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        香菇液體菌種深層發(fā)酵工藝探索

        2016-03-13 11:27:00劉世玲盧興潮尚東妮田少平李克彬曹現(xiàn)濤
        中國(guó)食用菌 2016年1期
        關(guān)鍵詞:發(fā)酵罐菌絲體氧量

        劉世玲,盧興潮,江 坤,尚東妮,唐 悅,田少平,李克彬,曹現(xiàn)濤*

        (1.湖北五林中地農(nóng)業(yè)科技有限公司,湖北 宜昌 443000;2.宜昌市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院,湖北 宜昌 443000)

        香菇液體菌種深層發(fā)酵工藝探索

        劉世玲2,盧興潮1,江 坤1,尚東妮1,唐 悅1,田少平1,李克彬2,曹現(xiàn)濤1*

        (1.湖北五林中地農(nóng)業(yè)科技有限公司,湖北 宜昌 443000;2.宜昌市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院,湖北 宜昌 443000)

        在香菇菌種液體發(fā)酵培養(yǎng)基篩選、50 L發(fā)酵罐工藝試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,探索500 L發(fā)酵罐發(fā)酵工藝。發(fā)酵30 h時(shí)pH開(kāi)始降低;38 h時(shí)溶氧開(kāi)始下降;120 h菌絲球固形物體積達(dá)92.16%;76 h~120 h流加堿(飽和Na2CO3溶液)頻率最高;168 h發(fā)酵菌絲體接種栽培袋的菌絲體活力明顯下降;192 h在顯微鏡下可觀測(cè)到大量菌絲體片段;接種量在5 mL和10 mL時(shí)菌絲萌發(fā)最好。運(yùn)用無(wú)菌培養(yǎng)接種罐接種(已申請(qǐng)專利),可有效降低接種環(huán)節(jié)培養(yǎng)基被污染的風(fēng)險(xiǎn);香菇液體菌種深層發(fā)酵在24℃,pH4.5,溶氧量90%~98%,攪拌速率180 r·min-1條件下進(jìn)行比較適宜;最佳接種時(shí)間為96 h~144 h,接種量為每個(gè)接種孔5 mL~10 mL。

        香菇;液體菌種;發(fā)酵;工藝

        香菇隸屬于擔(dān)子菌門(mén)(Basidiomycota) 傘菌綱(Agaricomycetes) 傘菌目 (Agaricales) 小皮傘科(Marasmiaceae)香菇屬(Lentinus)[1]。據(jù)統(tǒng)計(jì),目前我國(guó)香菇產(chǎn)量占世界香菇總產(chǎn)量約70%,香菇產(chǎn)業(yè)的發(fā)展關(guān)系到國(guó)家食用菌產(chǎn)業(yè)的整體發(fā)展。目前香菇的種植主要依靠固體菌種,而固體菌種具有成本高、生長(zhǎng)周期長(zhǎng)、接種效率低等缺點(diǎn)。隨著科技進(jìn)步和食用菌產(chǎn)業(yè)的發(fā)展,食用菌生產(chǎn)方式由家庭作坊式操作、季節(jié)性生產(chǎn)的模式向設(shè)施化、工廠化、周年化、規(guī)?;a(chǎn)模式轉(zhuǎn)變,采用深層發(fā)酵工藝制備食用菌菌種已成為研發(fā)熱點(diǎn)[2]。金針菇、杏鮑菇等在工廠化生產(chǎn)中已運(yùn)用液體菌種[3-4]。液體菌種具有生長(zhǎng)周期短、菌絲生長(zhǎng)快、多點(diǎn)萌發(fā)、出菇整齊等優(yōu)勢(shì)[5]。香菇液體菌種尚未在實(shí)際生產(chǎn)中大規(guī)模采用,目前香菇液體菌種的研究多停留在實(shí)驗(yàn)室搖瓶和小型發(fā)酵罐中培養(yǎng)的階段[6-8]。本研究在前期培養(yǎng)基篩選、搖瓶培養(yǎng)、50 L發(fā)酵罐培養(yǎng)的基礎(chǔ)上,運(yùn)用500 L發(fā)酵罐深層發(fā)酵香菇液體菌種,對(duì)發(fā)酵過(guò)程全程監(jiān)控,并進(jìn)行接種試驗(yàn),以其得到可運(yùn)用到實(shí)際生產(chǎn)中的香菇液體菌種發(fā)酵工藝。

        1 材料和方法

        1.1 材料

        1.1.1 香菇菌種

        香菇菌種為香菇808A,由宜昌微生物研究所提供。

        1.1.2 主要儀器和設(shè)備

        超凈工作臺(tái)、往復(fù)式恒溫震蕩培養(yǎng)箱、高壓蒸汽滅菌鍋、電子天平、無(wú)菌培養(yǎng)接種罐、5 mL移液槍、500 L攪拌式發(fā)酵罐。

        1.1.3 培養(yǎng)基

        菌種活化培養(yǎng)基為PDA培養(yǎng)基。液體菌種及發(fā)酵罐培養(yǎng)基相同:糖蜜7%、豆粕粉0.3%、玉米粉0.3%、酵母浸粉 0.1%、KH2PO40.05%、MgSO40.03%。另外在發(fā)酵罐中添加0.029%的消泡油,以及在發(fā)酵過(guò)程中流動(dòng)加堿流(飽和NaCO3溶液),使pH保持在一定范圍內(nèi)。PDA培養(yǎng)基和液體菌種培養(yǎng)基121℃滅菌。

        1.2 方法

        1.2.1 供試菌種活化

        在無(wú)菌條件下將母種菌絲接種至PDA斜面上,24℃溫度下培養(yǎng)14 d后,挑選菌絲生長(zhǎng)濃密、潔白、健壯的試管作為供試菌株。

        1.2.2 液體菌種的制備

        將2塊1 cm3的供試菌株菌絲塊,接種至含100 mL液體菌種培養(yǎng)基的250 mL三角瓶中,24℃搖床培養(yǎng),前2 d轉(zhuǎn)速為160 r·min-1,后4 d轉(zhuǎn)速為180 r·min-1。6 d后擴(kuò)大培養(yǎng),即將液體菌種轉(zhuǎn)接至裝有2 L培養(yǎng)基的5 L三角瓶中,接種量為5%,培養(yǎng)方法與上述相同,6 d后得到液體菌種。

        1.2.3 發(fā)酵罐滅菌

        發(fā)酵罐及配套設(shè)備空消(未加培養(yǎng)基前對(duì)設(shè)備滅菌),時(shí)間1 h,溫度121℃,壓力0.1 MPa~0.15 MPa;配料后(裝料系數(shù)為70%,初始pH調(diào)至5.0)發(fā)酵原料液和發(fā)酵罐進(jìn)行實(shí)消(加培養(yǎng)基后滅菌),時(shí)間1 h,溫度121℃,壓力0.1 MPa~0.15 MPa;流加罐實(shí)消,時(shí)間1 h,溫度121℃,壓力0.1 MPa~0.15 MPa。

        1.2.4 接種

        實(shí)消后,培養(yǎng)液溫度冷卻到24℃~25℃時(shí)接種,將液體菌種無(wú)菌條件下轉(zhuǎn)入旁氏罐中,利用旁氏罐將種子液接入500 L發(fā)酵罐,接種量為2%。

        1.2.5 參數(shù)控制及發(fā)酵過(guò)程中檢測(cè)要求

        培養(yǎng)基初始pH值為5;整個(gè)發(fā)酵過(guò)程中pH設(shè)定值為4.5,溫度設(shè)定24℃,壓力0.13 MPa;整個(gè)發(fā)酵過(guò)程中要求溶氧量為90%~98%(通過(guò)調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)速與空氣流量實(shí)現(xiàn))。攪拌轉(zhuǎn)速:前36 h,100 r·min-1~150 r·min-1;后期36 h~120 h,160 r·min-1~250 r·min-1(視溶氧量和菌絲球直徑大小調(diào)整)。進(jìn)風(fēng)量100 L·min-1~250 L·min-1(視溶氧量調(diào)整)。前24 h,取樣2次,取樣要求檢測(cè)菌絲體濃度和離線pH值,同時(shí)鏡檢香菇菌絲形態(tài),并檢測(cè)是否感染雜菌;25 h~120 h,每隔6 h取樣一次,檢測(cè)總菌絲體濃度和離線pH值,同時(shí)鏡檢香菇菌絲形態(tài),并檢測(cè)是否感染雜菌。整個(gè)發(fā)酵過(guò)程中每小時(shí)記錄1次在線pH值、通風(fēng)量、溶氧量、溫度、堿加入量等數(shù)據(jù)。

        1.2.6 菌絲萌發(fā)試驗(yàn)

        當(dāng)香菇菌絲體發(fā)酵至第6天和第7天時(shí),分別取樣接種至栽培袋中。栽培料配方為木屑68%、棉籽殼10%、麩皮20%、蔗糖1%、石膏1%,含水量60%左右,栽培袋大小15 cm×30 cm。滅菌冷卻后,無(wú)菌條件下在栽培袋同一側(cè)面相隔約15 cm處,用打孔器打2個(gè)孔(大小1 cm×1 cm×10 cm)。用移液槍接種,接種量分別為每孔1.5 mL、2.5 mL、5 mL、10 mL、15 mL,接種后用膠帶及時(shí)封住接種口。每個(gè)處理20個(gè)重復(fù),同時(shí)栽培袋接固體菌種作為對(duì)照。所有處理均置于24℃環(huán)境下暗培養(yǎng),觀察菌絲萌發(fā)情況。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 發(fā)酵過(guò)程中pH的變化

        香菇液體菌種發(fā)酵過(guò)程中pH隨時(shí)間的變化情況見(jiàn)圖1。

        由圖1可見(jiàn),發(fā)酵前36 h時(shí)pH變化緩慢,由5.00降低至4.95,表明這一階段香菇菌絲處在適應(yīng)期,代謝緩慢;65 h時(shí)pH下降至4.44,此時(shí)開(kāi)始流動(dòng)加堿,將pH調(diào)至4.50附近;152 h后pH開(kāi)始上升,76 h~120 h流加堿的頻率最高(每次約0.10 kg),表明期間菌絲體大量增多,代謝活躍,產(chǎn)生大量酸性物質(zhì),這個(gè)階段應(yīng)該是菌絲生長(zhǎng)的對(duì)數(shù)期至穩(wěn)定期。

        2.2 溶氧的變化

        圖1 香菇液體菌種發(fā)酵過(guò)程中pH隨時(shí)間的變化Fig.1 pH changed with time during the fermenting

        在菌絲發(fā)酵進(jìn)行38 h后溶氧量開(kāi)始降低,54 h~76 h之間培養(yǎng)基溶氧量低于50%,84 h后溶氧量恢復(fù)至初始值。此期間通過(guò)增加攪拌轉(zhuǎn)速(最高250 r·min-1)和增大通風(fēng)量(閥門(mén)開(kāi)量由15%增至33%)來(lái)保持培養(yǎng)基中的溶氧量,以保證菌絲體生長(zhǎng)代謝所需要的氧氣。這期間菌絲代謝旺盛,需要消耗大量的氧氣,因此造成培養(yǎng)基中溶氧量明顯下降。溶氧量開(kāi)始下降的時(shí)間點(diǎn)(38 h)與pH開(kāi)始降低的時(shí)間點(diǎn)(36 h) 較一致,同樣標(biāo)志香菇菌絲體大量繁殖,菌絲由適應(yīng)期進(jìn)入對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期。

        2.3 菌絲球固形物體積的變化

        由于培養(yǎng)基中有難以分解的豆粕粉顆粒等固體物質(zhì),通過(guò)檢測(cè)培養(yǎng)基中菌絲球的干重或者濕重,難以真實(shí)反映菌絲體的生物量。本研究通過(guò)檢測(cè)取樣樣品中發(fā)酵固形物(主要是香菇菌絲體)的體積占樣品總體積的百分?jǐn)?shù),來(lái)反映生成的香菇菌絲體的量。具體方法為每隔6 h取樣一次,將樣品混勻后取100 mL倒入100 mL量筒中,靜置2 h后等固形物體積不再減少,記錄固形物的體積,并計(jì)算固形物的百分比,見(jiàn)圖2。

        圖2 固形物體積比隨時(shí)間的變化Fig.2 Volume ratio of solid content changed with time

        由圖2可見(jiàn),香菇菌絲體量在36 h之前很少,無(wú)法統(tǒng)計(jì);在48 h開(kāi)始明顯增多,達(dá)15%,此時(shí)菌絲體處于對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期。相對(duì)于pH和溶氧量,這個(gè)指標(biāo)反映的香菇菌絲的生長(zhǎng)時(shí)期較滯后,因?yàn)橹挥芯z體體積累到一定量時(shí)才能反映出來(lái)。48 h~102 h固形物體積增長(zhǎng)最快,由15%增至88%,平均每小時(shí)增加量達(dá)1.35%,114 h固形物體積比達(dá)到92.1%;此后不再增加,198 h后固形物體積開(kāi)始減少,其原因可能是菌絲體開(kāi)始自溶。

        2.4 菌絲形態(tài)變化

        正常的香菇雙核菌絲體細(xì)長(zhǎng),壁光滑,隔膜不明顯,隔膜之間的間距較大,且有明顯的鎖狀聯(lián)合,可作為區(qū)分香菇菌絲體和其它雜菌的重要標(biāo)志之一。在發(fā)酵過(guò)程中取樣檢測(cè)發(fā)現(xiàn)6 d之前香菇菌絲檢測(cè)形態(tài)正常,菌絲分節(jié)少,壁光滑,有明顯的鎖狀聯(lián)合,菌絲體短片段較少;而第7天~第9天,攪拌速率保持80 r·min-1時(shí),取樣發(fā)現(xiàn)有大量菌絲體短片段生成,推測(cè)培養(yǎng)基中溶氧偏少、空間不足、營(yíng)養(yǎng)成分的消耗和次級(jí)代謝產(chǎn)物的積累等原因致使香菇菌絲發(fā)生自溶現(xiàn)象,從而觀察到大量菌絲體片段。

        2.5 培養(yǎng)基的變化

        培養(yǎng)基開(kāi)始由于一些物質(zhì)不溶而呈渾濁狀,隨著營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的消耗,發(fā)酵進(jìn)行6 d后,發(fā)酵上清液開(kāi)始澄清。這一方面可以作為發(fā)酵液是否有細(xì)菌污染的標(biāo)志(細(xì)菌污染發(fā)酵液變渾濁),另一方面也可以作為發(fā)酵終點(diǎn)的標(biāo)志。

        2.6 菌絲在栽培袋中的萌發(fā)情況

        不同的發(fā)酵時(shí)間及接種量對(duì)香菇菌絲萌發(fā)的影響見(jiàn)表1。

        表1 不同發(fā)酵時(shí)間及接種量對(duì)香菇菌絲萌發(fā)的影響Tab.1 Influence on germinating of L.edodes of different fermentation time and inoculation volume

        由表1可見(jiàn),接種液體菌種4 d時(shí),香菇菌絲體已開(kāi)始萌發(fā)。而接種固體菌種4 d時(shí),香菇菌絲體均未萌發(fā);第8天時(shí)才觀察到固體菌種在栽培袋上萌發(fā),說(shuō)明液體菌種在栽培料上的萌發(fā)所需要的時(shí)間要比固體菌種快。由表1可以看出,不同的接種量對(duì)菌絲在栽培料上萌發(fā)影響較大:接種量在1.5 mL和2.5 mL時(shí)不能萌發(fā),說(shuō)明接種量偏少;接種量在5 mL和10 mL時(shí),菌絲均能萌發(fā),且長(zhǎng)勢(shì)良好;接種量為15 mL時(shí),發(fā)酵144 h的香菇菌絲體可以萌發(fā),但發(fā)酵168 h的菌絲體只有部分能萌發(fā);8 d后約40%接種孔沒(méi)有萌發(fā)。以上可以看出,香菇菌種液體發(fā)酵不易超過(guò)7 d,7 d后菌絲體活力下降,直接影響接種后菌種在栽培料上的萌發(fā)。

        3 討論

        食用菌液體菌種深層發(fā)酵,其中重點(diǎn)之一是要防止污染,一旦液體菌種被細(xì)菌或者真菌污染,整個(gè)發(fā)酵罐中的菌種將會(huì)被丟棄,這在實(shí)際生產(chǎn)中會(huì)帶來(lái)較嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)損失。除了種子本身的質(zhì)量外,另一個(gè)容易引起污染的環(huán)節(jié)就是接種。一般情況下將種子液接種到發(fā)酵罐時(shí),發(fā)酵罐培養(yǎng)基和種子液是暴露在外界環(huán)境中的,這時(shí)如果環(huán)境的潔凈等級(jí)達(dá)不到要求,很容易被雜菌污染。本研究為降低接種環(huán)節(jié)被污染的風(fēng)險(xiǎn),采用無(wú)菌培養(yǎng)接種罐接種。即先將種子在超凈工作臺(tái)上轉(zhuǎn)入無(wú)菌培養(yǎng)接種罐,在無(wú)菌空氣中將罐中的種子液壓入發(fā)酵罐中。因接種罐和發(fā)酵罐構(gòu)成的是一個(gè)密閉系統(tǒng),與外界完全隔離,有效降低這一環(huán)節(jié)被污染的風(fēng)險(xiǎn)。

        通氣量、攪拌速率、溫度和pH是影響香菇液體菌種發(fā)酵的重要因素。其中通氣量和攪拌速率的目的是為了調(diào)節(jié)溶氧量和菌絲球大小。在菌絲生長(zhǎng)的對(duì)數(shù)期,有大量菌絲體生成,代謝旺盛,對(duì)氧氣的消耗也多,此時(shí)要適當(dāng)增加通風(fēng)量和攪拌速率。但在試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),攪拌速率過(guò)快(250 r·min-1)會(huì)導(dǎo)致菌絲球過(guò)小,且會(huì)產(chǎn)生很多絮狀物。這些絮狀物是否會(huì)對(duì)接種后菌絲的萌發(fā)產(chǎn)生影響,尚需進(jìn)一步研究。通過(guò)將溶氧量、pH及菌絲體生成量相結(jié)合,可以推測(cè)菌絲發(fā)酵所處于的階段。在發(fā)酵過(guò)程中采用流加飽和Na2CO3的方式,可使pH始終處于較適宜香菇菌絲生長(zhǎng)范圍,同時(shí)根據(jù)流加堿的頻率和量,也能反映出香菇菌絲發(fā)酵所處階段。

        香菇菌絲液體發(fā)酵時(shí)間和接種量對(duì)液體菌種在栽培袋中的萌發(fā)至關(guān)重要。在研究中發(fā)現(xiàn),液體菌種發(fā)酵6 d時(shí)要比7 d時(shí)萌發(fā)理想,在接種量低于2.5 mL時(shí)不能萌發(fā);而發(fā)酵7 d,接種量為15 mL時(shí),香菇菌絲只有部分萌發(fā)。分析認(rèn)為,其可能原因是7 d時(shí)已有部分菌絲自溶,水分過(guò)多的不利影響超過(guò)了菌絲量增多的影響。在接種量為5 mL和10 mL時(shí),發(fā)酵6 d和7 d均可萌發(fā)。以上分析結(jié)合經(jīng)濟(jì)考慮,建議香菇液體菌種發(fā)酵不要超過(guò)6 d,每個(gè)接種孔接種量在5 mL~10 mL。

        [1]Kirk P,Minter DS.Dictionary of the fungi(10th edition)[M]. Oxon:CABI Europe-UK,2008.

        [2]黃傳華.平菇與雞腿蘑液體菌種培養(yǎng)及應(yīng)用技術(shù)研究[D].泰安:山東農(nóng)業(yè)大學(xué),2006.

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        Submerged Fermentation Technology of Liquid Spawn of Lentinus edodes

        LIU Shi-ling2,LU Xing-chao1,JIANG Kun1,SHANG Dong-ni1,TANG Yue1, TIAN Shao-ping1,LI Ke-bin2,CAO Xian-tao1
        (1.Hubei Wulin Land Agricultural Science&Technology Co.Ltd.,Yichang 443000,China; 2.Yichang Academy of Agricultural Sciences,Yichang 443000,China)

        The submerged fermentation technology of liquid spawn of Lentinus edodes with 500 L fermenter based on the media and technology of 50 L fermenter were studied.pH value began to decline after 30 h,the dissolved oxygen tension began to decline after 38 h.The volume ratio of mycelia reached 92.16%after 120 h,the frequency of the flowing-alkaline (saturated solution of Na2CO3)is frequent highest within the range of 76 h-120 h,and the vitality of spawn mycelia cultivated for 168 h declined significantly.Lots of L.edodes mycelia fragments were seen under microscope after 192 h,and the mycelia germinated well when inoculation amount ranged within 5 mL-10 mL.The risk of contamination could be reduced effectively by inoculating with sterile culture and inoculation canister which has been patented,the proper condition for submerged fermentation of L.edodes spawn was 24℃,pH 4.5,dissolved oxygen tension within 90%-98%,agitation speed 180 r·min-1,and the optical inoculating period was within 96 hours-144 hours,inoculation volume was within the range of 5 mL-10 mL.

        Lentinus edodes;liquid spawn;fermentation;technology

        S646.9

        A

        1003-8310(2016)01-0021-04

        10.13629/j.cnki.53-1054.2016.01.005

        劉世玲(1966-),女,本科,正高職高級(jí)工程師,主要從事應(yīng)用微生物學(xué)方面的研究工作。E-mail:2896006619@qq.com

        *通信作者:曹現(xiàn)濤(1989-),男,碩士,工程師,主要從事香菇液體菌種發(fā)酵工藝與應(yīng)用研究。E-mail:wh201206@126.com

        2015-11-20

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        河南科技(2015年3期)2015-02-27 14:20:52
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