王軍,程萍萍,袁俊英,朱登納,牛國輝,陳靜,杜江華,張冬秀
(鄭州大學第三附屬醫(yī)院,鄭州 450052)
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缺氧缺血性腦損傷新生大鼠腦組織神經(jīng)細胞凋亡情況及Tau、p-Tau蛋白表達變化
王軍,程萍萍,袁俊英,朱登納,牛國輝,陳靜,杜江華,張冬秀
(鄭州大學第三附屬醫(yī)院,鄭州 450052)
目的觀察缺氧缺血性腦損傷(HIBD)新生大鼠腦組織神經(jīng)細胞凋亡情況及Tau、p-Tau蛋白表達變化。方法70只清潔級7日齡SD大鼠隨機分為A組(50只)、B組(10只)、C組(10只),A組大鼠采用經(jīng)典Rice法制備HIBD動物模型,B組僅分離而不結扎左側頸總動脈,也不行缺氧處理,C組不作任何處理。A組于HIBD后3、6、12、24、48 h各處死10只,B、C組術后全部即刻處死。比較各組凋亡神經(jīng)細胞數(shù)及Tau、p-Tau蛋白陽性細胞數(shù)。結果與B、C組比較,A組制模后3~48 h凋亡神經(jīng)細胞數(shù)增加,制模后6~48 h Tau蛋白陽性細胞數(shù)增加,制模后3~24 h p-Tau蛋白陽性細胞數(shù)增加(P均<0.05);A組制模后不同時點(3~48 h)凋亡神經(jīng)細胞數(shù)、Tau蛋白陽性細胞數(shù)兩兩比較,制模后不同時點(3~24 h)p-Tau蛋白陽性細胞數(shù)兩兩比較,P均<0.05。結論HIBD后新生大鼠腦組織神經(jīng)細胞出現(xiàn)凋亡,細胞中Tau、p-Tau蛋白表達升高。
缺氧缺血性腦損傷;神經(jīng)細胞;Tau蛋白;p-Tau蛋白
缺氧缺血性腦損傷(HIBD)可引起新生兒急慢性神經(jīng)系統(tǒng)損傷,主要原因是誘發(fā)神經(jīng)細胞壞死和凋亡,而細胞凋亡為腦損傷的主要形式[1,2]。Tau蛋白是一種微管相關蛋白,在神經(jīng)細胞發(fā)育過程中起重要作用[3,4]。正常狀態(tài)下,Tau蛋白有一定程度磷酸化,即p-Tau蛋白,但Tau蛋白過度表達被異常磷酸化、糖基化時對神經(jīng)細胞形態(tài)和功能有直接損傷作用。眾多研究發(fā)現(xiàn),在缺氧、缺血、外傷等誘導的成年及新生大鼠神經(jīng)損傷過程中,均有Tau、p-Tau蛋白參與。然而,新生大鼠HIBD后腦組織神經(jīng)細胞凋亡情況及Tau、p-Tau蛋白表達變化,以及兩者間的關系尚不明確。本研究通過建立HIBD模型,觀察HIBD新生大鼠Tau、p-Tau蛋白及神經(jīng)細胞凋亡動態(tài)變化,并對其進行相關性分析,旨在探索神經(jīng)細胞凋亡的相關機制,以此為抗凋亡治療開辟新途徑。
1.1實驗動物、主要試劑7日齡清潔級新生健康SD大鼠70只,體質量12~15 g,由河南省實驗動物中心提供。8%O2和92%N2混合氣體(北京普萊克斯公司);鼠抗Tau單克隆抗體;鼠抗p-Tau單克隆抗體;TUNEL原位細胞凋亡試劑盒(南京凱基生物科技發(fā)展有限公司);SP-0023試劑盒(北京Boosen生物技術有限公司)。
1.2動物分組、HIBD模型制備及標本采集70只大鼠隨機分為A組(50只)、B組(10只)、C組(10只)。A組采用經(jīng)典Rice法[5]制作HIBD動物模型,即新生大鼠以乙醚麻醉,固定于手術臺上,分離并兩端結扎左側頸總動脈,中間剪斷,術后放回母鼠身邊恢復1 h,然后放入常壓缺氧箱,箱內(nèi)有鈉石灰以吸收動物排出的CO2,以1.5 L/min的速度向容器內(nèi)輸入氮氧混合氣體,持續(xù)缺氧2.5 h,術畢放回母鼠身邊飼養(yǎng)。于造模前后觀察每只新生大鼠的意識狀態(tài)和行為能力,如翻身、爬行平衡性、四肢肌張力等。造模成功標準:大鼠麻醉清醒后出現(xiàn)肌力下降,隨意運動靈活性降低,翻身困難或不能,有明顯肢體對稱運動障礙,如夾尾左旋。B組僅分離而不結扎左側頸總動脈,也不行缺氧處理。C組不作任何處理。A組于HIBD后3、6、12、24、48 h各處死10只,B、C組術后即刻處死,取小鼠大腦備檢。
1.3腦組織凋亡神經(jīng)細胞計數(shù)采用TUNEL法。切片常規(guī)脫蠟;梯度乙醇水化;切片浸入新鮮配制的1%Triton X-100通透液中,室溫(15~25 ℃)處理5 min,PBS緩沖液洗3次,5 min/次;切片浸入新鮮配制3%H2O2封閉液中,室溫處理10 min,PBS緩沖液洗3次,5 min/次;新鮮配制蛋白酶K工作液,100 μL/片,37 ℃孵育30 min,PBS緩沖液洗3次,5 min/次;新鮮配制TdT酶反應液,置于冰上,濾紙吸干樣本周圍液體,滴加TdT酶反應液,50 μL/片,37 ℃避光孵育1 h,PBS緩沖液洗3次,5 min/次;新鮮配制streptavidin-FITC工作液,濾紙吸干樣本周圍液體,每個樣本滴加50 μL,37 ℃避光孵育30 min,PBS緩沖液洗3×5 min;新鮮配制POD-conjugated Anti-FITC工作液,濾紙吸干樣本周圍液體,每個樣本滴加50 μL,37 ℃避光孵育30 min,PBS緩沖液洗3×5 min;新鮮配制的DAB溶液(淺棕色),濾紙吸干樣本周圍液體,每個樣本滴加50 μL,室溫顯色,鏡下觀察控制反應時間(勿使背景顏色過深),PBS緩沖液洗3次,5 min/次;蘇木精輕度復染30 s~1 min,蒸餾水沖洗干凈,1%鹽酸乙醇分化,自來水沖洗干凈;脫水;二甲苯透明;中性樹膠封片。染色結束后每個樣品隨機取8張切片,每張切片隨機取8個視野(400×),分別計數(shù)1.0 mm2內(nèi)TUNEL染色陽性細胞數(shù),取平均值。
1.4腦組織Tau、p-Tau蛋白陽性細胞計數(shù)采用免疫組化法。4%多聚甲醛固定30 min;0.2%Triton-X 100室溫通透;3%H2O2室溫封閉內(nèi)源性過氧化物酶;10%正常山羊血清室溫封閉非特異性結合位點;加入一抗鼠抗Tau單克隆抗體、鼠抗p-Tau單克隆抗體,設置陰性對照,用PBS代替一抗,4 ℃孵育過夜,PBS洗滌后加入二抗37 ℃孵育1 h;HE染色;0.1%鹽酸分化;梯度乙醇脫水;透明封片,風干,顯微鏡下觀察細胞形態(tài)及陽性細胞表達情況并攝圖。染色結束后每個樣品隨機取8張切片,每張切片隨機取8個視野(×400),分別計數(shù)1.0 mm2內(nèi)Tau、p-Tau蛋白陽性細胞數(shù),取平均值。
各組凋亡神經(jīng)細胞數(shù)及Tau、p-Tau蛋白陽性細胞數(shù)比較見表1。A組制模24 h Tau蛋白陽性細胞數(shù)與凋亡細胞數(shù)呈正相關(r=0.872,P<0.01)。
表1 各組凋亡神經(jīng)細胞數(shù)及Tau、p-Tau蛋白陽性細胞數(shù)比較(個
注:與C組比較,△P<0.05;與B組比較,▽P<0.05;A組各指標不同時間點兩兩比較,○P<0.05。
HIBD是新生兒常見嚴重疾患,可引起永久性殘疾,發(fā)病率和病死率較高[6]。研究[7]證實,HIBD可引發(fā)神經(jīng)細胞壞死和凋亡,而細胞凋亡為繼發(fā)性腦損傷中神經(jīng)細胞死亡的主要形式,為影響預后的主要因素。因此,對凋亡發(fā)生機理及抗凋亡研究可能為缺氧缺血性腦病的治療開辟新路徑,進而減少或減輕腦損傷后遺癥的發(fā)生。凋亡或程序性細胞死亡是指在一定生理或病理條件下,為了維持內(nèi)環(huán)境穩(wěn)態(tài),由基因調控的細胞自主性死亡[8],具有特殊形態(tài)學及生物化學特征,包括胞膜皺縮、凹陷及染色質致密、斷裂成小片段和包裹了染色質片段、膜結構尚完整的凋亡小體形成等。新生動物缺氧缺血致腦缺血再灌注,引發(fā)一系列損傷級聯(lián)反應,包括鈣穩(wěn)態(tài)失調、興奮性氨基酸毒性作用、氧化應激損傷、線粒體功能障礙,以及隨后凋亡相關基因、相關蛋白的激活,與此同時,機體釋放大量細胞因子,最終導致了細胞壞死和凋亡。
Tau蛋白是一種微管相關蛋白,主要生物學功能是促進微管組裝和維持先前形成的微管。正常機體Tau蛋白也有一定程度磷酸化,它在神經(jīng)細胞發(fā)育過程中起主要作用。但Tau蛋白過度表達被異常磷酸化、糖基化時,對神經(jīng)細胞形態(tài)和功能有直接損害。有研究[9]表明,Tau蛋白參與HIBD的病理過程,HIBD后可能通過鈣調蛋白激酶、GSK-3β及興奮性氨基酸谷氨酸受體的共同作用,使Tau蛋白過度磷酸化。過度磷酸化的Tau蛋白構象發(fā)生改變,失去促進微管蛋白聚合能力,導致微管可溶,影響細胞骨架穩(wěn)定性,軸突延伸作用減弱,營養(yǎng)運輸受損,進而導致細胞死亡[10,11]。本研究顯示,與B、C組比較,A組制模后3~48 h凋亡神經(jīng)細胞數(shù)增加;A組制模后不同時點(3~48 h)凋亡神經(jīng)細胞數(shù)兩兩比較,P均<0.05。此結果與文獻[12]報道基本相同。本研究還顯示,與B、C組比較,A組制模后6~48 h Tau蛋白陽性細胞數(shù)增加,制模后3~24 h p-Tau蛋白陽性細胞數(shù)增加;A組制模后不同時點(3~48 h)Tau蛋白陽性細胞數(shù)兩兩比較,制模后不同時點(3~24 h)p-Tau蛋白陽性細胞數(shù)兩兩比較,P均<0.05。A組制模24 h Tau蛋白陽性細胞數(shù)與凋亡細胞數(shù)呈正相關。推測可能與缺氧缺血后Tau蛋白免疫反應性增強,引起微管解聚及細胞骨架遭到破壞,進而影響神經(jīng)細胞形態(tài)穩(wěn)定及神經(jīng)細胞與神經(jīng)纖維之間的物質運輸,致使神經(jīng)細胞壞死、凋亡以及神經(jīng)纖維退化。
總之,HIBD后新生大鼠腦組織神經(jīng)細胞出現(xiàn)凋亡及Tau、p-Tau蛋白表達升高,且Tau蛋白表達與神經(jīng)細胞凋亡存在正相關。
[1] 李德淵,屈藝,李晉輝,等.磷酸酶PTEN在新生大鼠缺氧缺血性腦損傷神經(jīng)元凋亡中的作用[J].四川大學學報醫(yī)學版,2014,45(5):767-771.
[2] Carloni S, Carnevali A, Cimino M, et al. Extended role of necrotic cell death after hypoxia-ischemia-induced neuro degeration in the neonatal rat[J]. Neurobiol Dis, 2007,27(3):354-361.
[3] Idan-Feldman A, Ostritsky R, Gozes I. Tau and caspase 3 as targets for neuroprotection[J]. Int J Alzheimers Dis, 2012,2012:493670.
[4] Peng Y, Xing C, Lemere CA, et al. l-3-n-Butylphthalide ameliorates beta-amyloid-induced neuronal toxicity in cultured neuronal cells[[J]]. Neurosci Lett, 2008,434(2):224-229.
[5] Rice JE 3rd, Vannucci RC, Brierley JB. The influence of immaturity on hypoxic-ischemic brain damage in the rat[J]. Ann Neurol, 1981,9(2):131-141.
[6] Qiu J, Zhou XY, Zhou XG,et al. Neuroprotective effects of microRNA-210 on hypoxic-ischemic encephyalopathy[J]. Biomed Res Int, 2013,2013:350-419.
[7] Puyal J, Ginet V, Clarke PG. Multiple interacting cell death mechanisms in the mediation of excitotoxicity and ischemic brain damage: a challenge for neuroprotection[J]. Prog Neurobiol, 2013,105:24-48.
[8] 王慶九,參附注射液對新生大鼠缺氧缺血性腦損傷的干預作用[J].中國婦幼保健,2009,24(23):3304-3306.
[9] Liao G, Zhou M, Cheung S, Reduced early hypoxic/ischemic brain damage is associated with increased GLT-1levels in mice expressing mutant(P301L) human tau[J]. Brain Res, 2009(1247):159-170.
[10] Sarnat H, Flores-Sarnat L, Crino P, et al. Hemimegalencephaly:fetal tauopathy with Mtor hyperactivation and neuronal lipidosis[J]. Folia Neuropathol, 2012,50(4):330-345.
[11] Aronica E, Becker AJ, Spreafico R. Malformations of cortical development[J]. Brain Pathol, 2012,22(3):380-401.
河南省高等學校重點科研項目計劃(14A320004)。
10.3969/j.issn.1002-266X.2016.15.011
R651.1
A
1002-266X(2016)15-0036-03
2015-11-28)