黃欽海,周志衡,雷毅雄,劉 群
(廣州醫(yī)科大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院,廣東廣州 510182)
鎘(Cadmium,Cd)是已被確認(rèn)的人類致癌物。鎘及其化合物是常見的工業(yè)毒物和環(huán)境污染物,長期暴露可引起腎臟、肝臟、前列腺、睪丸和肺臟等器官功能障礙,甚至導(dǎo)致腫瘤的發(fā)生。鎘的致癌作用機(jī)制十分復(fù)雜,盡管人們做了大量的研究,但至今未能完全闡明其分子致癌機(jī)制。研究顯示,氯化鎘可導(dǎo)致DNA損傷和引起損傷修復(fù)障礙[1]。本研究采用實(shí)時(shí)熒光PCR(QPCR)法分析在亞慢性氯化鎘(CdCl2)染毒大鼠模型及其誘發(fā)人支氣管上皮細(xì)胞系(16HBE)惡性轉(zhuǎn)化模型細(xì)胞中hMSH2 mRNA表達(dá)的規(guī)律,探討鎘的致癌機(jī)制。
1.1 染毒模型構(gòu)建
1.1.1 亞慢性氯化鎘染毒大鼠模型構(gòu)建(動物模型) 在急性毒性試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,用SPF級別SD大鼠32只按體重隨機(jī)分4組,3個(gè)CdCl2染毒組(高劑量 1.225 mg·kg-1、中劑量 0.612 mg·kg-1和低劑量 0.306 mg·kg-1)和 1個(gè)生理鹽水對照組(0.9%NaCl),每組8只大鼠,雌雄各半,腹腔注射,每天1次,每周5 d,連續(xù)14周。
1.1.2 氯化鎘誘導(dǎo)細(xì)胞惡性轉(zhuǎn)化模型構(gòu)建(細(xì)胞模型) 本課題組早期建立的氯化鎘(CdCl2)誘發(fā)人支氣管上皮(16HBE)細(xì)胞惡性轉(zhuǎn)化模型[2]:以MEM培養(yǎng)液[含10%(V/V)小牛血清]培養(yǎng)16HBE系細(xì)胞,于指數(shù)生長期加入終濃度15μmol·L-1的CdCl2,作用24 h,每隔12 d處理1次,共處理 10次,細(xì)胞培養(yǎng)至第35代,經(jīng)細(xì)胞形態(tài)學(xué)觀察,軟瓊脂集落分析及裸鼠成瘤試驗(yàn),證實(shí)CdCl2具有惡性轉(zhuǎn)化16HBE的作用。
1.2 細(xì)胞培養(yǎng) 16HBE細(xì)胞、氯化鎘惡性轉(zhuǎn)化16HBE細(xì)胞系第4、14、35代細(xì)胞、成瘤細(xì)胞(鎘惡性轉(zhuǎn)化16HBE 35代細(xì)胞接種裸鼠成瘤,分別以同代的無鎘處理的16HBE細(xì)胞(無鎘處理第4、14、35代細(xì)胞)為對照細(xì)胞,用含小牛血清10%(V/V)的MEM培養(yǎng)液,在37℃、5%CO2、飽和濕度環(huán)境的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
1.3 QRT-PCR技術(shù)檢測hMSH2的mRNA表達(dá)
1.3.1 引物設(shè)計(jì)與合成 引物參照文獻(xiàn)設(shè)計(jì),由上海生工公司合成,其序列如下:大鼠hMSH2上游引物為 5'- CAGCAGAGGTGTCCATTGTG -3',下游引物為5'-GCAGTTTCCAGCA TTTCAGC -3',大鼠內(nèi)參GAPDH上游引物為5'-GCACCGTCAAGGCTGAGAAC-3',下游引物為:5'-TGGTGAAGACGCCAGTGGA-3'。細(xì)胞模型hMSH2上游引物為 5'-CATCCAGGCATGCTTGTGTTGA -3',下游引物為5'-GCAGTCCACAATGGACACTTC-3',內(nèi)參β-Actin上游引物為5'-ACAGAG CCTCGCCTTTGCCGAT-3',下游引物 5'-CTTGCACATGCCGGAGCCGTT -3'。
1.3.2 總RNA提取與逆轉(zhuǎn)錄 于-80℃ 冰箱取出亞慢性氯化鎘染毒大鼠模型肺臟、肝臟和腎臟組織,液氮下研磨,移至1.5 mL無RNA酶EP管中,按Trizol試劑盒(GIBCO BRC)說明書的步驟提取總RNA(用紫外分光核酸蛋白分析儀測RNA的純度和濃度,用1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢查RNA的完整性)。取對數(shù)生長期各組氯化鎘惡性轉(zhuǎn)化模型細(xì)胞,每管加1 mL Trizol后按上面相同步驟提取和鑒定總RNA。按promega逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(A5001)說明書方法逆轉(zhuǎn)錄總RNA為cDNA。cDNA于-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.3.3 檢測hMSH2的mRNA表達(dá) 按promega GoTaq?QPCR master mix(A6001)試劑盒(說明書操作步驟,在ABI 7900 Real Time PCR反應(yīng)儀器上進(jìn)行PCR擴(kuò)增,擴(kuò)增條件:95℃10 min預(yù)變性;95℃15 s,60℃ 60 s共40個(gè)循環(huán)。根據(jù)△Ct=樣品Ct均值-內(nèi)參照Ct均值計(jì)算所得2-△△Ct即代表被檢樣品hMSH2基因mRNA的含量。
1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 采用SPSS17.0軟件處理系統(tǒng)對結(jié)果進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。hMSH2 mRNA的相對含量以±s表示,均通過正態(tài)性檢驗(yàn)。多組間的比較采用方差分析,組間兩兩比較采用LSD或SNK法,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 亞慢性CdCl2染毒大鼠模型中hMSH2 mRNA表達(dá)水平 結(jié)果顯示,與對照組(未染毒組)相比,肺臟和腎臟組織hMSH2 mRNA表達(dá)水平均存在顯著降低,高劑量組降低明顯,且呈隨染毒劑量升高而降低趨勢(P<0.05)。肝臟組織hMSH2 mRNA表達(dá)水平也呈降低趨勢,但未見顯著差異,見表1。
表1 亞慢性Cd Cl2染毒大鼠組織hMSH2 mRNA相對表達(dá)量(±s)
表1 亞慢性Cd Cl2染毒大鼠組織hMSH2 mRNA相對表達(dá)量(±s)
注:肺 F=5.572,腎 F=3.875,均 P <0.05;* 表示與對照組比較,P <0.05(LSD 檢驗(yàn))。
組別 動物/只 肺臟 肝臟 腎臟對照組8 1.06 ±0.39 1.04 ±0.36 1.11 ±0.52低劑量組 8 0.79 ±0.28* 0.95 ±0.46 0.97 ±0.14中劑量組 8 0.62 ±0.11* 0.85 ±0.30 0.81 ±0.27高劑量組 8 0.61 ±0.12* 0.66 ±0.13 0.60 ±0.20*
2.2 16HBE細(xì)胞Cd Cl2惡性轉(zhuǎn)化細(xì)胞模型中hMSH2 mRNA表達(dá)水平 結(jié)果表明,與對照組(未染毒組)16HBE細(xì)胞相比,惡性轉(zhuǎn)化組(染毒組)細(xì)胞hMSH2 mRNA表達(dá)水平顯著性降低,呈隨惡性轉(zhuǎn)化代數(shù)的增加而降低趨勢,第35代細(xì)胞和成瘤細(xì)胞顯著下降(P<0.05)。見圖1。
DNA 錯(cuò)配修復(fù)(mismatch repair gene,MMR)基因由一系列特異性修復(fù)DNA堿基錯(cuò)配的酶分子組成,具有修復(fù)DNA堿基錯(cuò)配,防止基因突變,維持基因穩(wěn)定的功能。一旦MMR基因產(chǎn)生突變和遺傳多態(tài)性,導(dǎo)致其表達(dá)和功能改變,降低甚至失去正常的錯(cuò)配修復(fù)能力,增加腫瘤發(fā)生的風(fēng)險(xiǎn)[3-6]。MMR包括 hMLH1、hMSH2、hPMS1、hPMS2、hMSH3、hMSH6等,近年來研究發(fā)現(xiàn)90%以上的突變發(fā)生于 hMLH1 和 hMSH2[7-9],進(jìn)而破壞細(xì)胞基因組的穩(wěn)定性,引起細(xì)胞異常增殖及分化,形成腫瘤發(fā)生發(fā)展的基礎(chǔ)因素[10]。研究表明hMSH2基因可通過誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡發(fā)揮腫瘤抑制功能[11]。因此,hMSH2基因的正常表達(dá)對維持其MMR功能有著重要意義,是維持基因穩(wěn)定性的分子基礎(chǔ)。
鎘已被確定為人類I類致癌物,其分子致癌機(jī)制十分復(fù)雜,至今未能充分闡明。hMSH2基因在鎘致機(jī)體組織損傷及致癌過程中的作用甚少報(bào)道,其作用機(jī)制至今未被完全闡明。腫瘤組織往往存在相關(guān)基因的表達(dá)異常[12],研究基因表達(dá)變化對尋找腫瘤標(biāo)志物和了解致癌機(jī)制具有重要意義。本研究利用CdCl2染毒模型,在大鼠和人16HBE細(xì)胞中分別研究hMSH2基因表達(dá)水平的變化。研究結(jié)果顯示,在亞慢性CdCl2染毒大鼠模型中,大鼠肺和腎臟組織hMSH2基因表達(dá)水平均呈隨染毒劑量的增加而下降趨勢,高劑量組下降尤為明顯(均P<0.05);細(xì)胞CdCl2染毒惡性轉(zhuǎn)化模型中,隨著轉(zhuǎn)化代數(shù)的增加,hMSH2基因表達(dá)水平也呈現(xiàn)降低趨勢,到第35代和成瘤細(xì)胞顯著降低(P<0.05)。說明CdCl2染毒模型中組織和細(xì)胞hMSH2 mRNA呈異常表達(dá),提示hMSH2基因異常表達(dá)可能與鎘的致癌作用有關(guān)。其作用機(jī)制尚未明確,有待進(jìn)一步研究。
[1]Candeias S,Pons B,Viau M,et al.Direct inhibition of excision/synthesis DNA repair activities by cadmium:analysis on dedicated biochips[J].Mutat Res,2010,694(1):53 -59.
[2]Lei YX,Wei L,Wang M,et al.Malignant transformation and abnormal expression of eukaryotic initiation factor during human bronchial epithelial cells induced by cadmium chloride[J].Biomed Environ Sci,2008,21(4):332 -338.
[3]Wang LE,Hu Z,Sturgis EM,et al.Reduced DNA repair capacity for removing tobacco carcinogen-induced DNA adducts contributes to risk of head and neck cancer but not tumor characteristics[J].Clin Cancer Res,2010,16(2):764 -774.
[4]Martin SA,Mccabe N,Mullarkey M,et al.DNA polymerases as potential therapeutic targets for cancers deficient in the DNA mismatch repair proteins MSH2or MLH1[J].Cancer Cell,2010,17(3):235-248.
[5]Limburg PJ,Harmsen WS,Chen HH.DNA mismatch repair gene alterations in a population based sample of young onset colorectal cancer patients.clinical gastroenterology and hepatology[J].Clin Gastroenterol Hepatol,2011,9(6):497 -520.
[6]Lord CJ,Ashworth A.The DNA damage response and cancer therapy[J].Nature,2012,481(7381):287 -294.
[7]Lynch PM.The hMSH2 and hMLH1 genes in hereditary nonpolyposis colorectal cancer[J].Surg Oncol Clin N Am,2009,18(4):611-624.
[8]Lee HJ,Jang YJ,Lee EJ,et al.The significance of mismatch repair genes in gastric cancer[J].Cancer Res Ther,2013,9(1):80 -83.
[9]Vergouwe F,Boutall A,Stupart D,et al.Mismatch repair deficiency in colorectal cancer patients in a low - incidence area[J].SAfr J Surg,2013,51(1):16 -21.
[10]宋穎韜,周曉燕,孫長生,等.錯(cuò)配修復(fù)蛋白hMSH2、hMLH1在涎腺粘液表皮樣癌中的表達(dá)[J].現(xiàn)代生物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2014,14(10):1839-1843.
[11]侯睿智,安治國,魏 君,等.大腸癌易感基因hMLH1、hMSH2的篩查[J].中國實(shí)驗(yàn)診斷學(xué),2012,16(1):49 -51.
[12]魏 巖,吳 強(qiáng).Twist-2在宮頸癌中的表達(dá)及意義[J].安徽醫(yī)藥,2014,18(10):1913 -1915.