田亮,盧勉飛,蔡芷荷,吳清平,李艷嫦,李興
(1.廣東環(huán)凱微生物科技有限公司,廣東廣州510663;2.廣東省微生物研究所,廣東廣州510663)
分子生物學方法在鑒定雙歧桿菌中的應用
田亮1,盧勉飛1,蔡芷荷1,吳清平2,*,李艷嫦1,李興1
(1.廣東環(huán)凱微生物科技有限公司,廣東廣州510663;2.廣東省微生物研究所,廣東廣州510663)
依靠傳統生理生化、菌落表觀形態(tài)等鑒定雙歧桿菌,很難區(qū)分生化相近的菌株,例如雙歧桿菌和嬰兒雙歧桿菌或者動物雙歧桿菌和乳酸雙歧桿菌,這給食品風險監(jiān)測和衛(wèi)生監(jiān)督帶來嚴峻的挑戰(zhàn)。隨著分子生物學方法的成熟,大量分子生物學方法成為了鑒定雙歧桿菌種屬高效的鑒定方法,這些分子生物學方法包括16SrRNA基因序列、小分子保守序列hsp60、多重PCR、核糖體DNA序列擴增片段限制性內切酶分析(ARDRA)、變性梯度凝膠電泳(DGGE)、脈沖場凝膠電泳(PFGE)以及能夠對樣品中雙歧桿菌進行鑒別和定量的實時熒光定量PCR技術。本文對分子生物學方法在鑒定雙歧桿菌的應用進行了綜述。
雙歧桿菌;hsp60;鑒定;序列
有研究表明,在不同年齡段人群的腸道中,分布有不同種屬雙歧桿菌。嬰幼兒時期,正常菌群中雙歧桿菌主要是兩歧雙歧桿菌(Bifidobacteriabifidum),長雙歧桿菌(B.longum),嬰兒雙歧桿菌(B.infantis)和短雙歧桿菌(B.breve)[1]。在成人時期,雙歧桿菌的組成演變?yōu)榍啻弘p歧桿菌(B.adolescentis),長雙歧桿菌(B.longum),兩歧雙歧桿菌(B.bifidum),鏈狀雙歧桿菌(B.catenulatum)以及星狀雙歧桿菌(B.pseudocatenulatum)[2]。雙歧桿菌作為益生菌,可以改善人體的多種生理功能,提高機體的免疫能力以及調節(jié)人體正常菌群[3]。因此,市場上的益生菌產品越來越多,質量參差不齊,對這些益生菌產品進行風險檢測需要快速、高效的鑒定方法。
雙歧桿菌的鑒定主要是通過菌落形態(tài)、糖類發(fā)酵反應以及測定酶活等進行。但是這些經典的傳統鑒定方法耗時,費力,不能區(qū)分種屬關系親近的種,尤其是益生菌產品中含有嬰兒雙歧桿菌和長雙歧桿菌或者動物雙歧桿菌和乳雙歧桿菌。隨著分子生物學技術的成熟應用,分子生物學方法具有明顯的優(yōu)勢:鑒定快速,結果準確等[4]。本文對這些分子生物學方法進行了綜述。
普通PCR一般只有1對引物進行核酸序列的擴增,而多重PCR采用了多對引物進行核酸序列擴增,可以同時鑒定多個細菌的種屬關系以及多個基因型等。
進行多重PCR操作要注意一下幾點:第一,所有引物的退火溫度在同一個范圍內;第二,引物之間不能產生交叉反應;第三,不同大小的PCR產物片段可以區(qū)分細菌的種屬關系;第四,多重PCR需要的Taq酶的量比普通的PCR需要的酶量大。
多重PCR的引物一般是基于16S rRNA、23S rRNA的內部保守間隔序列[5]。Dong等設計了5對雙歧桿菌種水平的特異性引物,這5對引物分別是兩歧雙歧桿菌、青春雙歧桿菌、嬰兒雙歧桿菌、短雙歧桿菌和長雙歧桿菌的16SrRNA基因序列特異性不同結合位點的序列。研究結果表明,這5對引物能夠從種水平上區(qū)分人腸道的兩歧雙歧桿菌、青春雙歧桿菌、嬰兒雙歧桿菌、短雙歧桿菌和長雙歧桿菌[6]。Bonjoch等基于16S rRNA基因序列設計了齒雙歧桿菌(B.dentium)和青春雙歧桿菌特異性鑒定引物。Bonjoch等首先利用lm26和lm3引物鑒定雙歧桿菌屬,然后將擴增產物利用種特異性引物進行擴增,從22份人源生活污水分別檢出青春雙歧桿菌和齒雙歧桿菌的鑒定率為100%和77.2%。該研究指出多重PCR方法的檢測限為10 cfu/mL[7]。
隨著基因組學和蛋白質組學的快速發(fā)展,研究人員發(fā)現了更多的保守基因序列尤其是編碼蛋白質的基因序列用于對未知微生物的鑒定。Stenico等指出利用小分子基因保守序列對雙歧桿菌屬進行分類鑒定,鑒定結果的準確性甚至比依靠16S rRNA基因序列鑒定的準確性高,該研究組將小分子擴增和限制性內切酶技術相結合,建立了利用小分子鑒定雙歧桿菌的新方法[8]。在鑒定雙歧桿菌屬時,研究人員發(fā)現編碼蛋白質的基因序列:ldh(L-lactate deshydrogenase gene)、recA、hsp60、丙酮酸激酶基因(Pyruvate kinase gene,pk)存在高度保守區(qū)域,根據這些高度保守區(qū)域設計引物,進行序列擴增并測序,通過基因序列比對對未知雙歧桿菌進行鑒定[9]。研究人員研究了用recA和ldh鑒定已經添加在商業(yè)化產品中的人源雙歧桿菌:兩歧雙歧桿菌、嬰兒雙歧桿菌、長雙歧桿菌、青春雙歧桿菌、短雙歧桿菌和動物雙歧桿菌和從母乳喂養(yǎng)的嬰兒糞便中分離的雙歧桿菌,研究發(fā)現在分析ldh基因的時候,發(fā)現乳雙歧桿菌DSM 10140和動物雙歧桿菌ATCC27536的ldh基因具有很高的相似性,但是ldh基因在乳雙歧桿菌DSM 10140和動物雙歧桿菌ATCC25527T之間保持了一定差異[10]。Vaugien等指出丙酮酸激酶基因能夠鑒定區(qū)分嬰兒雙歧桿菌和長雙歧桿菌,也能夠區(qū)分動物雙歧桿菌和乳酸雙歧桿菌[11]。Jian等研究指出了hsp60基因序列能夠鑒定人源所有雙歧桿菌屬[8],鏈狀雙歧桿菌和假鏈狀雙歧桿菌(B. pseudocatenulatum)之間hsp60基因序列的相似性為93%,長雙歧桿菌,嬰兒雙歧桿菌和豬雙歧桿菌(B.suis)之間hsp60基因序列的相似性為98%,動物雙歧桿菌和乳酸雙歧桿菌hsp60基因序列的相似性為98%。因此,由于hsp60的高度保守性和特異性,hsp60基因在構建雙歧桿菌分子系統發(fā)育樹方面比16S rRNA基因序列構建的發(fā)育樹更具有優(yōu)勢。
綜上所述,利用克隆擴增小分子特異性序列進行比對構建分子進化發(fā)育樹鑒定人源雙歧桿菌是比利用16S rRNA基因序列更具有優(yōu)勢。
ARDRA(Amplified ribosomal DNA restriction analysis)技術也稱之為核糖體DNA序列擴增片段限制性內切酶分析,該技術是新一代對未知微生物進行鑒定的技術,主要是利用rDNA序列的保守性,對rDNA序列進行擴增,酶切,依據得到的酶切圖譜對種屬的多樣性分析。該技術的具體步驟是細菌經過培養(yǎng),并提取DNA序列,利用PCR技術對16S rRNA基因序列進行局部或者整個片段擴增,擴增產物用限制性內切酶進行消化,然后進行瓊脂糖凝膠電泳,觀察酶切圖譜[11]。不同種屬的細菌有不同的酶切圖譜,每個種屬細菌的酶切圖譜都有特異性。因此,利用多種限制性內切酶的圖譜可以鑒定種屬關系更近的種[12]。Roy and Sirois為了鑒定動物雙歧桿菌、長雙歧桿菌、嬰兒雙歧桿菌、短雙歧桿菌、兩歧雙歧桿菌和青春雙歧桿菌,擴增了16S rRNA基因的部分片段,大小為914 bp,然后利用限制性內切酶:BamHI,Sau3AI和TaqI對擴增產物進行酶切,分析酶切圖譜。該研究指出,長雙歧桿菌和嬰兒雙歧桿菌除了限制性內切酶Sau3A1酶切圖譜有不同,其它酶切圖譜基本一致。Ventura擴增了16S rRNA基因序列之后,用BamHI和Sau3AI酶切,酶切圖譜也證實了Roy and Sirois的研究。Ventura研究指出,鏈狀雙歧桿菌和假鏈狀雙歧桿菌也可以用BamHI and Sau3AI酶切圖譜進行鑒定。Venema and Maathuis擴增了目前已知的人源性的14種雙歧桿菌以及動物雙歧桿菌和乳雙歧桿菌的16S rRNA基因序列片段,片段大小為511 bp到525 bp不等,擴增產物利用6個限制性內切酶:TaqI,Sau3AI,RsaI,AluI,Sau96I和NciI對擴增的16S rRNA基因序列片段進行酶切,每種雙歧桿菌的酶切圖譜都呈現了種屬特異性[13]。因此,ARDRA技術是鑒定人源性雙歧桿菌方法中一種較為可靠的方法。
20世紀80年代,Lerman等發(fā)明了變性梯度凝膠電泳(Denatured gradient gel electrophoresis,DGGE),主要是用于研究DNA序列序列片段中堿基發(fā)生變異,由于該技術靈敏度高,多用于研究DNA序列片段的點突變[14]。該技術多用于遺傳病、癌癥等的篩查以及微生物分子生態(tài)學研究。變性梯度凝膠的基本分離原理是在聚丙烯酰胺凝膠中加入了尿素、甲酰胺等變性劑梯度,根據不同的DNA序列片段的熔解溫度不同實現DNA序列片段的分離。最先解鏈的DNA序列片段在凝膠電泳中遷移速率會變慢。當變形劑的濃度升高時,其它解鏈區(qū)DNA序列雙鏈開始解鏈。不同的DNA序列雙鏈由于其堿基序列不同,其解鏈性質也不一樣,在凝膠電泳時其遷移速率也不一樣。
Satokari等在2001年基于雙歧桿菌的16SrRNA基因序列設計了種屬特異性引物進行PCR,擴增產物進行DGGE,成功的對人糞便中雙歧桿菌的群落特征進行了研究[15]。Requena等對16SrDNA序列的V2-V3區(qū)域進行了PCR擴增,成功的區(qū)分了動物雙歧桿菌、乳酸雙歧桿菌、兩歧雙歧桿菌、嬰兒雙歧桿菌、長雙歧桿菌、青春雙歧桿菌、假鏈狀雙歧桿菌和短雙歧桿菌[16]。PCR-DGGE技術利用特異性引物進行PCR序列擴增,擴增產物進行DGGE和測序,這種方法能夠快速的鑒定和篩選益生菌商品中益生菌的菌落構成。
脈沖場凝膠電泳(Pulsed-Field Gel Electrophoresis)主要是用來分離大分子DNA序列片段的。普通的瓊脂糖凝膠電泳只能對小分子DNA序列片段進行分離,對于大于10 kb的DNA序列片段由于其遷移速率基本一致,不能區(qū)分大分子量的DNA序列條帶。在脈沖場電泳中,電場不斷在兩個不同的方向上改變,帶負電荷的DNA序列片段向負極遷移。較小分子量DNA序列片段在電場改變時很容易產生方向的改變,而較大分量的DNA序列方向轉換較慢,其泳動速率也逐漸變慢,因此,不同分子量的DNA序列分子可以分開。
在鑒定雙歧桿菌的應用中,脈沖場凝膠電泳重復性好,能夠很好的將雙歧桿菌各個種屬區(qū)分[17]。脈沖場凝膠電泳和其它的分子生物學方法相比,脈沖場凝膠電泳花費時間,另外需要提取完整的基因組DNA序列。從含有益生菌的食品中分離雙歧桿菌并提取了基因組DNA序列,用限制性內切酶Xbal和Spel進行消化進行脈沖場凝膠電泳,最后分析脈沖場凝膠圖譜。在益生菌中樣品中含有兩歧雙歧桿菌、短雙歧桿菌、嬰兒雙歧桿菌和長雙歧桿菌等多種雙歧桿菌,利用PFGE的方法可以提高鑒定正確率[18]。
實時熒光定量PCR是鑒定或者定量檢測微生物的高效快速的方法,而且其靈敏度比普通的PCR要高,每次PCR循環(huán)完成之后,熒光劑就對擴增產物的量進行檢測。實時熒光定量PCR使用內參或者外參為對照,對PCR過程或者擴增產物進行分析,根據數學模型,確定PCR初始模板量。在實時熒光定量PCR中經常使用的熒光物質為熒光定量染料SYBR Green和熒光探針Taqman。
在熒光染料檢測循環(huán)過程中,DNA序列片段經歷熱變性,在退火的過程中,在DNA序列聚合酶的作用下引物開始進行延伸,SYBR Green此時結合在DNA序列雙鏈之間,受激發(fā)后產生熒光。Monique Haarman利用實時熒光定量PCR對喂食益生元嬰兒的糞便進行雙歧桿菌生物群落構成研究并進行了定量分析[19-20]。
熒光探針的特異性要比熒光定量染料的特異性高,而且熒光探針可以進行多重反應。熒光探針的特異性受到GC含量,溶解溫度和探針長度的影響。Taqman探針類實時熒光定量PCR在設計探針時,在探針的3’端標記了熒光淬滅基團,在探針的5’端標記了熒光基團。由于完整的探針帶有熒光淬滅基團,因此,探針沒有熒光,當3’端淬滅基團被內切酶消化后,淬滅基團與熒光基團分離,在激光的激發(fā)下,熒光基團產生熒光。探針的DNA序列序列是與目的片段的DNA序列序列互補,然后由于Taq酶具有5’-3’外切酶的作用,探針段裂,激光激發(fā)產生熒光。Yang等利用實時熒光定量PCR擴增了人體分離的雙歧桿菌的耐酸性相關的RNA序列,保證了序列的精準度,研究發(fā)現耐酸性雙歧桿菌可以通過基因修飾等策略提高菌株的耐酸性[21]。
隨著定量PCR技術的發(fā)展,不段發(fā)現新的熒光物質:分子信標探針和Scorpions引物。分子信標是DNA序列形成發(fā)卡結構,一端帶有熒光基團,另外一端帶有熒光淬滅基團,當單鏈DNA序列為發(fā)卡結構時,兩種基團距離較近,產生熒光信號能量共振轉移。當達到熔解溫度時,DNA序列的發(fā)卡結構消失,熒光信號能量共振轉移隨著消失,熒光基團發(fā)出熒光。分子信標方法的靈敏度比探針型的高,目前主要用于臨床檢驗基因的點突變、胚胎性別等。
Scorpions引物是既含有引物,又結合了熒光探針。在正常情況下,熒光探針形成了發(fā)卡結構,熒光基團和淬滅基團距離較近不能產生熒光,而在變性階段,發(fā)卡結構消失,在聚合酶的作用下,與模板結合后進行延伸,熒光基團發(fā)出熒光,其熒光強度比上述的熒光物質都高,因此,具有良好的應用前景。
由于雙歧桿菌的益生作用,長雙歧桿菌、兩歧雙歧桿菌、嬰兒雙歧桿菌、短型雙歧桿菌等已經應用在大量的產品:酸奶、奶粉、冰激凌以及臨床上治療嬰幼兒消化不良的藥物中。對這些產品進行風險檢測,需要快速、高效的鑒定方法,分子生物學方法能夠實現這些檢測的要求。
目前大規(guī)模應用的分子生物學方法都是基于16S rRNA基因保守序列對雙歧桿菌進行鑒定,這些方法的靈敏度和特異性比較高,然而不能對樣品或者益生菌產品中的雙歧桿菌定量檢測[22]。PFGE方法是基于基因組經過限制性酶切之后,進行聚丙烯酰胺凝膠電泳,根據不同種屬雙歧桿菌的電泳圖譜不同對未知雙歧桿菌進行鑒定,但是這種鑒定方法的特異性較差,利用PFGE方法區(qū)分鑒定嬰兒雙歧桿菌和長雙歧桿菌具有一定的難度。而實時熒光定量PCR既能夠對益生菌產品或者樣品中含有的雙歧桿菌種屬鑒定,又能定量檢測雙歧桿菌[23-24],在未來鑒定和篩選雙歧桿菌的方面能夠發(fā)揮更大的作用。
[1]Bezirtzoglou E,Stavropoulou E.Immunology and probiotic impact of the newborn and young children intestinal microflora[J].Anaerobe,2011,17(6):369-374
[2]Turroni F,VanSinderen D,Ventura M.Genomics and ecological overview of the genus Bifidobacterium[J].Food Microbiol,2011,149(1):37-44
[3]Turroni F,Duranti S,Bottacini F,et al.Bifidobacterium bifidumas an example of a specialized human gut commensal[J].Front Microbiol,2014,21(5):1-8
[4]方明玉.人源耐酸雙歧桿菌的篩選及其性能評價[D].上海:上海交通大學,2012
[5]AndriushchenkoSV,PerunovaNB,IvanovaEV,et al.Application of multiplex-PCR for bifidobacteria and propionibacteria genus identification[J].Mikrobiol Epidemiol Immunobiol,2014,72(5):78-82
[6]Dong X,Cheng G,Jian W.Simultaneous identification of five Bifidobacterium specie isolated from human beings using multiple PCR primers[J].Systematic and Applied Microbiology,2000,23(3):386-390
[7]Bonjoch X,Balleste E,Blanch A R.Multiplex PCR with 16S rRNA gene-targeted primers of Bifidobacterium spp.to identify sources of Fecal Pollution[J].Appled and environmental Microbiology,2004,70(5):3171-3175
[8]Stenico V,Michelini S,Modesto M.Identification of Bifidobacterium spp.using hsp60 PCR-RFLP analysis:an update[J].Anaerobe,2014,26(4):36-40
[9]Loredana B,Verena S,Erwin S,et al.Identification of species belonging to the Bifidobacterium genus by PCR-RFLP analysis of a hsp60 gene fragment[J].BMC Microbiology,2013,13:149-157
[10]Rodriguez E,Arques J L,Rodriguez R,et al.Antimicrobial properties of probiotic strains isolated from breast-fed infants[J].Journal of Functional Foods,2012,4(2):542-551
[11]劉國榮,任麗,宋振芹,等.母乳嬰兒源產細菌素雙歧桿菌的分離鑒定[J].食品工業(yè)科技,2014,35(13):186-190
[12]Mazo J Z,Dinon A Z,Santanna E S,et al.Amplified ribosomal DNA restriction analysis(ARDRA)of new isolated strains of bifidobacteria from newborn babies microbiota[J].African Microbiology Research,2010,4(22):2339-2342
[13]Venema K,Maathuis A J H.A PCR-based method for identification of bifidobacteria from the human alimentary tract at the species level[J].FEMS MicrobiolLett,2003,224(1):143-149
[14]Sheu S J,Chen H C,Lin H K,et al.Development and application of tuf gene-based PCR and PCR-DGGE methods for the detection of 16 Bifidobacterium species[J].Food and drug analysis,2013,21(2):177-183
[15]Satokari R M,Vaughan E E,Akkermans A D L,et al.Bifidobacterial diversity in human feces detected by genus-specific PCR and denaturing gradient gel electrophoresis[J].Applied and Environmental Microbidogy,2001,67(2):504-513
[16]Requena T,Burton J,Matsuki T,et al.Identification,detection and enumeration of human Bifidobacterium species by PCR targeting the transaldolase gene[J].Applied and Environmental Microbidogy,2002,68(5):2420-2427
[17]Duranti S,Turroni F,Milani C,et al.Exploration of the genomic diversity and core genome of the Bifidobacterium adolescentis phylogenetic group by means of a poly phasic approach[J].Appl Environ Microbiol,2013,79(1):336-346
[18]Sratkova D,Spanova A,Spano M.Efficiency of PCR-based methods in discriminating Bifidobacterium longum ssp.and Bifidobacterium longum ssp.infantis strains of human origin[J].J Microbiol Method,2011,87(1):10-16
[19]Monique H,Jan K.Quantitative real-time PCR assays to identify and quantify fecal Bifidobacterium species in infants receiving a prebiotic infant formula[J].Applied and Enviromental Microbiology,2005,71(5):2318-2324
[20]Silvia A,Li Angb,Abelardo M,et al.Deep 16S rRNA metagenomics and quantitative PCR analyses of the premature infant fecal microbiota[J].Anaerobe,2012,18(3):378-380
[21]Yang X,Hang X,Tan J,et al.Differences in acid tolerance between Bifidobacterium breve BB8 and its acid-resistant derivative B. breve BB8dpH,revealed by RNA-sequencing and physiological analysis[J].Anaerobe,2015,33(7):76-84
[22]Martin R,Jiménez E,Heilig H,et al.Isolation of bifidobacteria from breast milk and assessment of the bifidobacterial population by PCR-denaturing gradient gel electrophoresis and quantitative realtime PCR[J].Appl Environ Microbiol,2009,75(4):965-969
[23]麥熱姆妮薩·艾麥爾.長壽老人腸道益生菌(probiotics)的分離鑒定及長壽機理的研究[D].烏魯木齊:新疆大學,2012
[24]李梅花.中國部分地區(qū)人體糞便中雙歧桿菌的分離鑒定及具潛在益生特性菌株的篩選[D].呼和浩特:內蒙古農業(yè)大學,2012
Application of Molecular Biology Methods in Identification of Bifidobacterium
TIAN Liang1,LU Mian-fei1,CAI Zhi-he1,WU Qing-ping2,*,LI Yan-chang1,LI Xing1
(1.Guangdong Huankai Microbial Sci.&Tech.Co.,Ltd.,Guangzhou 510663,Guangdong,China;2.Guangdong Institute of Microbiology,Guangzhou 510663,Guangdong,China)
It is difficult to identify similar bifidobacteria of biochemical characteristics based on physiological and biochemical property,phenotypic patterns,such as distinction between Bifidobacterium longum and Bifidobacterium infantis or Bifidobacterium animalis and Bifidobacterium lactisis.There are a lot of molecular methods to identify Bifidobacterium sp.including 16SrRNA,hsp60,multiplex PCR,amplified ribosomal DNA restriction analysis(ARDRA),denaturing gradient gel electrophoresis(DGGE),and pulsed-field gel elec trophoresis(PFGE).Real-time PCR or Q-PCR which will be soon an interesting tool for the detection,identification and quantification of Bifidobacteria spp.In this review,molecular methods for the detection,identification and quantification of Bifidobacteria sp.are outlined.
Bifidobacteria;hsp60;detection;sequence
10.3969/j.issn.1005-6521.2016.19.049
2016-01-20
廣東省科技項目(2012A070500033)
田亮(1984—),男(漢),工程師,碩士研究生,研究方向:食品微生物。
吳清平(1962—),男,研究員,博士,研究方向:食品微生物。