張紅蕾,徐志棟,李 瑋,2*,楊瑜濤,杜 潔,韓孟楠,王爍康
(1.河北大學(xué) 化學(xué)與環(huán)境科學(xué)學(xué)院,河北 保定 071002;2.河北博倫特藥業(yè)有限公司,河北 石家莊 052263)
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生物轉(zhuǎn)化L-脯氨酸生成反式-4-羥基-L-脯氨酸的定量分析方法
張紅蕾1,徐志棟1,李瑋1,2*,楊瑜濤1,杜潔1,韓孟楠1,王爍康1
(1.河北大學(xué)化學(xué)與環(huán)境科學(xué)學(xué)院,河北保定071002;2.河北博倫特藥業(yè)有限公司,河北石家莊052263)
以芴甲氧羰酰氯(FMOC-Cl)為柱前衍生劑,四硼酸鈉為緩沖溶液,建立了一種柱前衍生反相高效液相色譜(RP-HPLC)測(cè)定微生物轉(zhuǎn)化L-脯氨酸生成反式-4-羥基-L-脯氨酸的定量分析方法。優(yōu)化了衍生反應(yīng)條件,當(dāng)衍生反應(yīng)體系中水和乙腈的比例為66∶34,pH值為9.9時(shí)衍生效果最佳。采用Agilent Extend C-18柱進(jìn)行分離,以0.1%三氟乙酸水溶液和乙腈作為流動(dòng)相,梯度洗脫,檢測(cè)波長263 nm。L-脯氨酸和反式-4-羥基-L-脯氨酸均在0.01~5.00 mg/mL范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,相關(guān)系數(shù)均大于0.999,檢出限為5.00~7.00 ng/L,不同濃度下的平均回收率分別為98.9%~102%和97.9%~100%。該方法重現(xiàn)性好,精密度高,為定量分析微生物發(fā)酵液中的L-脯氨酸和反式-4-羥基-L-脯氨酸提供了有效方法。
柱前衍生;反相高效液相色譜;反式-4-羥基-L-脯氨酸;L-脯氨酸;微生物轉(zhuǎn)化
反式-4-羥基-L-脯氨酸(trans-4-Hydroxy-L-proline,trans-Hyp)為亞氨基酸,是L-脯氨酸 (L-Pro) 羥基化后的產(chǎn)物,易于衍生,藥理活性多樣[1-2],可用于新一代培南類抗生素[3]、抗腫瘤藥[4]、抗高血壓藥[5]及新型胃藥[6]等多種新創(chuàng)制藥物的合成。由于具有抗氧化、抗輻射的作用,該物質(zhì)在化妝品領(lǐng)域也有重要應(yīng)用[7]。
目前,反式-4-羥基-L-脯氨酸的生產(chǎn)方法主要有生物提取法和生物酶催化轉(zhuǎn)化法[8-11]。生物提取法主要以動(dòng)物膠原蛋白為原料,通過強(qiáng)酸水解、亞硝酸氧化和離子交換樹脂純化等過程制備,此方法雖然技術(shù)成熟,但原料成本高,提取率低,“三廢”排放量大、污染嚴(yán)重。生物酶催化法利用脯氨酸羥化酶的催化特性,以L-脯氨酸為原料通過發(fā)酵轉(zhuǎn)化得到反式-4-羥基-L-脯氨酸。生物轉(zhuǎn)化法與生物提取法相比反應(yīng)條件溫和,能耗低,污染小。本實(shí)驗(yàn)室曾篩選到一株可以生物轉(zhuǎn)化L-脯氨酸產(chǎn)生反式-4-羥基-L-脯氨酸的重組大腸桿菌工程菌[12]。
在反式-4-羥基-L-脯氨酸的微生物轉(zhuǎn)化及生產(chǎn)中,對(duì)其含量進(jìn)行分析十分重要。目前,文獻(xiàn)已報(bào)道的反式-4-羥基-L-脯氨酸的定量分析方法大部分采用氯胺T法[13],該方法簡(jiǎn)便易操作,但檢測(cè)濃度范圍較窄,且只能對(duì)羥脯氨酸定量,無法反映脯氨酸的變化情況。高效液相色譜可解決這一問題,本文借鑒衍生試劑柱前衍生氨基酸的高效液相色譜分析方法[14-16],利用芴甲氧羰酰氯(FMOC-Cl)與樣品進(jìn)行衍生反應(yīng),對(duì)衍生體系中水和乙腈的比例進(jìn)行了優(yōu)化,并對(duì)衍生化樣品的穩(wěn)定性進(jìn)行了考察。結(jié)果顯示,該方法前處理簡(jiǎn)單、檢測(cè)范圍寬、重復(fù)性好、衍生產(chǎn)物穩(wěn)定,為應(yīng)用高效液相色譜分離及定量分析微生物轉(zhuǎn)化體系中L-脯氨酸和反式-4-羥基-L-脯氨酸提供了有效方法。
1.1儀器與材料
Dionex Ultimate 3000型高效液相色譜儀(美國Thermo Fisher Scientific公司);Centrifuge 5424R離心機(jī)(德國Eppendorf公司);ZWYR-200D振蕩培養(yǎng)箱(上海智城分析儀器制造有限公司);Vortex-5旋渦混合器(海門市其林貝爾儀器制造有限公司);BT125D天平(德國Sartorius公司)。
L-脯氨酸、反式-4-羥基-L-脯氨酸、FMOC-Cl、十水合四硼酸鈉(上海阿拉丁生化科技股份有限公司);三氟乙酸(上海麥恪林生化科技有限公司);乙腈、甲醇(安徽時(shí)聯(lián)特種試劑有限公司);LB培養(yǎng)基(生工生物工程股份有限公司)。實(shí)驗(yàn)用水均為去離子水。
1.2標(biāo)準(zhǔn)溶液的配制
精密稱取L-脯氨酸和反式-4-羥基-L-脯氨酸適量,用水配制成濃度為50.00 mg/mL 的標(biāo)準(zhǔn)溶液,分別將上述兩種標(biāo)準(zhǔn)溶液用水梯度稀釋至0.01,0.05,0.10,0.20,0.40,0.80,1.00,2.00,3.00,4.00,5.00 mg/mL。于4 ℃保存,備用。
1.3衍生化方法
1.3.1標(biāo)準(zhǔn)品衍生化 分別吸取“1.2”中不同濃度標(biāo)準(zhǔn)品溶液50 μL于1.5 mL EP管中,向每支EP管內(nèi)分別加入200 μL 0.125 mol/L四硼酸鈉水溶液、410 μL水、320 μL乙腈、20 μL FMOC-Cl的乙腈溶液(0.38 mol/L),置于渦旋混勻器振蕩5 s后靜置10 min,過0.45 μm微孔濾膜后進(jìn)行RP-HPLC檢測(cè)。
1.3.2待測(cè)樣品衍生化 重組大腸桿菌接種于含3.00 g/LL-脯氨酸的LB培養(yǎng)基中,于37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48 h,將大腸桿菌發(fā)酵液以9 000 r/min離心2 min,取50 μL上清液加入1.5 mL離心管內(nèi),并加入0.125 mol/L四硼酸鈉水溶液200 μL、水410 μL、乙腈320 μL、0.38 mol/L FMOC-Cl的乙腈溶液20 μL,置于渦旋混勻器振蕩5 s后靜置10 min,過0.45 μm微孔濾膜后進(jìn)行RP-HPLC分析。
1.4RP-HPLC分析條件
色譜柱為Agilent Extend C-18(4.6 mm ×250 mm,5 μm,Agilent公司),流動(dòng)相A為0.1% 三氟乙酸水溶液,B為0.1% 三氟乙酸乙腈溶液,檢測(cè)波長263 nm,進(jìn)樣量5 μL,梯度洗脫條件∶0~5 min,30% B;5~8 min,30%~40% B;8~15 min,40% B;15~20 min,40%~50% B;20~25 min,50% B;25~30 min,50%~90% B;30~38 min,90% B;38~41 min,90%~30% B;41~45 min,30% B。
1.5衍生化樣品的穩(wěn)定性測(cè)定
分別配制濃度為0.20,1.00,5.00 mg/mL 的L-脯氨酸和反式-4-羥基-L-脯氨酸的標(biāo)準(zhǔn)品,進(jìn)行衍生化處理后,再分別于4 ℃、室溫(RT)和37 ℃放置20 h后取出進(jìn)行液相色譜分析,以室溫放置0 h的衍生化樣品為對(duì)照。并采用RP-HPLC對(duì)4 ℃保存0,12,24,48,72 h的不同濃度衍生化樣品的穩(wěn)定性進(jìn)行分析。
2.1衍生條件優(yōu)化
2.1.1衍生體系緩沖鹽的選擇 對(duì)衍生體系3種不同緩沖鹽溶液進(jìn)行考察。結(jié)果顯示,以N-甲基嗎啉鹽酸鹽(0.125 mol/L)作為緩沖鹽時(shí),L-脯氨酸和反式-4-羥基-L-脯氨酸的衍生產(chǎn)物不出峰;以三乙胺(0.125 mol/L)作為緩沖鹽時(shí)有目標(biāo)峰,但相鄰有雜峰干擾;以四硼酸鈉(0.125 mol/L)作為緩沖鹽時(shí),不僅有呈高斯對(duì)稱的目標(biāo)峰,無雜峰干擾,且峰面積最大。綜上所述,選擇最佳緩沖鹽為四硼酸鈉。
2.1.2衍生體系水與乙腈比例的選擇 對(duì)衍生體系中水與乙腈的不同比例進(jìn)行了研究。在不同水和乙腈比例條件下,5.00 mg/mLL-脯氨酸和反式-4-羥基-L-脯氨酸標(biāo)準(zhǔn)溶液的衍生結(jié)果如表1所示,當(dāng)水和乙腈的比例為98∶2和82∶18時(shí)有FMOC-Cl結(jié)晶析出,衍生產(chǎn)物的峰高較低;當(dāng)水和乙腈的比例為50∶50和34∶66時(shí)有四硼酸鈉結(jié)晶析出,且衍生產(chǎn)物的峰嚴(yán)重拖尾;當(dāng)水和乙腈的比例為66∶34時(shí),衍生產(chǎn)物無色透明,峰形呈高斯對(duì)稱,且半峰寬較窄,無明顯拖尾,故選擇該比例下0.38 mol/L衍生劑用量20 μL。在該比例下緩沖體系的pH值為9.9,滿足上述兩種氨基酸易于在堿性環(huán)境中衍生的條件。
表1 不同比例的水和乙腈對(duì)衍生效果的影響Table 1 Effect of different proportions for water and acetonitrile on derivatization
2.1.3衍生反應(yīng)時(shí)間的選擇將5.00 mg/mLL-脯氨酸和反式-4-羥基-L-脯氨酸的衍生反應(yīng)體系分別靜置0,1,5,10,15,20 min后,采用RP-HPLC檢測(cè),發(fā)現(xiàn)隨反應(yīng)時(shí)間的延長,兩種氨基酸的峰面積相應(yīng)增加,當(dāng)反應(yīng)時(shí)間為10 min時(shí),峰面積達(dá)到最大,反應(yīng)時(shí)間繼續(xù)延長,峰面積反而下降。故選擇最優(yōu)反應(yīng)時(shí)間為10 min。
2.2線性范圍、檢出限與回收率
在“2.1”優(yōu)化條件下,對(duì)不同濃度(0.01,0.05,0.10,0.20,0.40,0.80,1.00,2.00,3.00,4.00,5.00 mg/mL)的L-脯氨酸和反式-4-羥基-L-脯氨酸標(biāo)準(zhǔn)溶液衍生后,采用高效液相色譜進(jìn)行分析,每個(gè)濃度重復(fù)進(jìn)樣5次,以峰面積(y)為縱坐標(biāo),標(biāo)準(zhǔn)品濃度(x,mg/mL)為橫坐標(biāo)進(jìn)行線性回歸,L-脯氨酸和反式-4-羥基-L-脯氨酸的線性方程分別為y=33.79x+0.983 0和y=38.86x+0.939 7,相關(guān)系數(shù)(r2)分別為0.999 9和0.999 8,線性范圍均為0.01~5.00 mg/mL。當(dāng)信噪比為4時(shí),L-脯氨酸和L-羥脯氨酸的檢出限分別為7.00 ng/L 和5.00 ng/L。重復(fù)測(cè)定不同濃度的標(biāo)準(zhǔn)溶液5次,L-脯氨酸和反式-4-羥基-L-脯氨酸的平均回收率分別為98.9%~102%和97.9%~100%。
2.3精密度與重現(xiàn)性
將不同濃度(1.00,2.00,3.00,4.00,5.00 mg/mL)的L-脯氨酸和反式-4-羥基-L-脯氨酸標(biāo)準(zhǔn)溶液按“1.3”方法處理后,進(jìn)行RP-HPLC分析,每種濃度做5個(gè)平行,不同批次做3次重復(fù)。兩種待測(cè)物3批次5次平行間的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)均小于3%,表明該方法的重現(xiàn)性良好。
2.4儲(chǔ)存條件對(duì)衍生化樣品穩(wěn)定性的影響
分別對(duì)5.00 mg/mLL-脯氨酸和反式-4-羥基-L-脯氨酸衍生后樣品的儲(chǔ)存溫度進(jìn)行檢測(cè)。經(jīng)衍生化處理后,2種氨基酸衍生化樣品分別于室溫、37 ℃和4 ℃下放置20 h后進(jìn)行RP-HPLC檢測(cè)。結(jié)果顯示,以室溫放置0 h的衍生化樣品為對(duì)照(CK),發(fā)現(xiàn)衍生化樣品于4 ℃儲(chǔ)存時(shí)的穩(wěn)定性最佳,與CK相比無顯著差異。而室溫放置20 h和37 ℃放置20 h的樣品的穩(wěn)定性較CK顯著下降(P<0.05),說明低溫儲(chǔ)存有利于衍生化樣品的穩(wěn)定。
此外,對(duì)不同濃度衍生化樣品于4 ℃的儲(chǔ)存時(shí)間(0,12,24,48,72 h)進(jìn)行了檢測(cè)。結(jié)果顯示,不同濃度的L-脯氨酸和反式-4-羥基-L-脯氨酸在不同保存時(shí)間下的峰面積無顯著差異,說明衍生化處理的樣品在4 ℃較為穩(wěn)定,可以短時(shí)間(72 h)于4 ℃保存。
2.5微生物發(fā)酵體系中反式-4-羥基-L-脯氨酸的色譜分離及測(cè)定
圖1 氨基酸標(biāo)準(zhǔn)品及發(fā)酵液樣品的色譜圖Fig.1 Chromatograms of amino acids standard and fermented liquid samplesa:L-Pro and trans-Hyp standard;b:L-Pro in LB mediun without inoculation of bacterium;c:co-culture with L-Pro biotransforming bacteriumwhich can bioconvert L-Pro into trans-Hyp
應(yīng)用上述優(yōu)化的柱前衍生方法檢測(cè)重組大腸桿菌轉(zhuǎn)化體系中L-脯氨酸和反式-4-羥基-L-脯氨酸的含量。氨基酸標(biāo)準(zhǔn)品及發(fā)酵液樣品的色譜圖見圖1,由圖可見大腸桿菌發(fā)酵液中L-脯氨酸和反式-4-羥基-L-脯氨酸獲得了良好的分離,根據(jù)線性回歸方程計(jì)算出剩余L-脯氨酸的濃度為0.64 mg/mL,轉(zhuǎn)化生成反式-4-羥基-L-脯氨酸的濃度為1.77 mg/mL,表明此時(shí)大腸桿菌轉(zhuǎn)化L-脯氨酸為反式-4-羥基-L-脯氨酸的轉(zhuǎn)化率為 59.0%。
采用本文建立的柱前衍生反相高效液相色譜法可以準(zhǔn)確、快速、靈敏地分離并檢測(cè)重組大腸桿菌轉(zhuǎn)化體系中的L-脯氨酸和反式-4-羥基-L-脯氨酸含量,該方法適用于微生物轉(zhuǎn)化體系中L-脯氨酸和反式-4-羥基-L-脯氨酸的分離及定量分析。
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Quantitative Analysis of trans-4-Hydroxy-L-proline by Microbial Conversion of L-Proline
ZHANG Hong-lei1,XU Zhi-dong1,LI Wei1,2*,YANG Yu-tao1,DU Jie1,HAN Meng-nan1,WANG Shuo-kang1
(1.College of Chemistry Environmental Science,Hebei University,Baoding071002,China;2.Heibei Brant Pharmaceutical Co.,Ltd.,Shijiazhuang052263,China)
trans-4-Hydroxy-L-proline is one of the valuable chiral building block in the production of many pharmaceuticals.A quantification method oftrans-4-hydroxy-L-proline andL-proline from microbial transformation by using reverse phase high performance liquid chromatography (RP-HPLC) was developed.9-Fluorenylmethyl chloroformate(FMOC-Cl) was used as pre-column derivation agent,and the derivatization was proceeded in sodium tetraborate buffer solution(pH 9.9) containing acetonitrile-water(66∶34).The solution then was separated on an Agilent Extend C-18 column by using 0.1% trifluoroacetic acid and acetonitrile as mobile phase,and detected with UV detector at 263 nm.The linear ranges of two amino acid were in the range of 0.01-5.00 mg/mL,with correlation coefficients greater than 0.999.The limits of detection(LOD) were in the range of 5.00-7.00 ng/L,and the average recoveries oftrans-4-hydroxy-L-proline andL-proline were 98.9%-102% and 97.9%-100%,respectively.This method provides an effective way to quantifyL-proline andtrans-4-hydroxy-L-proline in microorganism fermented liquid system with good reproducibility,and high precision.
pre-column derivation; RP-HPLC;trans-4-hydroxy-L-proline;L-proline; microbial conversion
2016-02-16;
2016-04-05
2014年河北省高等學(xué)校高層次人才科學(xué)研究項(xiàng)目(GCC 2014013 );國家國際科技合作專項(xiàng)項(xiàng)目(2013DFB30190)
李瑋,博士,教授,研究方向:化學(xué)合成,Tel:0312-5929009,E-mail:13731461388@139.com
10.3969/j.issn.1004-4957.2016.09.020
O657.72;O629.71
A
1004-4957(2016)09-1181-04