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        云南半細(xì)毛羊毛囊干細(xì)胞凋亡研究

        2015-11-26 02:00:21呂春榮權(quán)國波吳國權(quán)洪瓊花
        中國草食動物科學(xué) 2015年6期
        關(guān)鍵詞:細(xì)毛羊傳代定量

        呂春榮,權(quán)國波,吳國權(quán),洪瓊花

        (云南省畜牧獸醫(yī)科學(xué)院,昆明 650224)

        云南半細(xì)毛羊毛囊干細(xì)胞凋亡研究

        呂春榮,權(quán)國波,吳國權(quán),洪瓊花

        (云南省畜牧獸醫(yī)科學(xué)院,昆明 650224)

        采用2種不同方法檢測云南半細(xì)毛羊毛囊干細(xì)胞(hair follicle stem cells,HFSCs)凋亡情況,為后續(xù)的誘導(dǎo)分化研究奠定基礎(chǔ)。利用凱基TUNEL-細(xì)胞凋亡原位檢測試劑盒和AnnexinV-EGFP/PI標(biāo)記結(jié)合流式細(xì)胞儀檢測HFSCs凋亡。結(jié)果:凱基TUNEL-細(xì)胞凋亡原位檢測試劑盒檢測表明,第2代細(xì)胞凋亡率6.0%,第6代細(xì)胞凋亡率6.5%;AnnexinV-EGFP/PI標(biāo)記結(jié)合流式細(xì)胞儀檢測表明,第2代細(xì)胞凋亡率0.24%,第6代細(xì)胞凋亡率0.80%。說明云南半細(xì)毛羊HFSCs細(xì)胞生長狀態(tài)很好。隨著傳代次數(shù)的增加,細(xì)胞凋亡率有所上升。

        云南半細(xì)毛羊;HFSCs;細(xì)胞凋亡

        細(xì)胞凋亡(apoptosis)是指為維持內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定,由基因控制的細(xì)胞自主、有序的死亡,即細(xì)胞程序性死亡[1]。它與細(xì)胞壞死不同,細(xì)胞凋亡不是一件被動的過程,而是主動過程,它涉及一系列基因的激活、表達(dá)以及調(diào)控等的作用,它并不是病理?xiàng)l件下自體損傷的一種現(xiàn)象,而是為更好地適應(yīng)生存環(huán)境而主動爭取的一種死亡過程。細(xì)胞凋亡和細(xì)胞增殖都是生命的基本現(xiàn)象,是維持體內(nèi)細(xì)胞數(shù)量動態(tài)平衡的基本措施。細(xì)胞凋亡貫穿于機(jī)體的整個生命周期,完成新舊細(xì)胞的生死交替,它對機(jī)體的發(fā)育存活及維持正常生理功能都有著重要意義。另外,細(xì)胞凋亡還參與某些疾病的發(fā)生、清除損傷、轉(zhuǎn)化細(xì)胞、防止癌變等過程。因此,研究細(xì)胞凋亡及其機(jī)理具有重要的理論及實(shí)踐意義。

        使用碘化丙啶(PI)染色檢測DNA含量是最早出現(xiàn)的凋亡定量檢測方法[2]。進(jìn)入90年代,檢測DNA斷裂點(diǎn)的TUNEL(terminal deoxylnucleotidyl transferase mediated-dUTP nick end labeling)技術(shù)成為凋亡定量檢測的主流。1995年Vermes首次使用熒光素標(biāo)記的膜聯(lián)蛋白V(FITC-Annexin V)聯(lián)合PI染色雙參數(shù)技術(shù)定量檢測細(xì)胞凋亡[3]。

        1 材料與方法

        1.1 細(xì)胞

        來自于云南省畜牧獸醫(yī)科學(xué)院草食家畜研究所2012年冷凍保存的云南半細(xì)毛羊HFSCs 8支。

        1.2 方法

        1.2.1 凱基TUNEL-細(xì)胞凋亡原位檢測試劑盒操作步驟

        1.2.1.1 細(xì)胞樣本的準(zhǔn)備 A.自然晾干的細(xì)胞樣本(細(xì)胞涂片或爬片),4%的多聚甲醛室溫固定30 min,PBS緩沖液(pH值7.2~7.4)清洗3次,每次5 min。B.在封閉液中室溫封閉10 min,PBS緩沖液(pH值7.2~7.4)清洗3次,每次5 min。C.在通透液中,冰上(2~8℃)促滲2 min。

        1.2.1.2 陽性對照及陰性對照的準(zhǔn)備 A.陽性對照樣本的準(zhǔn)備:細(xì)胞樣本在TritonX-100通透液處理、PBS清洗后,再加入100 μL DNaseI反應(yīng)液,室溫37℃處理10~30 min,其余步驟均相同。B.陰性對照樣本的準(zhǔn)備:在標(biāo)記反應(yīng)制備TdT酶反應(yīng)液時,不添加TdT酶,其余步驟均相同。

        1.2.1.3 標(biāo)記和顯色反應(yīng) A.預(yù)處理好的樣本PBS漂洗2次,樣本周圍用吸水紙吸干。B.每個樣本滴加50 mL TdT酶反應(yīng)液,加蓋玻片37℃避光濕潤反應(yīng)60 min,PBS緩沖液(pH值7.2~7.4)清洗3次,每次5 min,樣本周圍用吸水紙吸干。C.滴加50 mLStreptavidin-HRP工作液,加蓋玻片37℃避光濕潤反應(yīng)60 min,PBS緩沖液(pH值7.2~7.4)清洗3次,每次5 min。D.滴加50~100 μLDAB工作液,室溫顯色反應(yīng)10 min,PBS緩沖液(pH值7.2~7.4)清洗3次,每次5 min。

        1.2.1.4 蘇木素復(fù)染 蘇木素復(fù)染后,漂洗脫水、觀察。

        1.2.2 AnnexinV-EGFP/PI標(biāo)記結(jié)合流式細(xì)胞儀檢測HFSCs凋亡操作步驟 A.將單細(xì)胞懸液加入2 mL圓底離心管中離心,1 500 r/min,5 min,棄上清液。B.加入PBS1 mL離心洗滌2次,棄上清。C.加入500 μL的Binding Buffer懸浮細(xì)胞。D.加入5 μL AnnexinV-FITC混勻后,加入5 μLPropidium Iodide,陽性對照組分別加入FITC和PI。E.室溫避光孵育5~310 min。F.在1 h內(nèi)進(jìn)行流式細(xì)胞術(shù)定量檢測。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 凱基TUNEL-細(xì)胞凋亡原位檢測試劑盒檢測結(jié)果

        在顯微鏡下,隨機(jī)觀察統(tǒng)計3個視野,每個視野100~200個細(xì)胞,計算細(xì)胞凋亡率:

        細(xì)胞凋亡檢測結(jié)果(如圖1所示),圖1B中白色箭頭所示為凋亡細(xì)胞,細(xì)胞核呈棕褐色的Tunel陽性細(xì)胞;通過與細(xì)胞凋亡的陽性對照與陰性對照比較可得出:云南半細(xì)毛羊毛囊干細(xì)胞凋亡的細(xì)胞很少,通過計算,第2代細(xì)胞凋亡率6.0%,第6代細(xì)胞凋亡率6.5%。

        圖1 第6代HFSCs凋亡檢測(100×)(白色箭頭示陽性細(xì)胞,黑色箭頭示陰性細(xì)胞)

        2.2 AnnexinV-EGFP/PI標(biāo)記結(jié)合流式細(xì)胞儀檢測HFSCs凋亡檢測結(jié)果

        分別收集第2代、第6代云南半細(xì)毛羊HFSCs,用AnnexinV-EGFP/PI標(biāo)記結(jié)合流式細(xì)胞儀檢測HFSCs凋亡結(jié)果,進(jìn)行凋亡分析。第2代細(xì)胞凋亡率0.24%,第6代細(xì)胞凋亡率0.80%,說明隨著培養(yǎng)代次的增加,細(xì)胞凋亡率有所上升。見圖2。結(jié)果判定:I象限(EGFP-/PI-)為正常細(xì)胞;II象限(EGFP-/PI+)為細(xì)胞處理過程中機(jī)械性損傷造成壞死的細(xì)胞;III象限(EGFP+/PI+)為晚期凋亡細(xì)胞及部分壞死細(xì)胞;IV象限(EGFP+/PI-)為早期凋亡細(xì)胞。

        圖2 HFSCs流式分析

        3 討論

        3.1 細(xì)胞培養(yǎng)對細(xì)胞凋亡檢測的影響

        細(xì)胞生長匯合至瓶底80%~90%時需進(jìn)行傳代培養(yǎng)。把握傳代的時機(jī)與再培養(yǎng)的密度對于大多數(shù)生命力較為脆弱的體外培養(yǎng)細(xì)胞至關(guān)重要。傳代過早,細(xì)胞接種密度低,相互間在形態(tài)和機(jī)能上的依存關(guān)系減弱,使細(xì)胞不易培養(yǎng);傳代過晚,由于培養(yǎng)液中營養(yǎng)消耗過盡、代謝產(chǎn)物積累、pH值降低而引起細(xì)胞中毒;以及細(xì)胞間接觸抑制和細(xì)胞形態(tài)改變等,嚴(yán)重時細(xì)胞匯合成片從培養(yǎng)底壁脫落死亡。云南半細(xì)毛羊HFSCs在培養(yǎng)箱(37℃,5%CO2,飽和濕度)中培養(yǎng)。當(dāng)細(xì)胞長至80%時,將培養(yǎng)液棄去,PBS清洗3次,加入0.125%胰酶(含0.01%EDTA)在37℃消化5~8 min后,倒置顯微鏡下觀察細(xì)胞開始變圓時,加細(xì)胞培養(yǎng)液終止消化,反復(fù)吹打細(xì)胞使其完全脫落,以1∶2的比例進(jìn)行傳代。通過凱基TUNEL-細(xì)胞凋亡原位檢測試劑盒檢測結(jié)果表明,云南半細(xì)毛羊毛囊干細(xì)胞凋亡的細(xì)胞很少,通過計算,第2代細(xì)胞凋亡率6.0%;第6代細(xì)胞凋亡率6.5%。AnnexinV-EGFP/PI標(biāo)記結(jié)合流式細(xì)胞儀檢測結(jié)果表明,第2代細(xì)胞凋亡率0.24%,第6代細(xì)胞凋亡率0.80%。通過2種不同凋亡檢測方法研究發(fā)現(xiàn):隨著傳代次數(shù)的增加,細(xì)胞凋亡率均有所上升。

        3.2 不同方法對細(xì)胞凋亡的影響

        目前國內(nèi)外最為常用的凋亡定量檢測方法是檢測DNA斷裂點(diǎn)的TUNEL法。在TDT作用下將FITC-dUTP摻入DNA裂點(diǎn)的3′-OH端上,根據(jù)其摻入量的多少計算凋亡細(xì)胞百分比。由于DNA斷裂發(fā)生在凋亡早期,因此該法可檢出早期凋亡細(xì)胞,具有較高靈敏性。但該法最大缺點(diǎn)是壞死細(xì)胞亦呈現(xiàn)TUNEL反應(yīng)陽性,使其特異性降低[4]。本研究也證實(shí)了這點(diǎn),凱基TUNEL-細(xì)胞凋亡原位檢測試劑盒檢測云南半細(xì)毛羊HFSCs凋亡,通過計算,第2代細(xì)胞凋亡率6.0%,第6代細(xì)胞凋亡率6.5%。明顯高于AnnexinV-EGFP/PI標(biāo)記結(jié)合流式細(xì)胞儀檢測結(jié)果。

        凋亡定量檢測常需借助流式細(xì)胞檢查。流式細(xì)胞術(shù)(flowcytometry)以其方便、快速、靈敏、準(zhǔn)確的優(yōu)點(diǎn),被廣泛應(yīng)用于細(xì)胞凋亡的檢測[5]。最早出現(xiàn)且較為常用的流式細(xì)胞凋亡定量檢測技術(shù)是PI染色法。但該法操作麻煩,并存有高漏檢率等,現(xiàn)在很少有人使用。1992年Fadok等[6]報道在細(xì)胞凋亡早期位于細(xì)胞膜內(nèi)側(cè)的磷酯酰絲氨酸(PS)遷移至細(xì)胞外側(cè)。由于壞死細(xì)胞PS亦暴露于外表使Annexin V結(jié)合陽性,因此必須同時采用PI這一壞死細(xì)胞染色陽性的DNA染料將壞死細(xì)胞區(qū)分出來。1995年Vermes等[3]首次使用熒光素標(biāo)記的膜聯(lián)蛋白V(FITC-Annexin V)聯(lián)合PI染色雙參數(shù)技術(shù)定量檢測凋亡。與PI法檢測凋亡不同的是該法不需要固定細(xì)胞,因此凋亡細(xì)胞PI低染。國內(nèi)學(xué)者鄭俊年等[7]使用PI染色、Annexin V PI、TUNEL 3種方法凋亡檢出率分別為27.19%、32.28%、50.17%,兩兩之間均有顯著差異(P<0.01)。本研究中凱基TUNEL-細(xì)胞凋亡原位檢測試劑盒檢測云南半細(xì)毛羊HFSCs凋亡,通過計算,第2代細(xì)胞凋亡率6.0%,第6代細(xì)胞凋亡率6.5%。明顯高于AnnexinV-EGFP/PI標(biāo)記結(jié)合流式細(xì)胞儀檢測結(jié)果(第2代細(xì)胞凋亡率0.24%,第6代細(xì)胞凋亡率0.80%)。

        除以上方法外,還有不常用的方法。4,6-聯(lián)脒-2苯基吲哚(4,6-diamidino-2-phenyiindole,DAPI)是DNA特異性的熒光染料,與DNA結(jié)合是非嵌入式的,主要結(jié)合在DNA的A-T堿基區(qū),使用時無需用RNaseA處理細(xì)胞,但由于配置紫外激光源的流式細(xì)胞儀非常昂貴,大多數(shù)實(shí)驗(yàn)室都沒有配備。因此,以DAPI標(biāo)記DNA分析細(xì)胞周期的方法尚未成為常規(guī)檢測方法被普遍采納,也沒有簡單的標(biāo)準(zhǔn)實(shí)驗(yàn)流程可供參考[8]。

        近年來有關(guān)凋亡信號轉(zhuǎn)導(dǎo)、基因調(diào)控等方面的研究已取得重大進(jìn)展,但作為所有研究基礎(chǔ)的凋亡定量檢測技術(shù)卻進(jìn)展不大。選用何種凋亡檢測技術(shù)已成為研究的關(guān)鍵。

        [1] Majno,Joris G J.Apoptosis,oncosis and necrosis,An overview of cell death[J].AmJ Pathol,1995,146:3-16.

        [2] Nicoletti I,Migliorati G,Pagliacci M C.A rapid and simple method for measuring thymocyte apoptosis by propidium iodide staining and flow cytometry[J].J Immunol Methods,1991,139:271.

        [3] Vermes I,Haanen C,Steffens-Nakken H,et al.A novel assay for apoptosis.Flow cytometry detection of phosphatidylserine expression on early apoptosis cells using fluorescein labeled Annexin V[J].J Im munol Methods,1995;184:39.

        [4] Gorczyca W,Gong J P,Darzynkiewicz Z.Detection of DNA strand breaks in individual apoptotic cells by the in situ terminal deoxymucleotidyl transferase and nick translation assay[J].Cancer Res,1993,53:19-45.

        [5] Lacombe F,Belloc F.Flowcytometrystudyofcell cycle,apoptosis and drugresistance in acute leukemia[J].Hematol Cell Ther,1996,38(6):495.

        [6] FadokV A,Voelker D R,Campbell P A,et al.Exposure of phosphatidylserine on the surface of apoptotic lymphocytes triggers specific recognition and removal by macrophage[J].J Immuol,1992,148:2207.

        [7] 鄭駿年,謝叔良,陳家存,等.流式細(xì)胞術(shù)定量檢測細(xì)胞凋亡3種方法的比較研究[J].免疫學(xué)技術(shù)與方法,1999,10(15):467-469.

        [8] 劉錫娟,丁慧榮,張宏.用DAPI和Hoechst33342染色法檢測DNA的流式細(xì)胞方法探討[J].北京大學(xué)學(xué)報:醫(yī)學(xué)版,2010,42(4):480-484.

        Study on Apoptosis of Hair Follicle Stem Cells in Yunnan Semi-fine Wool Sheep

        LvChunrong,Quan Guobo,HongQionghua,et al
        (Yunnan Institute ofAnimal Science and Veterinary,Kunming 650224,China)

        The apoptosis ofhair follicle stem cells(HFSCs)in Yunnan semi-fine wool sheep were detected by two different methods in order tocarryout the subsequent research about induction and differentiation ofHFSCs.The TUNEL-Cell Apoptosis in situ Detection Kit was used todetect apoptosis ofHFSCs.The combination of the AnnexinV-EGFP/PI staining and flowcytometry was used toobserve earlyapotosis occurringin HFSCs.The results fromthe TUNEL-Cell Apoptosis in situ Detection Kit indicated that the frequency of the apoptotic cells in the second generation was 6.0%.The frequency of the apoptotic cells in the sixthgeneration was 6.5%.The data from AnnexinV-EGFP/PI staining showed that the apoptotic rate of the HFSCs in the second gerenation was 0.24%;the apoptotic rate of the HFSCs in the sixth generation was 0.80%.It was concluded that the growth state of HFSCs in Yunnan semi-fine wool sheep was excellent.However,the frequency of apoptotic cells in HFSCs showed a steady increase with prolongingofthe passage numbers.

        Yunnan semi-fine wool sheep;hair follicle stemcell;apoptosis

        S826

        A

        2095-3887(2015)06-0006-03

        10.3969/j.issn.2095-3887.2015.06.002

        2015-10-17

        國家現(xiàn)代農(nóng)業(yè)產(chǎn)業(yè)技術(shù)體系建設(shè)(CARS-40);云南省應(yīng)用基礎(chǔ)研究青年項(xiàng)目(2012FD083)

        呂春榮(1982-),女,助理研究員,碩士。

        洪瓊花(1968-),女,白族,研究員,碩士,主要從事綿羊、山羊的育種和高效繁殖新技術(shù)研究。

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