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        撕裂蠟孔菌的發(fā)酵優(yōu)化及其開放式發(fā)酵

        2016-10-26 10:50:28邵國兵楊萍姜文俠
        食品研究與開發(fā) 2016年19期
        關(guān)鍵詞:裝液發(fā)酵罐干粉

        邵國兵,楊萍,姜文俠

        (1.天津市工業(yè)生物系統(tǒng)與過程工程重點實驗室,中國科學(xué)院天津工業(yè)生物技術(shù)研究所,天津300308;2.天津科技大學(xué)生物工程學(xué)院,天津300457)

        撕裂蠟孔菌的發(fā)酵優(yōu)化及其開放式發(fā)酵

        邵國兵1,2,楊萍1,*,姜文俠1,*

        (1.天津市工業(yè)生物系統(tǒng)與過程工程重點實驗室,中國科學(xué)院天津工業(yè)生物技術(shù)研究所,天津300308;2.天津科技大學(xué)生物工程學(xué)院,天津300457)

        以生物量為指標(biāo)對撕裂蠟孔菌TIB.BPE.11002的液體發(fā)酵進(jìn)行了優(yōu)化。優(yōu)化后的液體培養(yǎng)基配方為:玉米淀粉60 g/L、玉米漿干粉8 g/L、KH2PO45 g/L、α-淀粉酶733 U/L,pH自然。優(yōu)化后的搖瓶培養(yǎng)條件為:培養(yǎng)溫度25℃,接種量5%,500 mL三角瓶裝液量150 mL,轉(zhuǎn)速150 r/min。優(yōu)化后的生物量達(dá)7 g/L以上。進(jìn)一步探索發(fā)現(xiàn),該菌株具有在非無菌環(huán)境中大量生長的能力,可以進(jìn)行開放式發(fā)酵。

        撕裂蠟孔菌;發(fā)酵優(yōu)化;開放式發(fā)酵

        撕裂蠟孔菌(Ceriporia lacerata)是一種白腐真菌,日本[1]、韓國[2]和我國華北、華中、華東及四川的天然林和人工林內(nèi)均有分布[3-4]。撕裂蠟孔菌在工業(yè)廢水處理[5-7]、醫(yī)藥和保健食品[8-15]等領(lǐng)域都有一定的應(yīng)用前景,目前國內(nèi)外對該菌的研究還較少。韓國Kim Byoung-Cheon等[9-11]研究發(fā)現(xiàn)撕裂蠟孔菌發(fā)酵液的粗提物具有降血糖作用,能明顯抑制a-淀粉酶和a-葡萄糖苷酶的活性,含有保護(hù)胰島素分泌細(xì)胞不受損傷的藥理成分,可有效預(yù)防和緩解糖尿病,有可能成為糖尿病的治療藥物和保健功能食品。高冬[12]公開了一株撕裂蠟孔菌,該菌具有營養(yǎng)豐富、食藥兼用的特點,用于治療貧血、心臟病、肺癌和白血病等。此外,還有通過撕裂蠟孔菌的發(fā)酵制備2′,4′-二羥基-6′-甲氧基-3′,5′-二甲基查耳酮[8]、石杉堿甲[13]及其衍生物[14]、甘露糖赤蘚糖醇脂[15]等功效成分的中國專利公開。

        對撕裂蠟孔菌TIB.BPE.11002的液體培養(yǎng)基和培養(yǎng)條件進(jìn)行了優(yōu)化,進(jìn)而探索了該菌的開放式發(fā)酵,為撕裂蠟孔菌的進(jìn)一步研究開發(fā)提供參考。

        1材料與方法

        1.1菌種

        撕裂蠟孔菌(Ceriporia lacerate)TIB.BPE.11002:保藏于中國科學(xué)院天津工業(yè)生物技術(shù)研究所。

        1.2主要試劑和儀器

        玉米淀粉:天津中英保健食品有限公司;玉米漿干粉:山東盛泰生物科技有限公司;KH2PO4(分析純):國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;中溫α-淀粉酶(3 700 U/g):北京索萊寶科技有限公司。恒溫振蕩器(IS-RDS3型):美國精騏有限公司;電子天平(PL4002型)、臺式pH計(S20K型):梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;BIOSTATRD-DCU D20-3型液體發(fā)酵罐、BIOSTATRC plus C20-3型液體發(fā)酵罐、BIOSTATRD-DCUD200-3型液體發(fā)酵罐:SartoriusGroup;ZFD-5090型鼓風(fēng)干燥箱:上海智城分析儀器制造有限公司。

        1.3培養(yǎng)基

        種子培養(yǎng)基:可溶性淀粉20g/L,玉米漿干粉6 g/L,KH2PO41 g/L,pH自然,121℃滅菌20 min。

        搖瓶基礎(chǔ)培養(yǎng)基:可溶性淀粉20 g/L,玉米漿干粉6 g/L,KH2PO41 g/L,pH自然,121℃滅菌20 min。

        1.4方法

        1.4.1液體菌種的制備

        挑取菌苔約3 cm2接入種子培養(yǎng)基,裝液量為150 mL/500 mL擋板三角瓶,25℃搖床150 r/min培養(yǎng)3.5 d~4 d。

        1.4.2搖瓶液體發(fā)酵

        將7.5 mL液體菌種接入搖瓶基礎(chǔ)培養(yǎng)基,裝液量為150 mL/500 mL三角瓶,25℃搖床150 r/min培養(yǎng)5 d。通過改變搖瓶基礎(chǔ)培養(yǎng)基中碳源、氮源和無機(jī)鹽等的添加量,以及搖瓶的培養(yǎng)溫度、接種量、裝液量、初始pH和搖床轉(zhuǎn)速等條件,以生物量為指標(biāo)進(jìn)行發(fā)酵優(yōu)化試驗。

        1.4.3開放式發(fā)酵

        1.4.3.1開放式搖瓶發(fā)酵

        將液體菌種按體積比5%分別接入經(jīng)高溫滅菌和未經(jīng)任何滅菌處理的培養(yǎng)基,前者的接種無菌操作;后者則在非無菌環(huán)境下進(jìn)行接種。裝液量為150 mL/ 500 mL三角瓶,25℃搖床150 r/min培養(yǎng)5 d。觀察兩種培養(yǎng)方式的培養(yǎng)基中菌絲體的生長情況,測量其生物量。

        1.4.3.220L發(fā)酵罐開放式發(fā)酵

        以工作體積20 L的D20-3型液體發(fā)酵罐為培養(yǎng)容器,培養(yǎng)基不經(jīng)任何滅菌處理,按體積比5%直接接入液體菌種,發(fā)酵培養(yǎng)過程中發(fā)酵罐的接種口不密閉。發(fā)酵罐接種后的裝液量為18.9 L,培養(yǎng)溫度25℃,初始通風(fēng)量16 L/min,初始攪拌轉(zhuǎn)速50 r/min,溶氧控制在30%左右。開放式發(fā)酵培養(yǎng)6 d,觀察發(fā)酵液中菌絲體的生長情況,每12 h取樣1次,測量其生物量。

        1.4.3.3200L發(fā)酵罐開放式發(fā)酵

        以工作體積200 L的液體發(fā)酵罐為培養(yǎng)容器,培養(yǎng)基不經(jīng)任何滅菌處理,按體積比5%直接接入液體菌種,該液體菌種以工作體積20 L的C20-3型液體發(fā)酵罐通過無菌培養(yǎng)的方式制備。發(fā)酵培養(yǎng)過程中,發(fā)酵罐的頂蓋完全敞開,通入的壓縮空氣不經(jīng)過除菌過濾。發(fā)酵罐接種后的裝液量為168 L,培養(yǎng)溫度25℃,初始通風(fēng)量80 L/min,初始攪拌轉(zhuǎn)速100 r/min,溶氧控制在30%左右。開放式發(fā)酵培養(yǎng)6 d,觀察發(fā)酵液中菌絲體的生長情況,每12 h取樣一次,測量其生物量。

        1.4.4生物量的測量方法

        發(fā)酵液經(jīng)過400目濾布過濾,水洗2次~3次,置105℃鼓風(fēng)干燥箱中烘至恒重,稱量菌絲體的干重。

        2結(jié)果與討論

        2.1液體培養(yǎng)基的優(yōu)化

        2.1.1碳源對生物量的影響

        分別以不同的碳源替代搖瓶基礎(chǔ)培養(yǎng)基中的可溶性淀粉,搖瓶培養(yǎng)菌株TIB.BPE.11002的試驗結(jié)果見圖1。

        圖1 碳源對生物量的影響Fig.1Effect of carbon sources on the biomass

        以玉米粉為碳源時,生物量的測定值最高,但因玉米粉中的不溶物對測定結(jié)果的影響,其實際的生物量應(yīng)低于測定值。生物量次高的是果糖,但果糖的價格較高。以玉米淀粉為碳源的僅略低于以果糖為碳源的,因此選擇玉米淀粉為碳源。

        2.1.2氮源對生物量的影響

        分別以不同的氮源替代搖瓶基礎(chǔ)培養(yǎng)基中的玉米漿干粉,搖瓶發(fā)酵菌株TIB.BPE.11002的試驗結(jié)果見圖2。

        綜合考慮氮源的價格及某些不溶性氮源對生物量測定值的影響,依然以玉米漿干粉作為氮源。

        2.1.3碳氮比對生物量的影響

        為確定玉米漿干粉的最佳添加量,將搖瓶基礎(chǔ)培養(yǎng)基中的玉米淀粉添加量固定為20 g/L,通過改變玉米漿干粉的添加量來分析氮源添加量對生物量的影響結(jié)果見圖3。

        圖2 氮源對生物量的影響Fig.2Effect of nitrogen sources on the biomass

        圖3 氮源添加量對生物量的影響Fig.3Effect of the additive amount of nitrogen source on the biomass

        試驗結(jié)果(圖3)表明,玉米漿干粉添加量在8 g/L時生物量最高,因此將玉米漿干粉的添加量定為8g/L。

        為確定玉米淀粉的最佳添加量,將搖瓶基礎(chǔ)培養(yǎng)基中的玉米漿干粉添加量固定為8 g/L,通過改變玉米淀粉的添加量來確定其最佳添加量結(jié)果見圖4。

        圖4 碳源添加量對生物量的影響Fig.4Effect of the additive amount of carbon source on the biomass

        試驗結(jié)果(圖4)表明,玉米淀粉添加量為80 g/L時,菌株TIB.BPE.11002的生物量達(dá)到最高。綜合分析誤差范圍及成本因素的影響,選擇玉米淀粉的添加量為60 g/L。

        2.2搖瓶發(fā)酵條件的優(yōu)化

        用上述優(yōu)化后的培養(yǎng)基,優(yōu)化菌株TIB.BPE.11002的搖瓶發(fā)酵條件。

        2.2.1溫度對發(fā)酵的影響

        在不同的溫度搖瓶發(fā)酵菌株TIB.BPE.11002,試驗結(jié)果見圖5。

        圖5 溫度對生物量的影響Fig.5Effect of temperature on the biomass

        在15℃~33℃時,生物量較高,而低于15℃和高于33℃時生物量都明顯地降低,表明該菌發(fā)酵的適宜溫度范圍較寬。綜合考慮,選擇25℃作為該菌株液體發(fā)酵的溫度。

        2.2.2接種量對發(fā)酵的影響

        分別以2%、5%、8%、10%和12%的接種量培養(yǎng)菌株TIB.BPE.11002,試驗結(jié)果見圖6。

        圖6 接種量對生物量的影響Fig.6Effect of inoculation amount on the biomass

        接種量對菌株TIB.BPE.11002生物量的影響較小,2%~12%接種量發(fā)酵的生物量相差不大。綜合考慮,選用5%作為該菌株液體發(fā)酵的接種量。

        2.2.3裝液量對發(fā)酵的影響

        分別采用不同的裝液量來培養(yǎng)菌株TIB.BPE. 11002,試驗結(jié)果見圖7。

        裝液量越低,單位體積中的生物量越高。從經(jīng)濟(jì)角度考慮,裝液量不宜過低,因此裝液量選擇150mL/500mL三角瓶。

        圖7 裝液量對生物量的影響Fig.7Effect of liquid medium volume on the biomass

        2.2.4培養(yǎng)基初始pH對發(fā)酵的影響

        采用鹽酸或氫氧化鈉將培養(yǎng)基的初始pH值調(diào)為2、3、4、5、6、7、8,考察培養(yǎng)基的不同初始pH值對TIB. BPE.11002生長的影響,試驗結(jié)果見圖8。

        圖8 培養(yǎng)基初始pH對生物量的影響Fig.8Effect of initial pH on the biomass

        培養(yǎng)基的初始pH為4時,TIB.BPE.11002的生物量最高。由于該培養(yǎng)基的自然pH為4.1,因此選擇不調(diào)整培養(yǎng)基的初始pH。

        2.2.5搖床轉(zhuǎn)速對發(fā)酵的影響

        分別以50、100、150、200 r/min和250 r/min的搖床轉(zhuǎn)速培養(yǎng)菌株TIB.BPE.11002,試驗結(jié)果見圖9。

        圖9 搖床轉(zhuǎn)速對生物量的影響Fig.9Effect of shaking speed on the biomass

        轉(zhuǎn)速在100 r/min以上時,生物量均能保持較高水平,但由于100 r/min時的數(shù)據(jù)誤差較大,而200 r/min以上時搖瓶中的菌絲聚集,易出現(xiàn)大團(tuán)的菌絲體,菌團(tuán)的形態(tài)發(fā)生了明顯變化,因此,搖床培養(yǎng)的轉(zhuǎn)速確定為150 r/min。

        2.3無機(jī)鹽及維生素對發(fā)酵的影響

        在上述優(yōu)化的基礎(chǔ)上,繼續(xù)優(yōu)化液體發(fā)酵培養(yǎng)基中的無機(jī)鹽和維生素。

        以KH2PO4、MgSO4·7H2O、CaCl2和VB1共4種物質(zhì)為因素,做正交試驗,確定其對菌株TIB.BPE.11002液體發(fā)酵的影響及其添加量,各因素水平見表1。

        表1 正交試驗因素水平表Table 1The table of factor and level in L9(34)orthogonal experiment

        采用SPSS 19.0軟件對試驗結(jié)果進(jìn)行方差分析(由于MgSO4·7H2O所在列顯著性水平ɑ>0.25,故作為空白列),直觀分析結(jié)果表明KH2PO4、MgSO4·7H2O、CaCl2和VB1最佳添加量分別為2 g/L、0、0、0。方差分析結(jié)果見表2。

        表2 方差分析結(jié)果Table 2Variance analysis of orthogonal experiment

        MgSO4·7H2O、CaCl2和VB1均不是顯著因素(P>0.05),KH2PO4是顯著因素(P<0.05)。

        對正交試驗結(jié)果進(jìn)行試驗驗證的結(jié)果見圖10。

        KH2PO4對生物量有一定的影響,其添加量為5 g/L時的生物量最高,達(dá)到7.6 g/L。因此,選用5 g/L作為KH2PO4的添加量。

        2.4開放式發(fā)酵

        圖10 KH2PO4添加量對生物量的影響Fig.10Effect of the additive amount of KH2PO4on the biomass

        分別采用經(jīng)高溫滅菌處理的發(fā)酵培養(yǎng)基和未經(jīng)高溫滅菌處理的發(fā)酵培養(yǎng)基,搖瓶培養(yǎng)TIB.BPE.11002菌株,發(fā)酵5 d的搖瓶見圖11。

        圖11 培養(yǎng)基經(jīng)滅菌處理的發(fā)酵(a)和培養(yǎng)基未經(jīng)任何滅菌處理的發(fā)酵(b)Fig.11Cultured in sterilized medium(a)and cultured in unsterilized medium(b)

        采用未經(jīng)任何滅菌處理的培養(yǎng)基,搖瓶發(fā)酵的撕裂蠟孔菌不僅能夠生長,外觀無雜菌生長的跡象,而且菌絲團(tuán)的形態(tài)、生物量及發(fā)酵液氣味與培養(yǎng)基經(jīng)過高溫滅菌的搖瓶發(fā)酵均沒有可以判別的區(qū)別。

        以20 L發(fā)酵罐和200 L發(fā)酵罐開放式發(fā)酵培養(yǎng)菌株TIB.BPE.11002,生物量及發(fā)酵液pH的變化見圖12。

        圖12 開放式發(fā)酵中生物量和pH的變化曲線Fig.12The changes of the biomass and pH with open fermentation

        經(jīng)20 L發(fā)酵罐和200 L發(fā)酵罐的開放式發(fā)酵驗證,該菌株都能夠正常生長,外觀無雜菌生長的跡象,發(fā)酵液的氣味和無菌培養(yǎng)的相同,pH變化在4~5之間,生物量均在75 h前后達(dá)到最高,分別為6.6、8.0 g/L,與搖瓶無菌培養(yǎng)的生物量接近。

        通過搖瓶和發(fā)酵罐的開放式發(fā)酵試驗表明,菌株TIB.BPE.11002可以進(jìn)行完全開放式的發(fā)酵培養(yǎng),該菌株可能產(chǎn)生某些抗菌或抑菌物質(zhì),拮抗雜菌的生長。

        3結(jié)論

        通過優(yōu)化液體發(fā)酵培養(yǎng)基和搖瓶培養(yǎng)條件,撕裂蠟孔菌TIB.BPE.11002搖瓶發(fā)酵的生物量達(dá)到7 g/L以上。優(yōu)化后的培養(yǎng)基為:玉米淀粉60 g/L,玉米漿干粉8 g/L,KH2PO45 g/L,α-淀粉酶733 U/L,pH自然。優(yōu)化后的搖瓶培養(yǎng)條件為:溫度25℃,接種量5%,裝液量150 mL/500 mL三角瓶,轉(zhuǎn)速150 r/min。

        發(fā)現(xiàn)并試驗驗證了撕裂蠟孔菌TIB.BPE.11002可以進(jìn)行常溫開放式發(fā)酵,不僅培養(yǎng)基無需滅菌,也無需無菌操作,而且通入的壓縮空氣也無需除菌過濾。如果該發(fā)酵方式用于工業(yè)生產(chǎn),將大幅度降低投資、生產(chǎn)和管理成本。對于該菌株拮抗雜菌的機(jī)理,是否產(chǎn)生抑菌或抗菌物質(zhì),有待進(jìn)一步的研究。

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        Optimization of Submerged Fermentation for Mycelium of Ceriporia lacerata and Its Open Fermentation

        SHAO Guo-bing1,2,YANG Ping1,*,JIANG Wen-xia1,*
        (1.Tianjin Key Laboratory for Industrial Biological Systems and Bioprocessing Engineering,Tianjin Institute of Industrial Biotechnology,Chinese Academy of Sciences,Tianjin 300308,China;2.College of Biotechnology,Tianjin University of Science&Technology,Tianjin 300457,China)

        Submerged fermentation of Ceriporia lacerata TIB.BPE.11002 was optimized,the optimal biomass was above 7 g/L.The optimal parameters in submerged fermentation of TIB.BPE.11002 were found as:corn starch 6 g/L,corn steep powder 8 g/L,KH2PO45 g/L,α-amylase 733 U/L,natural pH,culture temperature 25℃,inoculum ratio 5%,loading volume 150 mL/500 mL,shaking speed 150 r/min.In addition,it was discovered and verified that the mycelia of TIB.BPE.11002 could be cultured with open fermentation.

        Ceriporia lacerata;optimization of fermentation;open fermentation

        10.3969/j.issn.1005-6521.2016.19.043

        2015-06-11

        天津市科技支撐重點項目(12ZCZDSY12900、14ZCZDSY00063)

        邵國兵(1990—),男(漢),碩士研究生,研究方向:發(fā)酵工程。

        楊萍(1978—),女(漢),高級工程師,研究方向:食品與發(fā)酵工程。姜文俠(1964—),男(漢),研究員,研究方向:發(fā)酵工程。

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