作用24 h,MTT結(jié)果顯示(見圖5A),相較于對照組,TP53INP1 siRNA組可逆轉(zhuǎn)姜黃素對HCT116的抑制效應(P<0.05)。凋亡實驗結(jié)果顯示(見圖5B),相較于對照組,TP53INP1 siRNA組可抑制姜黃素促進HCT116細胞凋亡作用(P<0.05)。
圖4 高表達m iR-211對HCT116細胞TP53INP1蛋白表達和增殖的影響
圖5 TP53INP1 siRNA對HCT116細胞增殖和凋亡的影響
姜黃素作為一種中藥提純的單體,具有明確的抗腫瘤作用。研究發(fā)現(xiàn),姜黃素可通過作用NF-κB、Notch、P53、Caspase-3、細胞周期蛋白D1等途徑促進腫瘤細胞凋亡并抑制其增殖[4-5],但具體分子機制尚不清楚。本實驗結(jié)果發(fā)現(xiàn),姜黃素可促進結(jié)腸癌細胞HCT116的增殖并抑制其凋亡,效應具有時間和劑量依賴的特點。
miRNA是長度約22個核苷酸左右的單鏈非編碼RNA序列,主要通過結(jié)合目標mRNA 3’UTR非編碼區(qū)來抑制其功能,從而促進其降解或者抑制蛋白翻譯。在腫瘤學研究中,異常的miRNA表達跟腫瘤的發(fā)生、發(fā)展密切相關(guān)[3]。計算機模擬預測發(fā)現(xiàn)每個miRNA可調(diào)節(jié)多個靶基因,并且人類超過50%編碼基因都可受到miRNA調(diào)控。因此,不同腫瘤miRNA表達特征可作為潛在的早期診斷、治療以及預后判斷的重要指標。近期的研究發(fā)現(xiàn),姜黃素的抗腫瘤效應和miRNA的表達密切相關(guān)。在胰腺癌的研究中,MA等[6]發(fā)現(xiàn)姜黃素可上調(diào)miR-7表達,從而下調(diào)組蛋白甲基轉(zhuǎn)移酶抑制腫瘤細胞生長和侵襲轉(zhuǎn)移。在非小細胞肺癌研究中,ZHANG等[7]發(fā)現(xiàn),姜黃素可通過下調(diào)miR-186促進A549細胞凋亡。在膀胱癌研究中,SAINI等[8]發(fā)現(xiàn),姜黃素可通過調(diào)節(jié)miR-203影響Src-Akt軸抑制腫瘤。該研究顯示,姜黃素通過調(diào)節(jié)miRNA表達是其抗腫瘤的重要機制之一。因此,篩選出姜黃素在不同腫瘤中特異性調(diào)節(jié)的miRNA分子是腫瘤靶向治療重要方向。
結(jié)腸癌在全球范圍內(nèi)具有較高的發(fā)生率和死亡率。近年來的研究發(fā)現(xiàn),miRNA和結(jié)腸癌發(fā)生、發(fā)展密切相關(guān)。ASANGANI等[9]首次發(fā)現(xiàn)miR-21可促進腫瘤侵襲轉(zhuǎn)移,并且結(jié)腸癌中高表達的miR-21可通過轉(zhuǎn)錄后調(diào)節(jié)的方式抑制抑癌基因程序性細胞凋亡因子4表達。ZHANG等[10]通過高通量測序分析結(jié)腸癌患者miRNA表達譜差異,篩選出得特異性miRNA可預測術(shù)后化療效果并可判斷復發(fā)情況。姜黃素調(diào)控結(jié)腸癌miRNA表達主要研究的是miR-21,對其他miRNA研究不多,本研究主要就miR-211進行研究。
miR-211在不同腫瘤中具有不同作用特點。CHANG等[11]發(fā)現(xiàn)在口腔腫瘤中miR-211高表達,并且其與腫瘤預后不佳相關(guān)。在胰腺癌研究中發(fā)現(xiàn)[12],低表達miR-211的患者具有更短的中位生存時間,但具體機制不清。CAI等[13]在結(jié)直腸癌研究中發(fā)現(xiàn),miR-211可通過下調(diào)抑癌基因染色質(zhì)域解旋酶DNA結(jié)合蛋白5促進腫瘤生長。本實驗研究發(fā)現(xiàn),結(jié)腸癌細胞HCT116高表達miR-211,并且姜黃素可抑制miR-211表達,效應具有劑量依賴性。
研究已報道多個miR-211下游靶基因,如Brn2(brain 2)[14]、NUAK1(NUAK family SNF1-like kinase 1)[15]、TGFβRⅡ(transforming growth factorβreceptorⅡ)等[16],這些靶基因具有不同生物學功能。本研究采用Target Scan數(shù)據(jù)庫篩選miR-211下游靶基因,發(fā)現(xiàn)TP53INP1(Tumor protein P53-inducible nuclear protein 1)可作為候選靶基因。TP53INP1是一種抑癌基因,在多種腫瘤組織中表達下調(diào),可調(diào)控P53活化狀態(tài),跟細胞死亡、細胞周期停滯以及細胞遷移密切相關(guān)[17]。SEUX等[18]研究發(fā)現(xiàn),TP53INP1可調(diào)控分泌型富含半胱氨酸酸性蛋白(secreted protein acidic and rich in cysteine,SPARC)的表達抑制胰腺癌細胞侵襲轉(zhuǎn)移。在肝癌中研究發(fā)現(xiàn)[19],上調(diào)的miR-182可通過下調(diào)TP53INP1,從而增加腫瘤耐藥。因此,筆者推測TP53INP1的表達增高跟姜黃素誘導的HCT116凋亡有關(guān)。實驗結(jié)果表明,姜黃素處理后TP53INP1蛋白表達增高,并且干擾TP53INP1表達能促進HCT116細胞增殖、抑制其凋亡。
綜上所述,miR-211在調(diào)控姜黃素的抗腫瘤效應方面具有重要作用,其機制可能是通過下調(diào)TP53INP1蛋白表達,從而促進腫瘤細胞增殖、抑制其凋亡。
[1]JEMAL A,BRAY F,CENTER MM,et al.Global cancer statistics[J].CA:A Cancer Journal for Clinicians,2011,61(2):69-90.
[2]BOYANAPALLI SSS,KONG A N T.“Curcumin,the king of spices”:epigenetic regulatory mechanisms in the prevention of cancer,neurological,and inflammatory diseases[J].Current Pharmacology Reports,2015,1(2):129-139.
[3]LIN S,GREGORY R I.MicroRNA biogenesis pathways in cancer[J].Nature Reviews Cancer,2015,15(6):321-333.
[4]BELAKAVADI M,SALIMATH B P.Mechanism of inhibition of ascites tumor growth in mice by curcumin is mediated by NF-kB and caspase activated DNase[J].Molecular and Cellular Biochemistry,2005,273(1-2):57-67.
[5]SUBRAMANIAM D,PONNURANGAM S,RAMAMOORTHY P, et al.Curcumin induces cell death in esophageal cancer cells through modulating Notch signaling[J].PloS One,2012,7(2): e30590.
[6]MA J,FANG B,ZENG F,et al.Curcumin inhibits cell growth and invasion through up-regulation of miR-7 in pancreatic cancer cells[J].Toxicology Letters,2014,231(1):82-91.
[7]ZHANG J,DU Y,WU C,et al.Curcumin promotes apoptosis in human lung adenocarcinoma cells through miR-186*signaling pathway[J].Oncology Reports,2010,24(5):1217-1223.
[8]SAINI S,ARORA S,MAJID S,et al.Curcumin modulates microRNA-203-mediated regulation of the src-akt axis in bladder cancer[J].Cancer Prevention Research,2011,4(10):1698-1709.
[9]ASANGANI IA,RASHEED SA K,NIKOLOVA D A,et al.MicroRNA-21(miR-21)post-transcriptionally downregulates tumor suppressor Pdcd4 and stimulates invasion,intravasation and metastasis in colorectal cancer[J].Oncogene,2008,27(15):2128-2136.
[10]ZHANG JX,SONG W,CHEN ZH,et al.Prognostic and predictive value of a microRNA signature in stageⅡcolon cancer:a microRNA expression analysis[J].The Lancet Oncology, 2013,14(13):1295-1306.
[11]CHANG KW,LIU C J,CHU T H,et al.Association between high miR-211 microRNA expression and the poor prognosis of oral carcinoma[J].Journal of Dental Research,2008,87(11): 1063-1068.
[12]NIELSEN B S,J?RGENSEN S,FOG JU,et al.High levels of microRNA-21 in the stroma of colorectal cancers predict short disease-free survival in stageⅡcolon cancer patients[J].Clinical&Experimental Metastasis,2011,28(1):27-38.
[13]CAI C,ASHKTORAB H,PANG X,et al.MicroRNA-211 expression promotes colorectal cancer cell growth in vitro and in vivo by targeting tumor suppressor CHD5[J].PLoS One,2012,7 (1):e29750.
[14]BOYLE G M,WOODS S L,BONAZZI V F,et al.Melanoma cell invasiveness is regulated by miR-211 suppression of the BRN2 transcription factor[J].Pigment Cell&Melanoma Research, 2011,24(3):525-537.
[15]BELL R E,KHALED M,NETANELY D,et al.Transcription factor/microRNA axis blocks melanoma invasion program by miR-211 targeting NUAK1[J].Journal of Investigative Dermatology,2014,134(2):441-451.
[16]YU Y,KANWAR SS,PATEL B B,et al.MicroRNA-21 induces stemness by down regulating transforming growth factor beta receptor 2(TGFβR2)in colon cancer cells[J].Carcinogenesis,2012,33(1):68-76.
[17]SEILLIER M,PEUGET S,GAYET O,et al.TP53INP1,a tumor suppressor,interacts with LC3 and ATG8-family proteins through the LC3-inte racting region(LIR)and promotes autophagy-dependent cell death[J].Cell Death&Differentiation, 2012,19(9):1525-1535.
[18]SEUX M,PEUGET S,MONTERO M P,et al.TP53INP1 decreases pancreatic cancer cell migration by regulating SPARC expression[J].Oncogene,2011,30(27):3049-3061.
[19]QIN J,LUO M,QIAN H,et al.Upregulated miR-182 increases drug resistance in cisplatin-treated HCC cell by regulating TP53INP1[J].Gene,2014,538(2):342-347.
(張蕾編輯)
Curcum in promotes apoptosis in colon cancer by downregulating m iR-211 expression
Jia-gengWu
(Tibetan Medicine Room,Qinghai Provincial Drug Inspection and Testing Institute, Xining,Qinghai810000,China)
ObjectiveTo study the effect of curcumin on miR-211 in colon cancer cells and clarify amiR-211-mediated mechanism which plays a role in the anti-tumor effects of curcumin.MethodsThe dose-effect and timeeffect relationship of curcumin on HCT116 was tested by MTT assay and flow cytometry.Expression level ofmiR-211 in curcumin-treated HCT116 was detected by qRT-PCR.TP53INP1 was predicted as a target ofmiR-211 using GeneTarget database and confirmed by dual luciferase reporter assays.Additionally,the effect of upregulatingmiR-211 bymiR-211 mimics or silencing TP53INP1 by siRNA on curcumin-treated HCT116 was examed by MTT and flow cytometry.ResultsCompared with untreated HCT116 cells,curcumin at 10-50μmol/L inhibited cell proliferation and induced apoptosis in a dose-dependent and time-dependentmanner.Curcumin also produced a dose and time dependent suppression of miR-211(P<0.05).Moreover,the protein level of TP53INP1 was significantly elevated in crucumin-treated HCT116 cells(P<0.05).Transfection of HCT116 withmiR-211mimicsor TP53INP1 small interfering RNA significantly reversed the effect of curcumin on HCT116,compared to corresponding controls(P<0.05).ConclusionsOur data suggesta novelmolecularmechanism in which inhibition of miR-211 and upregulation of TP53INP1mediate the anticancer activities of curcumin in colon cancer cells.
colon cancer;miR-211;curcumin;TP53INP1;apoptosis
R 735.35
A
10.3969/j.issn.1005-8982.2016.24.004
1005-8982(2016)24-0018-06
2016-07-06