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        大腸桿菌耐酸分子機(jī)制研究進(jìn)展

        2015-12-26 09:43:56陳卓逐闞建全
        食品科學(xué) 2015年21期
        關(guān)鍵詞:耐酸依賴型谷氨酰胺

        陳卓逐,闞建全,石 慧

        (西南大學(xué)食品科學(xué)學(xué)院,重慶市農(nóng)產(chǎn)品加工與貯藏重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,農(nóng)業(yè)部農(nóng)產(chǎn)品貯藏保鮮質(zhì)量安全風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估實(shí)驗(yàn)室(重慶),重慶 400715)

        大腸桿菌耐酸分子機(jī)制研究進(jìn)展

        陳卓逐,闞建全,石 慧*

        (西南大學(xué)食品科學(xué)學(xué)院,重慶市農(nóng)產(chǎn)品加工與貯藏重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,農(nóng)業(yè)部農(nóng)產(chǎn)品貯藏保鮮質(zhì)量安全風(fēng)險(xiǎn)評(píng)估實(shí)驗(yàn)室(重慶),重慶 400715)

        具有耐強(qiáng)酸能力的大腸桿菌在酸性脅迫條件下更易生存。這主要是由于其具有葡萄糖-阻礙耐酸系統(tǒng)、氨基酸依賴型耐酸系統(tǒng)、伴侶蛋白抗酸作用以及保持膜電荷穩(wěn)定等耐酸機(jī)制。了解大腸桿菌的這些耐酸分子機(jī)制,可以為食品加工工業(yè)控制大腸桿菌的污染提供新的認(rèn)識(shí),也對(duì)一些食源性致病菌的臨床預(yù)防和治療具有積極的作用。本文就大腸桿菌耐酸分子機(jī)制的研究進(jìn)行綜述。

        大腸桿菌;葡萄糖-阻礙;氨基酸依賴型;伴侶蛋白;膜電荷;交叉保護(hù)

        大腸桿菌(Escherichia coli)是與人們?nèi)粘I铌P(guān)系非常密切的一類細(xì)菌,是腸道桿菌大類中的一種,包括非致病性大腸桿菌和致病性大腸桿菌。前者是人類及動(dòng)物的腸道正常菌,后者可引起食物中毒。大腸桿菌分布非常廣泛,土壤表層、水體、家畜、家禽、蚊蠅等都含有致病性大腸桿菌,肉類、乳與乳制品、水產(chǎn)品、豆制品、蔬菜、發(fā)酵食品等各種食品都有可能被致病性大腸桿菌污染,并通過飲水和食物使人中毒[1-4]。致病性大腸桿菌是引起食物中毒最常見的病原菌之一。

        大腸桿菌有較強(qiáng)的耐酸性,特別是其處于穩(wěn)定期的細(xì)胞能夠耐受pH 2.5或更低的酸性條件數(shù)小時(shí),王金玲等[5]分離出了一株在pH 2.5條件下耐受29 h的O157:H7。因此,大腸桿菌很容易污染酸性或發(fā)酵食品如果汁、香腸、奶酪、酸奶、腌制食品等[6-9];另一方面,致病性大腸桿菌能夠通過哺乳動(dòng)物的胃(pH 1~3)進(jìn)入腸道生存繁殖而致病,給人類的健康帶來威脅[10-12]。因此,對(duì)于大腸桿菌的這種能夠在強(qiáng)酸環(huán)境生存的機(jī)制備受關(guān)注,研究人員發(fā)現(xiàn)大腸桿菌存在多種耐酸機(jī)制,且多種機(jī)制及其相互間的影響構(gòu)成了一個(gè)復(fù)雜的耐酸調(diào)節(jié)網(wǎng)絡(luò)。

        當(dāng)大腸桿菌暴露于非致死的酸性條件下時(shí),會(huì)誘導(dǎo)多種耐酸系統(tǒng)的作用及相關(guān)基因的表達(dá)(acid resistant systems,ARs),如葡萄糖-阻礙耐酸系統(tǒng)、氨基酸(谷氨酸、精氨酸、谷氨酰胺)依賴型耐酸系統(tǒng),ARs可保護(hù)細(xì)胞在pH 2.0~4.0的可致死條件下存活[11-13]。最近的研究發(fā)現(xiàn)大腸桿菌周質(zhì)空間存在分子伴侶HdeA和HdeB,在酸性條件下,HdeA和HdeB可與蛋白質(zhì)結(jié)合并防止其聚集沉淀[14-16]。大腸桿菌的其他耐酸機(jī)制包括通過改變細(xì)胞膜成分和保持膜電荷穩(wěn)定以及交叉保護(hù)的機(jī)制也對(duì)其耐酸能力起重要的輔助作用。大腸桿菌在不含氨基酸的培養(yǎng)基(如只含有葡萄糖的基本培養(yǎng)基)條件下的抗酸能力明顯低于其在富含氨基酸的培養(yǎng)基(如Luria broth,LB)中的抗酸能力[10,17]。氨基酸依賴型耐酸系統(tǒng)在富含氨基酸的培養(yǎng)基里能發(fā)揮有效的耐酸性,而且氨基酸依賴型耐酸系統(tǒng)消耗質(zhì)子的能力更強(qiáng)。但是,若大腸桿菌生存在成分復(fù)雜的酸性食品或者哺乳動(dòng)物的胃中,其多種耐酸機(jī)制將同時(shí)發(fā)揮作用。

        1 葡萄糖-阻礙耐酸系統(tǒng)(AR1)

        葡萄糖-阻礙耐酸系統(tǒng)(AR1)是研究人員根據(jù)當(dāng)大腸桿菌在pH 5.5的基本培養(yǎng)基生長(zhǎng)到穩(wěn)定期(stationary phase)時(shí),pH值迅速調(diào)整到2.5后大腸桿菌仍然能夠存活的現(xiàn)象發(fā)現(xiàn)的。選擇性信號(hào)因子σs和總調(diào)控蛋白CRP(cAMP receptor protein)是抵抗酸性環(huán)境所需要的[17-18]。此外,傳遞質(zhì)子的F0F1-ATP酶(F0/F1protontranslocating ATPase)也參與其間,但AR1是否由F0F1-ATP酶系統(tǒng)提供能量還是未知的[17-22]。谷氨酸和谷氨酰胺能激活此耐酸系統(tǒng),葡萄糖會(huì)對(duì)其產(chǎn)生抑制作用;pH 8.0時(shí),細(xì)胞會(huì)產(chǎn)生抑制劑阻止該系統(tǒng)的活化[21]。選擇性信號(hào)因子σs由RpoS編碼,RpoS是細(xì)菌一般脅迫反應(yīng)的主要調(diào)控因子??梢哉T導(dǎo)RpoS表達(dá)包括脅迫條件(如碳源和氮源饑餓、滲透壓升高、低pH值、溫度升高等)以及一些細(xì)胞內(nèi)信號(hào)。

        圖1 葡萄糖-阻礙耐酸系統(tǒng)作用機(jī)制[23-27]Fig.1 Mechanism of the glucose-repressed acid resistance[23-27]

        AR1的結(jié)構(gòu)組分和保護(hù)機(jī)制仍不明確,研究人員推出其作用機(jī)制,如圖1所示,一方面,酸性條件可以直接作用RpoS,誘導(dǎo)RpoS的翻譯、抑制RpoS的降解,從而增加RpoS量的積累;另一方面,酸性條件可以抑制cAMP的表達(dá),活化諸如PhoP/PhoQ、ArcB/RssB等雙組分系統(tǒng),cAMP的減少將會(huì)激活RpoS的表達(dá),活化的PhoP/PhoQ間接調(diào)控RpoS的轉(zhuǎn)錄,活化的ArcB/RssB間接抑制RpoS的降解[23-27]。因此,在酸性條件下RpoS的量將明顯提高并產(chǎn)生一定量的酸休克蛋白(acid shock proteins,ASPs),ASPs的作用是保護(hù)和修復(fù)大分子,能提高細(xì)胞膜的穩(wěn)定性[28-29]。RpoS是葡萄糖-阻礙耐酸系統(tǒng)不可缺少的調(diào)節(jié)因子,而且在其他耐酸機(jī)制中也起著一定的調(diào)控作用。研究表明,大腸桿菌在高滲、pH 5.0的條件下或進(jìn)入穩(wěn)定期,RpoS直接或間接調(diào)控其大約500 個(gè)基因的表達(dá),占E. coli基因組的10%[25,28-32]。

        2 氨基酸依賴型耐酸系統(tǒng)

        2.1 谷氨酸依賴型耐酸系統(tǒng)(AR2)

        谷氨酸依賴型耐酸系統(tǒng)(AR2)是在谷氨酸存在的情況下,依賴于兩個(gè)谷氨酸脫羧酶(GadA和GadB)的異構(gòu)體和谷氨酸-γ-氨基丁酸(γ-aminobutyric acid,GABA)反轉(zhuǎn)運(yùn)體(GadC)共同發(fā)揮耐酸作用[19-20,31]。如圖2所示,AR2的作用機(jī)制是大腸桿菌利用谷氨酸脫羧酶使谷氨酸在脫羧過程中生成GABA并消耗細(xì)胞內(nèi)的H+,達(dá)到升高細(xì)胞內(nèi)pH值的目的;轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白GadC將GABA轉(zhuǎn)運(yùn)到細(xì)胞外并交換新的底物(谷氨酸)。脫羧和轉(zhuǎn)運(yùn)的作用就是將酸性環(huán)境下進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)的質(zhì)子消耗,再將產(chǎn)物輸出細(xì)胞,并交換新的底物,如此循環(huán),能夠阻止細(xì)胞內(nèi)的pH值降低,以防止細(xì)胞致死。

        圖2 大腸桿菌主要的耐酸系統(tǒng)[13,19-20]Fig.2 Main acid resistance in E. coli[13,19-20]

        谷氨酸依賴型耐酸系統(tǒng)是大腸桿菌最有效的耐酸系統(tǒng)。同功酶GadA、GadB和氨基酸轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白GadC共同作用發(fā)揮著消耗入侵細(xì)胞內(nèi)質(zhì)子的作用,從而緩解因?yàn)榄h(huán)境低pH值而導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)pH值降低的脅迫。研究發(fā)現(xiàn),3 個(gè)關(guān)鍵基因gadA、gadB、gadC的缺失都會(huì)顯著影響細(xì)菌在pH 2~3的存活率。同時(shí)還發(fā)現(xiàn),pH 2.5時(shí),GadA和GadB任何一種脫羧酶的存在都能保證AR2發(fā)揮耐酸作用,但是當(dāng)pH 3.0時(shí),2 種脫羧酶同時(shí)存在才能保證AR2的有效性[21]。研究還發(fā)現(xiàn),在pH 5.5的EG培養(yǎng)基和在pH 7.0的EG培養(yǎng)基大腸桿菌生長(zhǎng)到對(duì)數(shù)后期,其gadA、gadB的表達(dá)量有顯著差異,gadA和gadB在pH 5.5時(shí)的表達(dá)量顯著多于在pH 7.0時(shí)的表達(dá)量[30-34]。可見,酸性條件能夠誘導(dǎo)著幾個(gè)基因的表達(dá),反過來其高表達(dá)又能很好的增強(qiáng)大腸桿菌的耐酸能力。

        谷氨酸依賴型耐酸系統(tǒng)的耐酸能力除了與這3 個(gè)關(guān)鍵蛋白有直接關(guān)系外,其還受到另外11 個(gè)調(diào)節(jié)基因的影響,如圖3所示。這個(gè)系統(tǒng)是處于一個(gè)復(fù)雜的調(diào)節(jié)網(wǎng)絡(luò)之中。GadE是關(guān)鍵調(diào)節(jié)基因,位于gadA和gadB、gadC的上游,由gad盒子和GadE激活子組成[35-36]。

        圖3 谷氨酸依賴型耐酸系統(tǒng)的激活與調(diào)節(jié)網(wǎng)絡(luò)[11]Fig.3 Activation and accessory circuits controlling glutamatedependent acid resistance[11]

        研究證明無論在何種成分的培養(yǎng)基(LB、LBG、BHI)還是在不同的生長(zhǎng)時(shí)期下,GadE對(duì)gadA和gadB、gadC的表達(dá)都起到關(guān)鍵的調(diào)控作用[7]。GadE除了自我調(diào)節(jié)表達(dá)外,還存在3 條調(diào)節(jié)途徑。第一條途徑需要傳感激酶EvgS、調(diào)節(jié)因子EvgA以及YdeO的參與,YdeO能夠直接或間接地激活GadE的轉(zhuǎn)錄;第二條途徑需要CRP和RpoS兩個(gè)調(diào)節(jié)因子GadX、GadW的參與,這條環(huán)路對(duì)細(xì)胞的耐酸性起到至關(guān)重要的作用,酸性環(huán)境會(huì)抑制cAMP的表達(dá),但是cAMP的減少將會(huì)激活RpoS的表達(dá),進(jìn)而促進(jìn)GadX的表達(dá)或GadW的降解;第三條途徑稱為TrmE環(huán)路,TrmE在細(xì)胞內(nèi)的功能并不完全明確,只知道它會(huì)誘導(dǎo)tRNA的改變[7,37-39]。

        2.2 精氨酸依賴型耐酸系統(tǒng)(AR3)

        精氨酸依賴型耐酸系統(tǒng)(AR3)與AR2作用機(jī)制相同,只不過需要外源精氨酸。AR3在低pH值厭氧條件下被誘導(dǎo),由精氨酸脫羧酶(AdiA)和反轉(zhuǎn)運(yùn)體(AdiC)組成[7,38,40]。在富含精氨酸的酸性培養(yǎng)條件下,酸誘導(dǎo)AdiA和AdiC的表達(dá),大腸桿菌利用精氨酸脫羧酶使精氨酸在脫羧過程中生成胍丁胺(agmatine)并消耗細(xì)胞內(nèi)的H+,達(dá)到升高細(xì)胞內(nèi)pH值的目的;脫羧產(chǎn)物胍丁胺被轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白AdiC轉(zhuǎn)運(yùn)到細(xì)胞外并交換新的精氨酸,如圖2。脫羧消耗細(xì)胞內(nèi)的質(zhì)子,轉(zhuǎn)運(yùn)交換新的底物,如此循環(huán),雖然質(zhì)子不斷地滲透到細(xì)胞質(zhì)中,但細(xì)胞質(zhì)中pH值仍然保持在pH 4.7±0.1,在此范圍內(nèi),不會(huì)引起大腸桿菌死亡[40]。

        研究發(fā)現(xiàn),adiC(yjdE)基因位于相鄰的調(diào)控基因adiY和adiA基因的上游,這一點(diǎn)與AR2中的gadC和gadB基因的位置是一致的(圖4)。gadB基因編碼谷氨酸的脫羧酶GadB,它們上游基因gadC編碼的GadC蛋白是谷氨酸和GABA的反向轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白。而恰好AdiA又是精氨酸的脫羧酶,adiC編碼的AdiC蛋白與GadC一樣,是一種膜反向轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白[39-41]。

        圖4 AR2(a)、AR3(b)基因排布圖[40]Fig.4 Distribution of genes in AR2 (a) and AR3 (b)[40]

        2.3 谷氨酰胺依賴型耐酸系統(tǒng)(AR4)

        谷氨酰胺依賴型耐酸系統(tǒng)是2013年清華大學(xué)施一公教授等[13]發(fā)現(xiàn)的一個(gè)新型大腸桿菌氨基酸依賴型耐酸系統(tǒng)。證實(shí)其在谷氨酰胺(Gln)存在的條件下,依賴于谷氨酰胺酶(YbaS)和氨基酸反向轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白(GadC)共同發(fā)揮對(duì)酸的抵抗能力[13,30,42],見圖2。YbaS和GadC可被酸性pH值激活,且只在pH值小于或等于6.0時(shí)才能適當(dāng)發(fā)揮功能。通過吸收L-谷氨酰胺(Gln),大腸桿菌利用YbaS將之轉(zhuǎn)化為L(zhǎng)-谷氨酸(Glu)并釋放氣態(tài)氨。游離氨中和質(zhì)子,維持大腸桿菌細(xì)胞體的pH值穩(wěn)定。GadC則負(fù)責(zé)細(xì)胞外Gln與細(xì)胞內(nèi)Glu交換。通過這一耐酸系統(tǒng),確保了大腸桿菌在含有豐富的谷氨酰胺的極酸性食品中生存。

        大腸桿菌有2 個(gè)谷氨酰胺酶基因ybaS和yneH,誘導(dǎo)它們表達(dá)谷氨酰胺酶的條件是不一樣的。研究者分別構(gòu)建了ybaS和yneH基因的缺陷菌株,發(fā)現(xiàn)YneH在接近中性條件發(fā)揮作用,而在pH≤6.0時(shí),YbaS對(duì)AR4起無可替代的作用[13]。另外,酶促反應(yīng)的產(chǎn)物谷氨酸能夠在同功酶GadA、GadB的作用下脫羧,形成谷氨酸脫羧作用耐酸系統(tǒng)。谷氨酰胺酶促反應(yīng)結(jié)合谷氨酸脫羧反應(yīng)能消耗2 份質(zhì)子,發(fā)揮更強(qiáng)大的耐酸能力,有效保障大腸桿菌的在酸性環(huán)境的生存。

        2.4 其他氨基酸依賴型耐酸系統(tǒng)

        大腸桿菌除了上述3 種重要的氨基酸依賴型耐酸系統(tǒng)外,其他氨基酸,如賴氨酸、鳥氨酸也能夠發(fā)生脫羧作用,消耗細(xì)胞內(nèi)的質(zhì)子,其作用機(jī)制和上述脫羧作用一致[42]。但是賴氨酸脫羧酶、鳥氨酸脫羧酶需要較高的pH值(幾乎不能在pH 2.5條件下發(fā)揮作用)。最近的研究表明賴氨酸脫羧作用耐酸系統(tǒng)確實(shí)存在于大腸桿菌中,但是耐酸能力很低[7,40]。

        3 伴侶蛋白發(fā)揮抗酸作用的耐酸系統(tǒng)

        分子伴侶是細(xì)胞中一大類蛋白質(zhì),是由不相關(guān)的蛋白質(zhì)組成的一個(gè)家系,它們介導(dǎo)其他蛋白質(zhì)的正確折疊與裝配,但自己不成為最后功能結(jié)構(gòu)中的組分。最新的研究發(fā)現(xiàn),在大腸桿菌的周質(zhì)空間中存在著酸性條件下能夠幫助周質(zhì)蛋白復(fù)性的分子伴侶HdeA和HdeB[14-16,43]。HdeA具有α-螺旋結(jié)構(gòu)和兩親性的特點(diǎn),能被DNA結(jié)合蛋白H-NS(histone-like nucleoidstructuring protein)抑制[44-47]。在pH<3.0的酸性環(huán)境中,HdeA能夠阻止周質(zhì)蛋白的酸誘導(dǎo)聚集對(duì)細(xì)胞起到毒害作用[47-53]。在中性pH值條件下,HdeA以折疊態(tài)沒有伴侶活性的二聚體形式出現(xiàn),不能和蛋白質(zhì)底物結(jié)合。當(dāng)pH<3.0時(shí),HdeA迅速解離成單體,單體結(jié)構(gòu)部分展開具有伴侶活性 并且暴露出疏水性的表面,然后和底物蛋白結(jié)合阻止其酸誘導(dǎo)聚集[52-54]。有趣的是,HdeA和底物結(jié)合時(shí),其能量來源于外部pH值的變化,而不需要消耗細(xì)菌本身的能量。

        HdeB是HdeA的類似物,與HdeA擁有類似的結(jié)構(gòu)和功能[41,55]。它們的區(qū)別在于:HdeA在pH 2.0左右的時(shí)候發(fā)揮重要的抗周質(zhì)蛋白聚集的作用,在pH 3.0左右時(shí)二者都發(fā)揮抗周質(zhì)蛋白聚集的作用,但HdeB比HdeA更加有效[46]。HdeA和HdeB抗酸性存在差異的原因是HdeB二聚體完全解離是在pH 3.0左右時(shí),HdeA卻是在更低的pH值情況下。此外,HdeB在pH值為2.0時(shí)暴露出的疏水性表面要比HdeA暴露的程度低[14]。HdeA和HdeB在抗酸方面存在著協(xié)同作用,實(shí)驗(yàn)證明hdeA、hdeB單基因的缺失都會(huì)降低細(xì)菌在酸性條件下的存活率。

        4 膜成分改變及膜電荷的穩(wěn)定

        細(xì)胞膜是食源性病原菌抵抗環(huán)境脅迫的第一道防御屏障。食源性病原菌通過改變其膜成分來應(yīng)答環(huán)境壓力,使膜的流動(dòng)性與其生命活動(dòng)相協(xié)調(diào)[56-57]。膜上環(huán)丙烷脂肪酸(cyclopropane fatty acids,CFA)含量的變化對(duì)于大腸桿菌的耐酸性起著重要的作用[57-58]。研究證明,環(huán)丙烷脂肪酸的增加提高了膜的穩(wěn)定性,限制了?;溦w的移動(dòng),最終減弱了膜的流動(dòng)性[56,59]。

        大腸桿菌不僅通過改變其膜成分來適應(yīng)酸壓力,而且能在一定程度上保持細(xì)胞膜電荷的穩(wěn)定,避免了細(xì)胞的超極化現(xiàn)象(正常情況下,大腸桿菌的膜電勢(shì)為負(fù))[11,60]。大腸桿菌細(xì)胞膜上的氫/氯離子轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白(CLC H+/Cl-)對(duì)氨基酸依賴型耐酸系統(tǒng)起著重要的輔助作用,其作用的機(jī)制是:一方面,脫羧反應(yīng)和酶促反應(yīng)能夠消耗細(xì)胞膜內(nèi)的質(zhì)子,降低電荷;另一方面,氫/氯離子轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白能夠?qū)⒓?xì)胞內(nèi)的氫離子轉(zhuǎn)運(yùn)出去,并將細(xì)胞外與氯離子類似的陰離子轉(zhuǎn)運(yùn)進(jìn)入細(xì)胞內(nèi),中和電荷,最終使細(xì)胞內(nèi)的電荷恢復(fù)到正常的負(fù)電荷[60-63]。

        5 交叉保護(hù)

        在一種壓力下可以產(chǎn)生抵抗其他壓力的能力,稱為交叉保護(hù),大腸桿菌存在多種交叉保護(hù)的現(xiàn)象(表1)。經(jīng)過酸適應(yīng)的大腸桿菌,可以增強(qiáng)抵抗其他逆境的能力[64-65];同樣地,經(jīng)過諸如熱、饑餓、滲透壓應(yīng)激的大腸桿菌,可以增強(qiáng)抵抗酸的能力[66-69]。Arnold等[67]研究證明,25 ℃饑餓培養(yǎng)的大腸桿菌O157:H7的抗酸能力得到提高,饑餓條件下產(chǎn)生的饑餓休克蛋白(staration proteins)能修復(fù)因酸而變性的大分子物質(zhì)。大多數(shù)細(xì)菌之所以能發(fā)生交叉保護(hù),原因在于細(xì)菌響應(yīng)一種脅迫時(shí)會(huì)產(chǎn)生多種保護(hù)蛋白,保護(hù)蛋白能修復(fù)因不同物理、化學(xué)因子而變性的大分子物質(zhì)[70]。

        表1 大腸桿菌的交叉保護(hù)Table 1 Cross protection of E. coli

        利用交叉保護(hù)這一特性,大腸桿菌能夠適應(yīng)多種環(huán)境的壓力,而使食品防腐劑(食品防腐劑就是人為制造一種脅迫因子,而使微生物不能正常生存)失去應(yīng)有的作用,增加食品中毒的現(xiàn)象。因此,研究不同壓力之間的交叉保護(hù),對(duì)于生產(chǎn)新型食品防腐劑具有重要的指導(dǎo)意義。

        6 結(jié) 語

        大腸桿菌在適應(yīng)各種環(huán)境壓力下,進(jìn)化出了多種應(yīng)激響應(yīng)機(jī)制來回應(yīng)各種壓力信號(hào)。其中研究最多的是大腸桿菌在酸性環(huán)境的應(yīng)答,它使大腸桿菌具有很強(qiáng)的耐受酸性脅迫能力和獨(dú)特的生理功能。在過去幾十年里,國(guó)內(nèi)外學(xué)者潛心地研究大腸桿菌的耐酸分子機(jī)制,已經(jīng)發(fā)現(xiàn)多種耐酸系統(tǒng)及其影響因素,還發(fā)現(xiàn)一些耐酸基因,如rpoS、gadE、gadX、phoQ等。這些基因可能作為新型的抗菌治療靶點(diǎn)或者為發(fā)展新型疫苗提供依據(jù)。

        隨著對(duì)大腸桿菌耐酸作用機(jī)制的深入了解,也引出很多沒有解決的問題,比如,AR1作用機(jī)制是什么,一切還在推測(cè)階段;大腸桿菌的這些耐酸系統(tǒng)存在于其他細(xì)菌嗎;環(huán)路TrmE作用途徑是怎樣的,TrmE為什么對(duì)gadA/BC的表達(dá)起著雙重作用;對(duì)應(yīng)答過程表達(dá)的一些酶類和蛋白質(zhì)還沒有準(zhǔn)確的定義、其結(jié)構(gòu)完全不了解;對(duì)大腸桿菌的耐酸機(jī)制的描述還在實(shí)驗(yàn)室階段,然而大腸桿菌在低pH值食品中的應(yīng)答機(jī)制更加復(fù)雜;還有哪些基因參與了大腸桿菌對(duì)酸信號(hào)的應(yīng)答。這些問題都需要進(jìn)一步的探究。但是,隨著現(xiàn)代技術(shù)的進(jìn)步,相信在接下來的幾十年里,人們將在大腸桿菌耐酸方面有更進(jìn)一步的發(fā)現(xiàn)和突破。

        [1] 史賢明, 施春雷, 索標(biāo), 等. 食品加工過程中致病菌控制的關(guān)鍵科學(xué)問題[J]. 中國(guó)食品學(xué)報(bào), 2011, 11(9): 194-208.

        [2] 山珊, 賴衛(wèi)華, 陳明慧, 等. 農(nóng)產(chǎn)品中大腸桿菌O157:H7的來源及分布研究進(jìn)展[J]. 食品科學(xué), 2014, 35(1): 289-293. doi: 10.7506/ spkx1002-6630-201401057.

        [3] RAFFAELLIR M, PALADINI M, HANSON H, et al. Child careassociated outbreak of Escherichia coli O157:H7 and hemolytic uremic syndrome[J]. The Pediatric Infectious Disease Journal, 2007, 26(10): 951-953.

        [4] HERMOS C R, JANINEH M, HAN L L, et al. Shiga toxin-producing Escherichia coli in children: diagnosis and clinical manifestations of O157:H7 and non-O157:H7 infection[J]. Journal of Clinical Microbiology, 2011, 49(3): 955-959.

        [5] 王金玲, 王芳, 周志江, 等. 出血性大腸桿菌O157:H7國(guó)內(nèi)分離株耐酸性的研究[J]. 食品科學(xué), 2005, 26(2): 101-104.

        [6] SLONCZEWSKI L, ROSEN B P, ALGER J R, et al. pH homeostasis in Escherichia coli: measurement by31P nuclear magnetic resonance of methylphosphonate and phosphate[J]. Proceedings of the National Academy of Science of the United States of America, 1981, 78(10): 6271-6275.

        [7] ZILBERSREIN D, AGMON V, SCHULDINER S, et al. Escherichia coli intracellular pH, membrane potential, and cell growth[J]. Journal of Bacteriology, 1984, 158(1): 246-252.

        [8] MILLER L G. Escherichia coli O157:H7 acid tolerance and survival in apple cider[J]. Journal of Food Protection, 1994, 57(6): 460-464.

        [9] DICKSON J R, SIRAGUSA G R. Survival of Salmonella typhimurium, Escherichia coli O157:H7 and Listeria monocytogenes during storage on beef sanitized with organic acids[J]. Journal of Food Safety, 1994, 14(4): 313-327.

        [10] SMALL P, BLANKENHORN D, WELTY D, et al. Acid and base resistance in Escherichia coli and Shigella flexneri: role of rpoS and growth pH[J]. The Journal of Bacteriology, 1994, 176(6): 1729-1737.

        [11] FOSTER J W. Escherichia coli acid resistance: tales of an amateur acidophile[J]. Nature Reviews Microbiology, 2004, 2(11): 898-907.

        [12] AUDIA J P, WEBB C C, FOSTER J W. Breaking through the acid barrier: an orchestrated response to proton stress by enteric bacteria[J]. International Journal of Medical Microbiology, 2001, 291(2): 97-106.

        [13] LU Peilong, MA Dan, SHI Yigong , et al. L-glutamine provides acid resistance for Escherichia coli through enzymatic release of ammonia[J]. Cell Research, 2013, 23(5): 635-644.

        [14] 于延慶, 于志超, 李艷妮. 分子伴侶HdeA與HdeB的作用機(jī)制[J]. 中國(guó)生物化學(xué)與分子生物學(xué)報(bào), 2014, 30(5): 441-446.

        [15] KERN R, MALKI A, ABDALLAH J, et al. Escherichia coli HdeB is an acid stress chaperone[J]. Journal of Bacteriology, 2007, 189(2): 603-610.

        [16] VALDERAS M W, ALCANTARA R B, BAUMGARTNER J E, et al. Role of HdeA in acid resistance and virulence in Brucellaabortus 2308[J]. Veterinary Microbiology, 2005, 107(3/4): 307-312.

        [17] LIN J, LEE I S, FREY J, et al. Comparative analysis of extreme acid survival in Samonella typhimurium, Shigella flexneri, and Escherichia coli[J]. The Journal of Bacteriology, 1995, 177(14): 4097-4104.

        [18] LIN J, SMITH M P, CHAPIN K C, et al. Mechanisms of acid resistance in resistance enterohemorrhagic Escherichia coli[J]. Applied and Environmental Microbiology, 1996, 62(9): 3094-3100.

        [19] CASTANIE-CORNET M P, FOSTER J W. Escherichia coli acid resistance: cAMP recepor protein and a 20 bp cis-acting sequence Control pH and stationary phase expression of the gadA and gadBC glutamate decarboxylase genes[J]. Microbiology, 2001, 147(3): 709-715.

        [20] MA D, LU P, YAN C, et al. Structure and mechanism of a glutamate-GABA antiporter[J]. Nature, 2012, 483: 632-636.

        [21] CASTANIE-CORNET M P, PENFOUND T A, SMITH D, et al. Control of acid resistance in Escherichia coli[J]. Journal of Bacteriology, 1999, 181(11): 3525-3535.

        [22] RICHARD H T, FOSTER J W. Acid resistance in Escherichia coli[J]. Advances in Applied Microbiology, 2003, 52: 167-186.

        [23] TU Xuanlin, LATIFI T, BOUGDOUR A, et al. The PhoP/PhoQ twocomponent system stabilizes the alternative sigma factor RpoS in Salmonella enterica[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2006, 103(36): 13503-13508.

        [24] UTSUMI R. Bacterial signal transduction: networks and drug targets[M]. New York: Springer, 2008: 40-45.

        [25] MERRELL D S, CAMILLI A. Acid tolerance of gastriantestinal pathogens[J]. Current Opinion in Microbiology, 2002, 5(1): 51-55.

        [26] WESCHE A M, GURTLER J B, MARKS B P, et al. Stress, sublethal injury, resuscitation, and virulence of bacterial foodborne pathogens[J]. Journal of Food Protection, 2009, 72(5): 1121-1138.

        [27] BEARSON S, BEARSON B, FOSTER J W. Acid stress responses in enterobacteria[J]. FEMS Microbiology Letter, 1997, 147: 173-180.

        [28] RICHARD H, FOSTER J W. Escherichia coli glutamate- and arginine-dependent acid resistance systems increase internal pH and reverse transmembrane potential[J].The Journal of Bacteriology, 2004, 186(18): 6032-6041.

        [29] LACOUR S, LANDINI D. σs-dependent gene expression at the onset of stationary phase in Escherichia coli: function of σs-dependent genes and identification of their promoter sequences[J]. Journal of Bacteriology, 2004, 186(21): 7186-7195.

        [30] PATTEN C L, KIRCHHHOF M G, SCHERRZBERG M R, et al. Microarray analysis of RpoS mediated gene expression in Escherichia coli K-12[J]. Molecular Genetics and Genomics, 2004, 272(5): 580-591.

        [31] THOMPSON K M, GOTTESMAN S. The miaA tRNA modification enzyme is necessary for robust RpoS expression in Escherichia coli[J]. Journal of Bacteriology, 2014, 196(4): 754-761.

        [32] 吳晨紫, 楊志偉. 細(xì)菌對(duì)脅迫應(yīng)答因子RpoS的調(diào)控[J]. 生物技術(shù)通報(bào), 2010(12): 50-55; 63.

        [33] WEBER H, POLEN T, HEUVELING J, et al. Genome-wide anlysis of the general stress response network in Escherichia coli: σsdependent genes, promoters and sigma factor selectivity[J]. Journal of Bacteriology, 2005, 187(5): 1591-1603.

        [34] HERSH B M, FAROOQ F T, BARSTAD D N, et al. A glutamatedependent acid resistance gene in Escherichia coli[J]. Journal of Bacteriology, 1996, 178(13): 3978-3981.

        [35] MA Z, GONG S, RICHARD H, et al. GadE (YhiE) activates glutamate decarboxylase-dependent acid resistance in Escherichia coli K-12[J]. Molecular Microbiology, 2003, 49(5): 1309-1320.

        [36] RICHARD H, FOSTER J W. Sodium regulates Escherichia coli acid resistance, and influences GadX- and GadW-dependent activation of gadE[J]. Microbiology, 2007, 153(9): 3154-3161.

        [37] CALDON C E,YOONG P, MARCH P E. Evolution of a molecular switch: universal bacterial GTPases regulate ribosome function[J]. Molecular Microbiology, 2001, 41(2): 289-297.

        [38] YIM L, MARTíNEZ-VICENTE M, VILLARROYA M, et al. The GTPase activity and C-terminal cysteine of the Escherichia coli MnmE protein are essential for its tRNA modifying function[J]. Journal of Biological Chemistry, 2003, 278(31): 28378-28387.

        [39] GONG S, MA Z, FOSTER J W. The Era-like GTPase TrmE conditionally activates gadE and glutamate-dependent acid resistance in Escherichia coli[J]. Molecular Microbiology, 2004, 54(4): 948-961. [40] LYER R, WILLIAMS C, MILLER C. Arginine-agmatine antiporter in extreme acid resistance in Escherichia coli[J]. Journal of Bacteriology, 2003, 185(22): 6556-6561.

        [41] AUGER E A, REDDING K E, PLUMB T, et al. Construction of lac fusions to the inducible arginine and lysine- decarboxylase genes of Escherichia coli K-12[J]. Molecular Microbiology, 1989, 3(5): 609-620.

        [42] KOWALCZYK L, RATERA M, PALADINO A, et al. Molecular basis of substrate-induced permeation by an amino acid antiporter[J]. Proceedings of the National Academy of Science of the United States of America, 2011, 108(10): 3935-3940.

        [43] ALVAREZ-ORDONEZ A, FERNANDEZ A, BERNARDO A, et al. Arginine and lysine decarboxylases and the acid tolerance response of Salmonella Typhimurium[J]. International Journal of Food Microbiology, 2010, 136(3): 278-282.

        [44] HONG Weizhe, WU Ye, FU Xinmiao, et al. Chaperone-dependent mechanisms for acid resistance in enteric bacteria[J]. Trends in Microbiology, 2012, 20(7): 328-335.

        [45] HOMMAIS F, KRIN E, LAURENT-WINTER C, et al. Largescale monitoring of pleiotropic regulation of gene expression by the prokaryotic nucleoid associated protein H-NS[J]. Molecular Microbiology, 2001, 40(1): 20-36.

        [46] TUCKER D L, TUCKER N, CONWAY T. Gene expression profiling of the pH response in Escherichia coli[J]. Journal of Bacteriology, 2002, 184(23): 6551-6558.

        [47] TRAMONTI A, VISCA P, de CANIO M, et al. Functional characterization and regluation of gadX, a gene encoding an AraC/ XylS-like transcriptional activator of the Echerichia coli glutamic acid decarboxylase system[J]. Journal of Bacteriology, 2002, 184(34): 2603-2613.

        [48] WU Y, HONG W Z, LIU C, et al. Conserved amphiphilic feature is essential for periplasmic chaperone HdeA to support acid resistance in enteric bacteria[J]. The Biochemical Journal, 2008, 412(2): 389-397.

        [49] GONG S, RICHARD H, FOSTER J W. YjdE (AdiC) is the arginine: agmatine antiporter essential for arginine-dependent acid resistance in Escherichia coli[J]. Journal of Bacteriology, 2003, 185(12): 4402-4409.

        [50] GAJIWALA K S, BURLEY S K. HDEA, a periplasmic protein that supports acid resistance in pathogenic enteric bacteria[J]. Journal of Molecular Biology, 2000, 295(3): 605-612.

        [51] STAUFFER L T, STAUFFER G V. Antagonistic Roles for GcvA and GcvB in hdeAB expression in Escherichia coli[J]. ISRN Microbiology, 2012, 697308. http://dx.doi.org/10.5402/2012/697308.

        [52] MASUDA N, CHURCH G M. Regulatory network of acid resistance genes in Escherichia coli[J]. Molecular Microbiology, 2003, 48(3): 699-712.

        [53] HONG W Z, JIAO W W, HU J C, et al. Periplasmic protein HdeA exhibits chaperone-like activity exclusively within stomach pH range by transforming into disordered conformation[J]. The Journal of Biological Chemistry, 2005, 280(29): 27029-27034.

        [54] GARRISON M A, CROWHURST K A. NMR-monitored titration of acid-stress bacterial chaperone HdeA reveals that Asp and Glu chargeneutralization produces a loosened dimer structure in preparation for protein unfolding and chaperone activation[J]. Protein Science, 2014, 23(2): 167-178.

        [55] TAPLEY T L, KOERNER J L, BARGE M T, et al. Structural plasticity of an acid-activated chaperone allows promiscuous substrate binding[J]. Proceedings of the National Academy of Sciences, 2009, 106(14): 5557-5562.

        [56] WANG W J, RASMUSSEN T, HARDING A J, et al. Salt bridges regulate both dimer formation and monomeric flexibility in HdeB and may have a role in periplasmic chaperone function[J]. Journal of Molecular Biology, 2012, 415(3): 538-546.

        [57] 任潔, 趙明文, 姚玉峰. 沙門菌對(duì)酸壓力的應(yīng)答及其與毒力的關(guān)系[J].微生物學(xué)報(bào), 2014, 54(4): 367-375.

        [58] BROWN J L, ROSS T, MCMEEKIN T A, et al. Acid habituation of Escherichia coli and the potential role of cyclopropane fatty acids in low pH tolerance[J]. International Journal of Food Microbiology, 1997, 37(2/3): 163-173.

        [59] CHANG Y Y, CRONAN J E. Membrane cyclopropane fatty acid content is a major factor in acid resistance of Escherichia coli[J]. Molecular Microbiology, 1999, 33(2): 249-259.

        [60] DUFOURC E J, SMITH I C P, JARRELL H C. The role of cyclopropane moieties in the lipid properties of biological membranes: a deuterium NMR structural and dynamical approach[J]. Biochemistry, 1984, 23: 2300-2309.

        [61] IYER R, IVERSON T M, ACCARDI A, et al. A biological role for prokaryotic ClC chloride channels[J]. Nature, 2002, 419: 715-718.

        [62] IYER R, MILLER C. Acid resistance: a biological role for prokaryotic ClC chloride channels[J]. Biophysical Journal, 2002, 82(1): 12-13.

        [63] ACCARDI A, MILLER C. Secondary active transport mediated by a prokaryotic homologue of ClC Cl-channels[J]. Nature, 2004, 427: 803-807.

        [64] JENKINS D F, SCHULTZ J E, MATIN A. Starvation-in-duced cross protection against heat or H2O2challenge in Escherichia coli[J]. Journal of Bacteriology, 1988, 170: 3910-3914.

        [65] MAZZOTTA A S. Thermal inactivation of stationary-phase and acid-adapted Escherichia coli O157:H7,Salmonella, and Listeria monocytogenes in fruit[J]. Journal of Food Protection, 2001, 64(3): 315-320.

        [66] WANG G, DOYLE M P. Heat shock response enhances acid tolerance of Escherichia coli O157:H7[J]. Letters in Applied Microbiology Applied Microbiology, 1998, 26(1): 31-41.

        [67] ARNOLD K W, KASPAR C W. Starvation- and stationary-phaseinduced acid tolerance in Escherichia coli O157:H7[J]. Applied and Environmental Microbiology, 1995, 61(5): 2037-2039.

        [68] ELHANAFI D, LEENANON B, BANG W, et al. Impact of cold and cold-acid stress on post-stress tolerance and virulence factor expression of Escherichia coli O157:H7[J]. Journal of Food Protection, 2004, 67: 19-26.

        [69] CAMPBELL J, BANG W, ISONHOOD J, et al. Effects of salt, acid, and MSG on cold storage survival and subsequent acid tolerance of Eschrichia coli O157:H7[J]. Food Microbiology, 2004, 21(6): 727-735.

        [70] ABEE T, WOUTERS J A. Microbial stress response in minimal processing[J]. International Journal of Food Microbiology, 1999, 50(1/2): 65-91.

        Recent Progress in Molecular Mechanism of Acid Resistance in Escherichia coli

        CHEN Zhuozhu, KAN Jianquan, SHI Hui*
        (Laboratory of Quality and Safety Risk Assessment for Agro-products on Storage and Preservations (Chongqing), Ministry of Agriculture, Chongqing Key Laboratory of Produce Processing and Storage, College of Food Science, Southwest University, Chongqing 400715, China)

        Some strains of Escherichia coli are resistant to strong acid and can survive in acidic conditions, mainly because they have a variety of acid resistance mechanisms, including a glucose-repressed system, amino-acid-dependent system, chaperone proteins and systems for stabilizing membrane charge. Understanding the molecular mechanisms of acid resistance in E. coli can provide new insight into controlling contamination in the food processing industry, and play a positive role in clinical prevention and treatment of foodborne pathogens. In this paper, the molecular mechanisms of acid resistance in E. coli are reviewed.

        Escherichia coli; glucose-repressed; amino-acid-dependent; chaperone proteins; membrane charge; crossprotection

        TS201.3

        A

        1002-6630(2015)21-0273-06

        10.7506/spkx1002-6630-201521051

        2015-03-26

        國(guó)家自然科學(xué)基金青年科學(xué)基金項(xiàng)目(31401567);中央高?;究蒲袠I(yè)務(wù)費(fèi)專項(xiàng)資金項(xiàng)目(XDJK2014B020);

        西南大學(xué)博士啟動(dòng)資金項(xiàng)目(SWU113041)

        陳卓逐(1990—),男,碩士研究生,研究方向?yàn)槭称焚|(zhì)量與安全。E-mail:chen_zhuo_zhu@163.com

        *通信作者:石慧(1986—),女,講師,博士,研究方向?yàn)槭称焚|(zhì)量與安全。E-mail:shi_hui_1986@163.com

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