李思陽(yáng),朱吉人,孔慶新,王　洋

(1.江蘇食品藥品職業(yè)技術(shù)學(xué)院,江蘇淮安 223003;2.東北林業(yè)大學(xué),黑龍江哈爾濱 150040)

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載牛血清白蛋白殼聚糖微球的制備及其體外釋藥特性評(píng)價(jià)

李思陽(yáng)1,朱吉人1,孔慶新1,王洋2，*

(1.江蘇食品藥品職業(yè)技術(shù)學(xué)院,江蘇淮安 223003;2.東北林業(yè)大學(xué),黑龍江哈爾濱 150040)

目的:優(yōu)化載牛血清白蛋白殼聚糖微球的制備工藝,并考察其體外釋藥特性,從而提高蛋白藥物的穩(wěn)定性,控制其釋放速度,延長(zhǎng)藥物作用時(shí)間,提高藥物生物利用度。方法:以高分子天然材料殼聚糖為載體,以離子凝膠法制備載牛血清白蛋白殼聚糖微球,通過(guò)單因素實(shí)驗(yàn)和正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)優(yōu)化制備工藝,并考察其體外釋放特性。結(jié)果:掃描電子顯微鏡觀察載牛血清白蛋白殼聚糖微球具有明顯的球狀結(jié)構(gòu);其最佳制備工藝為:殼聚糖分子量為300 ku、三聚磷酸鈉濃度為10 mg/mL、殼聚糖濃度為3 mg/mL、牛血清白蛋白用量為30 mg,制備的微球載藥率可達(dá)30.13%,體外釋放可持續(xù)48 h,累積釋放率達(dá)到70%,具有良好的緩釋效果。結(jié)論:載牛血清白蛋白殼聚糖微球具有較高的載藥量,緩釋效果明顯,為殼聚糖作為藥物緩控釋載體的進(jìn)一步研究提供依據(jù)。

殼聚糖,牛血清白蛋白,微球,制備,釋放

多肽及蛋白類(lèi)物質(zhì)在治療、診斷各種疾病方面發(fā)揮著重要作用,但由于大多數(shù)蛋白類(lèi)藥物存在穩(wěn)定性差,半衰期短,生物利用率較低等缺陷,因此限制了其臨床應(yīng)用[1]。因此,這類(lèi)藥物在修飾結(jié)構(gòu)、改進(jìn)劑型、新型藥物載體系統(tǒng)以及給藥方式改變等方向的研究成為關(guān)注的熱點(diǎn)[2]。

微球(Microspheres)是一種骨架型的微粒,是液體或固體類(lèi)藥物分散和(或)溶解于高分子材料中,其粒徑大小通常在1～250 μm之間,呈類(lèi)球形或球形微粒[3-5]。微球作為一種新型緩釋載體傳遞系統(tǒng),具有靶向作用、降低機(jī)體免疫反應(yīng)以及藥物在靶組織中可以維持較高的濃度等特點(diǎn),不僅在多肽和蛋白質(zhì)藥物給藥系統(tǒng)研究方向上突顯優(yōu)越性[6],而且在食品領(lǐng)域也有廣泛的應(yīng)用,如固定化酶[7]、食品微生物檢驗(yàn)[8]等。

殼聚糖是甲殼素脫乙酰衍生物,是一種帶正電荷的直鏈多糖,具有生物黏附性和生物相容性好、毒性低、同時(shí)兼有較強(qiáng)的粘附作用[9-11]。因此,使用具有負(fù)載、靶向、緩釋、控釋等作用的殼聚糖作為藥物載體材料具有天然的優(yōu)勢(shì)[12-14]。

本研究以殼聚糖為載體,以離子凝膠法制備載牛血清白蛋白殼聚糖微球,優(yōu)化其制備工藝,探討其體外釋放特性,使其達(dá)到一種長(zhǎng)期平穩(wěn)緩釋的效果,為其他多肽及蛋白質(zhì)類(lèi)藥物殼聚糖微球的研究提供借鑒。

1　材料與方法

1.1材料與儀器

殼聚糖(分子量3、50、300、1000 ku)濟(jì)南海得貝海洋生物工程有限公司;牛血清白蛋白(批號(hào):1074)MP生物醫(yī)學(xué);其他試劑均為市售分析純。

FEI QUANTA 200掃描電子顯微鏡美國(guó)FEI公司;DG5033A型酶聯(lián)免疫檢測(cè)儀南京華東電子集團(tuán)醫(yī)療裝備有限責(zé)任公司;5810R型離心機(jī)德國(guó)eppendorf公司;Vortex-6型旋渦混合器江蘇海門(mén)其林貝爾儀器制造有限公司。

1.2實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1牛血清白蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制考馬斯亮藍(lán)G-250染液的配制:將3 mg考馬斯亮藍(lán)G-250溶于1.25 mL 95%乙醇,加入2.5 mL濃磷酸,待染料充分溶解后,用濾紙過(guò)濾,定容至25 mL,備用。

精密稱(chēng)取20 mg牛血清白蛋白粉末置于1.5 mL離心管,以1 mL去離子水溶解,搖勻即得濃度為20 mg/mL的牛血清白蛋白標(biāo)準(zhǔn)溶液,將其稀釋至成0.2 mg/mL的牛血清白蛋白標(biāo)準(zhǔn)溶液。將0.2 mg/mL的牛血清白蛋白標(biāo)準(zhǔn)溶液分別稀釋至0、0.04、0.08、0.12、0.16 mg/mL系列對(duì)照品溶液。取3份上述濃度的牛血清白蛋白標(biāo)準(zhǔn)溶液50 μL分別置于96孔板同一排相鄰孔中,分別加入200 μL考馬斯亮藍(lán)G-250備用染液,充分振蕩,于10 min內(nèi)用酶標(biāo)儀測(cè)定595 nm處吸光度A[15-16]。以牛血清白蛋白濃度為橫坐標(biāo),吸光度為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

1.2.2載牛血清白蛋白殼聚糖微球的制備將醋酸溶液稀釋至1%,加一定量殼聚于1%的醋酸溶液中,充分?jǐn)嚢柚翚ぞ厶峭耆芙?即配制成一定濃度的殼聚糖醋酸溶液。取配制的殼聚糖醋酸溶液20 mL置于50 mL離心管中,加入一定量牛血清白蛋白粉末,充分?jǐn)嚢柚僚Ｑ灏椎鞍淄耆芙狻Ｈ缓?室溫高速攪拌下緩慢滴加一定濃度的三聚磷酸鈉溶液4 mL,反應(yīng)1 h,得到載牛血清白蛋白殼聚糖微球混懸液。將該混懸液10000 r/min離心3 min,取上清備用。再用去離子水洗滌沉淀三次,烘干稱(chēng)重,即成功制備載牛血清白蛋白殼聚糖微球。

1.2.3載藥率的測(cè)定將“1.2.2中”得到的上清分別定容,以不加牛血清白蛋白制備空白殼聚糖微球獲得的上清做空白對(duì)照,用2.1的方法測(cè)595 nm處吸光度,計(jì)算上清牛血清白蛋白的質(zhì)量,計(jì)算載藥率。

載藥率(%)=[(Wa-Ws)/W總]×100

Wa:投藥量;Ws:上清液中含藥量;W總:載藥微球總質(zhì)量,即沉淀質(zhì)量。

1.2.4掃描電子顯微鏡觀察稱(chēng)取適量微泡沉淀樣品于離心管中,加入少量去離子水,渦旋,使沉淀分散均勻,取50 μL懸濁液置于鋁片上,涂抹均勻,噴金,在掃描電鏡圖像在12.5 kV、9.5 mm工作距離的陽(yáng)離子加速電壓下掃描圖像。

1.2.5載牛血清白蛋白殼聚糖微球單因素實(shí)驗(yàn)

1.2.5.1殼聚糖分子量對(duì)載牛血清白蛋白殼聚糖微球成球性的影響分別選取分子量為3、50、300 1000 ku的殼聚糖分別制備濃度為5 mg/mL的醋酸殼聚糖溶液20 mL,分別加入2 mg牛血清白蛋白,充分?jǐn)嚢柚僚Ｑ灏椎鞍淄耆芙?。在室溫高速攪拌?向上述溶液中分別緩慢滴加濃度為10 mg/mL的三聚磷酸鈉溶液4 mL,攪拌反應(yīng)1 h。

1.2.5.2殼聚糖和三聚磷酸鈉濃度對(duì)載牛血清白蛋白殼聚糖微球成球性的影響制備濃度分別為1、2.5、5、7.5、10 mg/mL的醋酸殼聚糖溶液20 mL。向上述不同濃度醋酸殼聚糖溶液中分別加入2 mg牛血清白蛋白,充分?jǐn)嚢柚僚Ｑ灏椎鞍淄耆芙?。在室溫高速攪拌?分別向上述不同濃度牛血清白蛋白醋酸殼聚糖溶液中緩慢滴加濃度分別為2.5、5、10、15、20、30 mg/mL的三聚磷酸鈉溶液4 mL,攪拌反應(yīng)1 h。

1.2.5.3牛血清白蛋白用量對(duì)載牛血清白蛋白殼聚糖微球載藥率的影響用分子量為50 ku的殼聚糖制備濃度為5 mg/mL的醋酸殼聚糖溶液,分別加入質(zhì)量為2、5、10、15、20、30 mg牛血清白蛋白粉末,充分?jǐn)嚢柚僚Ｑ灏椎鞍淄耆芙狻８咚贁嚢柘戮徛渭訚舛葹?0 mg/mL三聚磷酸鈉溶液4 mL,繼續(xù)攪拌反應(yīng)1 h。按“1.2.3項(xiàng)下內(nèi)容”測(cè)載藥率(n=3)。

1.2.6正交實(shí)驗(yàn)根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,以載牛血清白蛋白殼聚糖微球載藥率為考察指標(biāo),選取影響載牛血清白蛋白殼聚糖微球成球性及載藥率的殼聚糖分子量、殼聚糖濃度、三聚磷酸鈉濃度以及牛血清白蛋白用量4個(gè)因素,各取3個(gè)水平,進(jìn)行L9(34)正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)(表1),以確定載牛血清白蛋白殼聚糖微球的最佳制備工藝,并進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)。

表1　L9(34)正交實(shí)驗(yàn)因素水平表

1.2.7體外釋藥特性評(píng)價(jià)

1.2.7.1牛血清白蛋白PBS標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制精密稱(chēng)取5 mg 牛血清白蛋白粉末,PBS緩沖液定容至25 mL,得到0.2 mg/mL母液。母液用PBS溶液分別稀釋至0.02、0.04、0.06、0.08、0.1 mg/mL系列對(duì)照品溶液。取3份上述濃度的牛血清白蛋白對(duì)照品溶液50 μL分別置于96孔板同一排相鄰孔中,分別加入200 μL考馬斯亮藍(lán)G-250備用染液,充分振蕩,于10 min內(nèi)用酶標(biāo)儀測(cè)定595 nm處吸光度A[15-16]。以牛血清白蛋白濃度為橫坐標(biāo),吸光度為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

表4　分子量300 ku殼聚糖及三聚磷酸鈉濃度對(duì)成球性的影響

1.2.7.2體外釋放精密稱(chēng)取5 mg載牛血清白蛋白凍干粉末樣品于10 mL離心管中,加入5 mL去離子水,待渦旋混勻后,吸取1 mL溶液于透析袋內(nèi)密封。透析袋置于25 mL PBS(pH7.4)釋放介質(zhì)中,用于模擬人體內(nèi)環(huán)境,37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中磁力攪拌,在0、0.5、1、1.5、2、2.5、3、4、5、6、8、10、12、18、24、36、48 h時(shí)間點(diǎn)分別取3 mL釋放液并補(bǔ)充相同體積的新鮮釋放液。用酶標(biāo)儀測(cè)定595 nm處吸光度,通過(guò)“1.2.7.1”標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出釋放液中牛血清白蛋白的含量,計(jì)算出累積釋放率。

2　結(jié)果與討論

2.1牛血清白蛋白標(biāo)準(zhǔn)曲線

以牛血清白蛋白濃度C為橫坐標(biāo),吸光度A為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到標(biāo)準(zhǔn)曲線方程:y=5.1724x+0.043,R2=0.9928,結(jié)果表明,牛血清白蛋白在0～0.16 mg/mL濃度范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。

2.2載牛血清白蛋白殼聚糖微球單因素實(shí)驗(yàn)

2.2.1殼聚糖分子量對(duì)載牛血清白蛋白殼聚糖微球成球性的影響殼聚糖分子量對(duì)載牛血清白蛋白殼聚糖微球成球性的影響結(jié)果如表2,可以看出,相同濃度殼聚糖醋酸溶液,隨著殼聚糖分子量的升高,殼聚糖醋酸溶液越黏稠,產(chǎn)生的殼聚糖微球顆粒越大。由于分子量為1000 ku的殼聚糖溶液粘度過(guò)大,不適合制備小粒徑的殼聚糖微球,所以殼聚糖分子量取3、50、300 ku較適宜。

2.2.2殼聚糖和三聚磷酸鈉濃度對(duì)載牛血清白蛋白殼聚糖微球成球性的影響由于殼聚糖分子量越大,同一濃度殼聚糖醋酸溶液越黏稠,所以取分子量為3、300 ku的殼聚糖分別做殼聚糖濃度對(duì)載牛血清白蛋白殼聚糖微球成球性的影響實(shí)驗(yàn),結(jié)果見(jiàn)表3,表4。

表3　分子量3 ku殼聚糖及三聚磷酸鈉濃度對(duì)成球性的影響

由表3可以看出,殼聚糖濃度與三聚磷酸鈉濃度均較低時(shí),無(wú)微球生成;殼聚糖濃度與三聚磷酸鈉濃度均較高時(shí),產(chǎn)生大量微球。殼聚糖濃度為1 mg/mL時(shí),無(wú)論三聚磷酸鈉濃度為多少,都無(wú)微球生成。三聚磷酸鈉濃度小于等于5 mg/mL時(shí),無(wú)論分子量為3 ku的殼聚糖濃度為多少,都無(wú)微球生成。所以分子量為3 ku的殼聚糖濃度取2.5～10 mg/mL,三聚磷酸鈉濃度取10～30 mg/mL制備載牛血清白蛋白殼聚糖微球比較合適。

由表4可以看出,隨著殼聚糖濃度和三聚磷酸鈉濃度的升高,產(chǎn)生的微球越多,微球的顆粒越大。當(dāng)分子量為300 ku的殼聚糖濃度為1 mg/mL時(shí),無(wú)論三聚磷酸鈉濃度為多少,都無(wú)微球生成;當(dāng)殼聚糖濃度為10 mg/mL時(shí),醋酸殼聚糖溶液粘稠,形成的微球顆粒較大。當(dāng)三聚磷酸鈉濃度為2.5 mg/mL時(shí),無(wú)論分子量為300 ku的殼聚糖濃度為多少,都無(wú)微球生成;當(dāng)三聚磷酸鈉濃度為30 mg/mL時(shí),形成的微球顆粒較大。所以分子量為300 ku的殼聚糖濃度取2.5～7.5 mg/mL,三聚磷酸鈉濃度取5～20 mg/mL制備載牛血清白蛋白殼聚糖微球比較合適。

綜上,殼聚糖濃度范圍取2.5～7.5 mg/mL,三聚磷酸鈉濃度范圍取10～20 mg/mL。

2.2.3牛血清白蛋白用量對(duì)載牛血清白蛋白殼聚糖微球載藥率的影響當(dāng)牛血清白蛋白的用量較低時(shí),隨著牛血清白蛋白用量的增加,載藥量會(huì)逐漸提高,然而,由于殼聚糖的有效負(fù)載量有限,因此當(dāng)牛血清白蛋白的用量達(dá)到一定量時(shí),即使繼續(xù)增加其用量,載藥率也不會(huì)增加。其具體結(jié)果見(jiàn)圖1。

圖1　牛血清白蛋白用量對(duì)載牛血清白蛋白殼聚糖微球載藥率的影響Fig.1　The effect of bovine serum albumin concentration on the drug loading rate of bovine serum albumin chitosan microspheres

由表1可以看出,隨著牛血清白蛋白用量的加大,載牛血清白蛋白殼聚糖微球載藥率也增大,當(dāng)其增加至40 mg后,載藥量變化不明顯。

2.3正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果

根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,選取影響載牛血清白蛋白殼聚糖微球成球性及載藥率的殼聚糖分子量、殼聚糖濃度、三聚磷酸鈉濃度以及牛血清白蛋白用量4個(gè)因素,各取3個(gè)水平(表5),進(jìn)行L9(34)正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì),結(jié)果見(jiàn)表5。

表5　L9(34)正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)表及結(jié)果

由表5可知,這4個(gè)因素對(duì)載牛血清白蛋白殼聚糖微球載藥率的影響順序?yàn)锳>C>D>B,即殼聚糖分子量>三聚磷酸鈉濃度>牛血清白蛋白用量>殼聚糖濃度。因此,最優(yōu)組合為A3B1C1D3,即殼聚糖分子量為300 ku、殼聚糖濃度為3 mg/mL、三聚磷酸鈉濃度為10 mg/mL、牛血清白蛋白用量為30 mg。在此條件下,進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn),得到的載藥率可達(dá)30.13%。

2.4掃描電子顯微鏡觀察圖像

掃描電鏡圖像見(jiàn)圖2,載牛血清白蛋白殼聚糖微球具有明顯的球狀結(jié)構(gòu),表面光滑,粒徑大小在2 μm左右。

圖2　載牛血清白蛋白殼聚糖微球掃描電鏡圖像Fig.2　The SEM images of bovine serum albumin chitosan microspheres

2.5體外釋藥特性評(píng)價(jià)

2.5.1牛血清白蛋白PBS標(biāo)準(zhǔn)曲線以牛血清白蛋白濃度C為橫坐標(biāo),吸光度A為縱坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得到標(biāo)準(zhǔn)曲線方程:y=5.775x+0.0105,R2=0.9999,結(jié)果表明,牛血清白蛋白在0.02～0.1 mg/mL濃度范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。

2.5.2體外釋放從圖3中可以看出,空白對(duì)照組游離的牛血清白蛋白釋放較快,約4 h累積釋放率超過(guò)了85%,12 h后基本釋放完全,累計(jì)釋放率達(dá)到99%,而載牛血清白蛋白殼聚糖微球12 h累計(jì)釋放率為60%左右,且持續(xù)緩慢釋放,48 h后,累積釋放率接近70%,且仍然繼續(xù)釋放。這一結(jié)果充分證實(shí)了載牛血清白蛋白殼聚糖微球明顯的緩釋效果和持續(xù)釋放特性。

圖3　載牛血清白蛋白殼聚糖微球體外釋放圖Fig. 3　In vitro release of bovine serum albumin chitosan microspheres

3　結(jié)論

隨著科學(xué)的不斷發(fā)展,許多蛋白質(zhì)藥物進(jìn)入臨床階段,但蛋白質(zhì)藥物生物利用率較低,穩(wěn)定性差,半衰期短,需要頻繁給藥,對(duì)患者生理和心理上造成很大負(fù)擔(dān);通過(guò)將蛋白類(lèi)藥物制成微球,使其發(fā)揮緩釋、控釋作用,已成為近年來(lái)開(kāi)發(fā)蛋白類(lèi)藥物緩控釋制劑的研究的方向[17-18]。本研究以高分子材料殼聚糖為載體,運(yùn)用離子凝膠法成功制備載牛血清白蛋白殼聚糖微球。研究發(fā)現(xiàn),殼聚糖分子量、三聚磷酸鈉濃度以及殼聚糖濃度對(duì)載牛血清白蛋白殼聚糖微球成球性有較大影響,牛血清白蛋白加入量對(duì)微球載藥率有影響。通過(guò)單因素實(shí)驗(yàn)與正交實(shí)驗(yàn),研究制備載牛血清白蛋白殼聚糖微球的最佳方法,結(jié)果顯示,載藥率隨殼聚糖分子量的增加、殼聚糖濃度的降低、三聚磷酸鈉濃度的降低、牛血清白蛋白用量的增加而增加。

此外,通過(guò)體外釋放實(shí)驗(yàn)表明,載牛血清白蛋白殼聚糖微球能夠在體外持續(xù)緩慢釋放,具有明顯的緩釋效果和持續(xù)釋放特性,該研究為以殼聚糖作為藥物緩控釋載體的進(jìn)一步研究提供依據(jù),為蛋白類(lèi)藥物殼聚糖微球的研究提供借鑒。

[1]陸春燕,龍偉,溫露,等. 載牛血清白蛋白PLGA微球的包封率測(cè)定及體外表征[J]. 海峽藥學(xué),2014,26(9):141-143.

[2]Sanchez A,Tobio M,Gonzalez L,et al. Biodegradable micro-and nanoparticles as long-term delivery vehicles for interferon-alpha[J]. Eur J Pharm Sci,2003,18(18):221-229.

[3]柳昌武,曾淼洋,童張法,等. 辣椒堿-殼聚糖/海藻酸鈉微球的制備與體外釋藥研究[J]. 中成藥,2014,36(3):620-622.

[4]李思陽(yáng),孔慶新,王洋. 載10-羥基喜樹(shù)堿超聲微泡的制備表征及其體外超聲成像特性[J]. 中成藥,2014,36(10):49-53.

[5]陳玉璽,浦益瓊,張彤，等. 難溶性小分子藥物微球體內(nèi)外釋放及相關(guān)性研究進(jìn)展[J]. 中成藥,2015,35(12):2721-2725.

[6]文慶怡,張光宇,周曉峰,等. 去甲斑蝥素-N-乳糖酰殼聚

糖/絲素蛋白微球在兔體內(nèi)的抗腫瘤作用[J]. 中國(guó)新藥雜志,2014,23(9):1075-1080.

[7]吳巧麗,張少凡,孫洋,等. 食品安全級(jí)固定化載體-殼聚糖微球制備的條件[J]. 食品與機(jī)械,2012,28(1):26-28.

[8]金娜,孔先利,林敏,等. 基于核酸適體微球的沙門(mén)氏菌檢測(cè)方法研究[J]. 食品工業(yè)科技,2015,36(13):321-324.

[9]Tian X,Yin HZ,Zhang SC,et al. Bufalin loaded biotinylated chitosan nanoparticles:an efficient drug delivery system for targeted chemotherapy against breast carcinoma[J]. Eur J Pharm Biopharm,2014,87(3):445-453.

[10]孫川,梁云星,鄭穎,等. 受體介導(dǎo)的主動(dòng)靶向殼聚糖衍生物遞藥載體的研究進(jìn)展[J]. 中國(guó)新藥雜志,2015,24(22):2584-2588.

[11]王坦,胡志海,彭敏,等. 胺乙基殼聚糖接枝膠原蛋白肽的制備及其性能[J]. 武漢大學(xué)學(xué)報(bào),2015,62(1):51-58.

[12]林曉潔,張華,金少鋼,等. 鹽酸青藤堿殼聚糖納米粒的制備及體外釋放性能的研究[J]. 中國(guó)實(shí)驗(yàn)方劑學(xué),2011,17(4):22-25.

[13]何黎黎,鄧 黎,林蕓竹. 紅景天苷殼聚糖納米粒的制備及其體外釋放性能研究[J]. 中草藥,2013,44(5):552-556.

[14]曹力凡,周綱,楊建設(shè),等. 鹽析法制備小檗堿殼聚糖納米載藥微球[J]. 中國(guó)實(shí)驗(yàn)方劑學(xué),2014,20(1):5-8.

[15]鄭彩虹,梁文權(quán),虞和永. 海藻酸-殼聚糖-聚乳酸羥乙醇酸復(fù)合微球的制備及其對(duì)蛋白釋放的調(diào)節(jié)[J]. 藥學(xué)學(xué)報(bào),2005,40(2):182-186.

[16]汪家政,范明. 蛋白質(zhì)技術(shù)手冊(cè)[M]. 北京:科學(xué)出版社,2000:38-55.

[17]劉占軍,張衛(wèi)國(guó),于九皋,等. 負(fù)載紫杉醇?xì)ぞ厶羌{米粒的制備、表征與釋藥性能[J]. 中國(guó)組織工程研究與臨床康復(fù),2009,13(3):493-495.

[18]袁金芳,郭保林,張曉麗,等. pH、離子強(qiáng)度敏感性殼聚糖水凝膠的合成及其對(duì)輔酶A的控制釋放[J]. 功能材料,2007,38(1):36-38.

Preparation of bovine serum albumin chitosan microspheres and evaluation of its drug release characteristicsinvitro

LI Si-yang1,ZHU Ji-ren1,KONG Qing-xin1,WANG Yang2,*

(1.Jiangsu Food & Pharmaceutical Science College,Huaian 223003,China; 2.Northeast Forestry University,Harbin 150040,China)

objective:To optimize the preparation technology of bovine serum albumin chitosan microspheres and investigate the drug release characteristicsinvitro,in order to improve the stability of protein drugs,control the drug release rate,prolong the time of drug action and improve the bioavailability of drugs. Methods:Natural polymer chitosan were used as the material,the bovine serum albumin chitosan microspheres were prepared by ionic gelation method,the single factor test and orthogonal design were used to optimize the technology of preparation,and the characteristics of the study were also investigatedinvitrorelease. Results Laser scanning microscope was for encapsulation of the bovine serum albumin chitosan microspheres. The best preparation technology were chitosan molecular of 300 ku,the concentration of sodium tripolyphosphate of 10 mg/mL,the concentration of chitosan of 3 mg/mL,the amount of bovine serum albumin of 30 mg. Under this condition,the microsphere drug loading rate was 30.13%,and theinvitrorelease studies showed that 70% of BSA was released from the bovine serum albumin chitosan microspheres in the first 48 h which confirmed a good sustained-release effect and sustained release characteristics. Conclusion:The bovine serum albumin chitosan microspheres with high drug-loading content and obvious slow release effect can provide the basis for further research.

chitosan;bovine serum albumin;microspheres;preparation;release

2015-06-26

李思陽(yáng)(1987-)，男, 碩士研究生，研究方向:新型載藥系統(tǒng)，E-mail：253595136@qq.com。

王洋(1971-)，女，博士，教授，主要從事藥劑學(xué)和植物次生代謝研究，E-mail：ywang@nefu.edu.cn。

江蘇省大學(xué)生實(shí)踐創(chuàng)新項(xiàng)目(201513104007Y)。

TS201.2

A

1002-0306(2016)17-0157-05

10.13386/j.issn1002-0306.2016.17.022