亚洲免费av电影一区二区三区,日韩爱爱视频,51精品视频一区二区三区,91视频爱爱,日韩欧美在线播放视频,中文字幕少妇AV,亚洲电影中文字幕,久久久久亚洲av成人网址,久久综合视频网站,国产在线不卡免费播放

        ?

        組胺及組胺受體1在大鼠牙周炎發(fā)病中表達(dá)差異的研究

        2015-11-21 10:02:39馮小倩張慧宇馮曉丹譚穎徽
        牙體牙髓牙周病學(xué)雜志 2015年1期
        關(guān)鍵詞:齦溝牙周組織組胺

        馮小倩, 張 綱, 張慧宇, 馮曉丹, 張 萍, 譚穎徽

        (第三軍醫(yī)大學(xué)附屬新橋醫(yī)院口腔科, 重慶 400037)

        組胺及組胺受體1在大鼠牙周炎發(fā)病中表達(dá)差異的研究

        馮小倩, 張 綱, 張慧宇, 馮曉丹, 張 萍, 譚穎徽

        (第三軍醫(yī)大學(xué)附屬新橋醫(yī)院口腔科, 重慶 400037)

        目的: 研究組胺及組胺受體1(HR1)在牙周炎發(fā)病機(jī)制中的作用。方法:將40只雄性SD大鼠隨機(jī)分為實(shí)驗(yàn)組和對照組(每組20只),其中實(shí)驗(yàn)組采用正畸絲結(jié)扎法建立牙周炎模型,對照組不作任何處理;建模8周后,分別采用ELISA法檢測各組齦溝液中組胺含量,熒光定量PCR法檢測各組牙齦組織中HR1 mRNA的表達(dá)水平。結(jié)果:牙周炎組齦溝液中的組胺濃度(35.47± 3.908)μg/L高于正常對照組(19.77± 3.832)μg/L(P<0.05);牙周炎組牙齦組織中的HR1- mRNA表達(dá)水平低于正常對照組(P<0.05)。結(jié)論:組胺及HR1對牙周炎的發(fā)病均有一定調(diào)控作用。

        牙周炎; 大鼠; 組胺; 組胺受體Ⅰ(HR1)

        [DOI] 10.15956/j.cnki.chin.j.conserv.dent.2015.01.003

        [Chinese Journal of Conservative Dentistry,2015,25(1):15]

        牙周炎是由牙周致病菌導(dǎo)致牙周組織破壞的慢性感染性疾病,其特點(diǎn)是致病菌及其產(chǎn)物如內(nèi)毒素(LPS)直接破壞,以及免疫細(xì)胞與促炎細(xì)胞因子相互作用而造成牙周支持組織的喪失[1]。在此過程中釋放多種炎癥介質(zhì)可通過相互作用而加重牙周組織的破壞,部分炎性介質(zhì)還可促進(jìn)破骨細(xì)胞的活性,加重骨吸收[2]。組胺是一種以無活性結(jié)合型存在于肥大細(xì)胞和嗜堿性粒細(xì)胞顆粒中的自體活性物質(zhì),在體內(nèi)由組氨酸脫羧基而成,具有影響多種細(xì)胞反應(yīng)的作用,包括過敏反應(yīng),炎性反應(yīng)等。最新研究認(rèn)為,組胺是免疫反應(yīng)中重要的調(diào)控者[3]。體內(nèi)存在的多種細(xì)胞因子均參與促進(jìn)組胺的合成。如TNF- α、IL- 1可與人粒細(xì)胞-巨噬細(xì)胞集落刺激因子(GM- CSF)協(xié)同誘導(dǎo)嗜堿粒細(xì)胞前驅(qū)細(xì)胞合成組胺;LPS可通過刺激巨噬細(xì)胞而使其合成組胺[4];細(xì)胞因子IL- 3能與LPS協(xié)同促進(jìn)巨噬細(xì)胞合成組胺[5]。組胺通過脫顆?,F(xiàn)象由肥大細(xì)胞和嗜堿性粒細(xì)胞釋放并與組胺受體結(jié)合從而產(chǎn)生生物學(xué)效應(yīng),使機(jī)體發(fā)生炎癥反應(yīng)。因此,研究組胺(Histamine)和組胺受體(Histamine receptor, HR)在機(jī)體應(yīng)答炎癥反應(yīng)中的調(diào)控機(jī)制,對于牙周炎進(jìn)程的診斷與治療具有重要意義。本研究通過建立大鼠牙周炎模型并觀察其牙周組織病理變化,同時(shí)檢測齦溝液中組胺表達(dá)水平的改變以及牙齦組織中HR1-mRNA含量表達(dá)的差異,初步探討組胺及其受體在牙周炎癥中的作用。

        1 材料和方法

        1.1 主要材料和儀器

        SD大鼠(第三軍醫(yī)大學(xué)大坪醫(yī)院實(shí)驗(yàn)動物中心提供,所涉及的動物實(shí)驗(yàn)均經(jīng)第三軍醫(yī)大學(xué)實(shí)驗(yàn)動物倫理委員會許可);戊巴比妥鈉(第三軍醫(yī)大學(xué)新橋醫(yī)院中心實(shí)驗(yàn)室提供);大鼠組胺檢測試劑盒(RND公司,美國);酶標(biāo)儀( Bio- Rad 5.0, 美國);AX80自動研究級系統(tǒng)顯微鏡( Olympus公司,日本);mRNA提取試劑盒、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、熒光實(shí)時(shí)定量PCR試劑盒(TaKaRa, 日本)。

        1.2 方法

        1.2.1 牙周炎動物模型的建立

        取健康雄性SD大鼠40只,體質(zhì)量(220±10)g,于室溫下適應(yīng)性飼養(yǎng)(普通飼料喂養(yǎng))4 d后,將其隨機(jī)分為實(shí)驗(yàn)組和對照組(n=20)。其中實(shí)驗(yàn)組參照Achong等[6]報(bào)道的方法及標(biāo)準(zhǔn)建立大鼠牙周炎模型(采用正畸結(jié)扎絲結(jié)扎右側(cè)上頜第一磨牙頸部,并配合Keyes’, sdiet2000牙周炎食譜喂養(yǎng));對照組不作任何處理,在相同環(huán)境下普通飼料喂養(yǎng)。建模期間定期(每周1次)觀察各大鼠的牙周組織變化情況以及結(jié)扎情況,若結(jié)扎絲脫落或移位則重新結(jié)扎。

        1.2.2 常規(guī)組織學(xué)觀察

        建模8周后分別從每組中各隨機(jī)抽取10只大鼠,用40 g/L多聚甲醛液心內(nèi)灌注處死后取其右側(cè)上頜第一磨牙及牙周組織;分別用40 g/L多聚甲醛液再次固定、EDTA液脫鈣2周后,常規(guī)脫水、包埋、制作石蠟切片,HE染色觀察結(jié)合上皮、溝內(nèi)上皮、牙齦上皮、上皮下炎細(xì)胞浸潤情況。

        1.2.3 齦溝液中組胺含量的測定

        組織學(xué)觀察確定牙周炎模型建立成功后,取各組所余的另10只大鼠,用無菌干棉球擦干各大鼠右側(cè)上頜第一磨牙的牙面并隔濕;然后將3個(gè)已稱量的Whatman40號濾紙條(2 mm×20 mm)分別插入各取樣牙的頰側(cè)近中、中央及遠(yuǎn)中3 個(gè)位點(diǎn)的牙周袋內(nèi), 直至遇輕微阻力為止, 30 s后取出合并放入一個(gè)微離心管中(若有血液和唾液污染,則棄置重取);再次稱重并按以下公式計(jì)算所取齦溝液的重量:齦溝液重量=(提取齦溝液后3個(gè)濾紙條+ Ep管)的重量- (取樣前3個(gè)濾紙條+ Ep 管)的重量。所有樣本均置于-70 ℃下保存,檢測時(shí)室溫放置1 h后,放入加有0.5 mL PBS緩沖液洗脫離心10 min ( 3 000 r/min), 取上清液;然后按大鼠組胺試劑盒說明檢測各樣本450 nm波長處的吸光度值,并以組胺標(biāo)準(zhǔn)品系列濃度為X軸,對應(yīng)的450 nm波長吸光度值為Y軸,在CurveExpert 1.4軟件中選擇擬合度最好的標(biāo)準(zhǔn)曲線方程計(jì)算各個(gè)樣品中組胺的濃度。

        1.2.4 熒光定量PCR檢測牙齦組織中HR1- mRNA的表達(dá)

        齦溝液取樣結(jié)束后,脫頸處死各組大鼠并取其唇頰側(cè)牙齦組織, 吸干血跡和唾液后稱重, 加入三蒸水配制的生理鹽水制成10%組織勻漿;5 ℃、4 000 r/min 離心10 min, 取上清液置-20 ℃凍存待測。取RNAlater中保存的組織樣本,液氮冷凍下研磨后加入Trizol勻漿液裂解細(xì)胞,并嚴(yán)格按照Trizol說明書提取總RNA;分別經(jīng)微量分光光度計(jì)和10 g/L瓊脂糖凝膠電泳檢測確定A260/280在1.8~2.0范圍內(nèi)(RNA完整)后,取1 μg RNA按逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書合成cDNA。然后以稀釋3倍的cDNA為模板,GAPDH為內(nèi)參照,用熒光定量PCR儀測定各樣本中HR1- mRNA表達(dá)情況。所用引物用primer3專業(yè)引物設(shè)計(jì)軟件進(jìn)行設(shè)計(jì),并由invitrogen公司合成,各引物序列如下:HR1- mRNA:上游引物5c- GTGGGCATAAGAAACC- 3c;下游引物5c- TCAAGCGGGAAGCAGTAG- 3c,產(chǎn)物長度191 bp;GAPDH: 上游引物5c- TCACCAACTGGGACGACA- 3c,下游引物5c- GCATACAGGGACAGCACA- 3c,產(chǎn)物長度206 bp。

        反應(yīng)體系共25 μL,分別為:SYBR Premix EX Taq(TaKaRa公司)12.5 μL、F- primer(10 pmol/lxL)0.5 μL, R- prime(10 pmol/lxL )0.5 μL,cDNA 1 μL,dd H2O補(bǔ)至25 μL。反應(yīng)條件為:95 ℃ 5 min;95 ℃ 5 sec,60 ℃ 30 sec,40 cycles。反應(yīng)結(jié)束儀器自動生成循環(huán)閾值(cycle threshold,Ct值)后,用HR1- mRNA與內(nèi)參基因GAPDH的Ct值差值(△Ct)表示HR1- mRNA相對含量。

        1.2.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

        2 結(jié)果

        2.1 臨床大體觀察

        建模8周后,對照組牙周組織肉眼觀察無明顯變化,牙周炎組牙周組織有中度炎癥,牙齦紅腫光亮,可探及牙周袋,BOP(+)。

        2.2 組織學(xué)觀察

        建模8周后組織學(xué)觀察顯示,牙周炎組結(jié)合上皮向根方退縮并形成牙周袋,齦溝上皮變性,上皮及固有層可見中等量炎性細(xì)胞浸潤,牙周膜間隙略增寬;對照組無明顯炎癥反應(yīng),但牙周膜間隙未見異常;牙齦結(jié)合上皮為無角化的鱗狀上皮,無上皮釘突,牙周膜排列一致;牙槽骨表面光滑,未見破骨細(xì)胞和骨陷窩形成(圖1~2)。

        正常對照組 牙周炎組 正常對照組 牙周炎組

        圖1 建模8周時(shí)各組牙齦組織形態(tài)(HE, ×100) 圖2 建模8周時(shí)各組牙周組織形態(tài)(HE, ×400)

        2.3 各組齦溝液中組胺含量比較

        實(shí)驗(yàn)8周時(shí),牙周炎組齦溝液中的組胺含量明顯高于正常對照組(P<0.05)(表1)。

        2.4 各組牙齦組織中HR1- mRNA含量比較

        實(shí)驗(yàn)8周時(shí),牙周炎組牙齦組織中的HR1- mRNA含量僅為正常對照組的1/2,兩者相比差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(圖3)。

        表1 各組大鼠齦溝液中組胺含量比較 ±s)

        *與對照組相比P<0.05

        圖3 各組牙齦組織中HR1- mRNA含量比較

        3 討論

        組胺可由肥大細(xì)胞、嗜堿性粒細(xì)胞、嗜鉻細(xì)胞、血小板、樹突狀細(xì)胞以及T細(xì)胞等多種細(xì)胞生成,對機(jī)體的多種生理機(jī)能(包括細(xì)胞的增殖、分化、造血過程、胚胎發(fā)育、組織再生以及傷口愈合等)均有一定的影響。在不同微生物源性感染中,組胺廣泛存在于各種炎癥以及感染性疾病患者的局部組織中,具有正、負(fù)雙向調(diào)控作用細(xì)胞免疫反應(yīng)的功能[7-13]。在炎癥早期階段,局部組織中可以分離出組胺,表明組胺參與了早期炎癥反應(yīng),并可促進(jìn)炎癥發(fā)展[14]。組胺的通路活化有賴于其相應(yīng)的4個(gè)受體,按被發(fā)現(xiàn)順序分別命名為:HR1、HR2、HR3、HR4。HRs屬G蛋白偶聯(lián)受體(G- protein-coupled receptors,GPCRs)家族成員,與通過偶聯(lián)激活特異性G蛋白而進(jìn)行信號轉(zhuǎn)導(dǎo)。組胺-HR1通路需在組胺脫羧酶的作用下激活,有研究證實(shí)先天缺乏組胺脫羧酶大鼠的骨組織中破骨細(xì)胞生成減少,并只有少量的破骨細(xì)胞[15],說明組胺與破骨細(xì)胞的生長以及骨組織損傷關(guān)系密切。不同組胺受體通路的功能由4個(gè)不同的特定組胺受體亞型所介導(dǎo),其中HR1被認(rèn)為是自身免疫性疾病的關(guān)鍵分子,表達(dá)于Th1細(xì)胞,具有調(diào)控組胺致敏的作用。因此,本實(shí)驗(yàn)通過建立大鼠牙周炎模型,并在牙周炎病理?xiàng)l件下檢測了齦溝液中組胺的表達(dá)量。結(jié)果顯示,牙周炎組齦溝液中組胺水平明顯高于正常對照組(P<0.05);暗示,組胺表達(dá)的升高與牙周病的病程呈正相關(guān)性,并說明在慢性炎癥的刺激中可能持續(xù)存在細(xì)胞脫顆粒現(xiàn)象,從而導(dǎo)致大量組胺的產(chǎn)生,加重了組織對炎癥反應(yīng)的應(yīng)答。

        另外,Ma RZ研究發(fā)現(xiàn),HR1通過依賴IFN- γ分泌增加從而促使Th1細(xì)胞的應(yīng)答,在對組織的破壞損傷作用中扮演重要角色[16]。本研究中發(fā)現(xiàn),實(shí)驗(yàn)組牙齦組織中的HR1- mRNA表達(dá)水平明顯低于正常對照組(P<0.05),進(jìn)一步證實(shí)組胺及HR1通路在牙周炎的進(jìn)展中具有重要作用。有研究發(fā)現(xiàn),一定程度的炎癥條件下,由肥大細(xì)胞合成和分泌的組胺、肝素、類胰蛋白酶、細(xì)胞因子等能夠刺激成纖維細(xì)胞增殖并形成胞外基質(zhì)積聚,從而使組織纖維化[17]。另外,組胺的過度增加還會加重TNF- α、IL- 1、LPS對牙齦成纖維細(xì)胞的炎癥刺激,并增強(qiáng)局部組織的免疫反應(yīng),從而進(jìn)一步加重了牙周組織的破壞[18]。組胺可通過刺激牙齦成纖維細(xì)胞分泌細(xì)胞因子、前列腺素,使IL- 2、IL- 4、PGE2表達(dá)升高[18-19]。其中PGE2是一種炎癥介質(zhì)和強(qiáng)效促進(jìn)骨吸收的刺激因子,能夠加速破骨細(xì)胞的形成、增強(qiáng)破骨細(xì)胞前體的融合、抑制鈣化,從而促進(jìn)骨的吸收[20-21]。組胺參與了機(jī)體大多數(shù)免疫及炎癥的生理、病理反應(yīng)[7],在免疫功能中起著潛在的調(diào)節(jié)作用[22]。本結(jié)果顯示,牙周炎組齦溝液中組胺的含量明顯增加,而HR1表達(dá)明顯下降,暗示了組胺-HR1通路在牙周炎癥中的重要調(diào)控作用,即當(dāng)炎癥發(fā)展到一定程度時(shí),HR1的下降使組胺-HR1通路水平下降,并形成負(fù)向調(diào)節(jié),從而可保護(hù)組織免受炎癥中因組胺的不斷增加而產(chǎn)生的進(jìn)一步破壞。相關(guān)研究也表明,HR2拮抗劑在兔模型中可抑制牙周炎,并能減少骨吸收的形成[23]。有研究發(fā)現(xiàn),HR1的活化還可導(dǎo)致氣道及血管平滑肌細(xì)胞的收縮、增強(qiáng)血管內(nèi)皮細(xì)胞的通透性;并促進(jìn)相關(guān)細(xì)胞合成前列腺環(huán)素(prostacyclin)以及血小板激活因子(plateletactivating factor);而HR2通路則主要對血管、子宮以及氣道平滑肌細(xì)胞產(chǎn)生舒張作用;在一定情況下,可通過激活HR1通路以達(dá)到對HR2通路的雙向調(diào)節(jié)作用[24-25]。

        Masahiro等證實(shí),運(yùn)用HR1拮抗劑可以抑制組胺誘導(dǎo)的集落刺激因子、IL- 6和IL- 8的分泌,并能拮抗組胺介導(dǎo)的Ca2+依賴的NF- kB通路[26]。目前,在炎癥中針對調(diào)控組胺-HR1的治療手段,主要通過HR1拮抗劑的使用而抑制阻礙該通路的激活,從而抑制不斷增多的組胺對炎性組織的進(jìn)一步破壞。但運(yùn)用HR1受體拮抗劑治療炎性以及變態(tài)反應(yīng)性疾病時(shí),常會因不同病理環(huán)境而使其療效存在一定差異[27]。因此,從基因水平對組胺-HR1的調(diào)控治療可能更具重要意義。本實(shí)驗(yàn)中檢測發(fā)現(xiàn),實(shí)驗(yàn)組齦溝液組胺的含量明顯高于正常對照組(P<0.05);而HR1- mRNA表達(dá)水平則較正常對照組明顯下降 (P<0.05);提示,在炎癥反應(yīng)條件下活體組織中可能存在調(diào)控HR1基因表達(dá)的重要機(jī)制;從而為組胺-HR1通路控制治療手段提供了實(shí)驗(yàn)依據(jù)。但HR1在炎癥中通過何種調(diào)控而影響其基因表達(dá)的具體機(jī)制尚不清楚,仍需進(jìn)一步深入的研究。

        [1] Loesche WJ, Syed SA, Morrison EC,etal. Treatment of periodontal infections due to anaerobic bacteria with short- term treatment with metronidazole[J].JClinPeriodontol, 1981, 8(1): 29-44.

        [2]Wisutsitthiwong C, Buranaruk C, Pudhom K,etal. The plant limonoid 7- oxo- deacetoxygedunin inhibits RANKL- induced osteoclastogenesis by suppressing activation of the NF- kappaB and MAPK pathways[J].BiochemBiophysResCommun, 2011, 415(2): 361-366.

        [3]Gutierrez- Venegas G, Rodriguez- Perez CE. Toll- like receptor 3 activation promotes desensitization of histamine response in human gingival fibroblasts: Poly (I:C) induces histamine receptor desensitization in human gingival fibroblasts[J].CellImmunol, 2012, 273(2): 150-157.

        [4]Vonakis BM, Sora R, Langdon JM,etal. Inhibition of cytokine gene transcription by the human recombinant histamine- releasing factor in human T lymphocytes[J].JImmunol, 2003, 171(7): 3742-3750.

        [5]Dy M, Arnould A, Lemoine FM,etal. Hematopoietic progenitors and interleukin- 3- dependent cell lines synthesize histamine in response to calcium ionophore[J].Blood, 1996, 87(8): 3161-3169.

        [6]Achong R, Nishimura I, Ramachandran H,etal. Membrane type (MT) 1- matrix metalloproteinase (MMP) and MMP- 2 expression in ligature- induced periodontitis in the rat[J].JPeriodontol,2003, 74(4): 494-500.

        [7]Akdis CA, Blaser K. Histamine in the immune regulation of allergic inflammation[J].JAllergyClinImmunol, 2003, 112(1): 15-22.

        [8]Jutel M, Watanabe T, Akdis M,etal. Immune regulation by histamine[J].CurrOpinImmunol, 2002, 14(6): 735-740.

        [9]Jutel M, Watanabe T, Klunker S,etal. Histamine regulates T- cell and antibody responses by differential expression of H1 and H2 receptors[J].Nature, 2001, 413(6854): 420-425.

        [10]Banu Y, Watanabe T. Augmentation of antigen receptor- mediated responses by histamine H1 receptor signaling[J].JExpMed,1999, 189(4): 673-682.

        [11]Ash AS, Schild HO. Receptors mediating some actions of histamine[J].BrJPharmacolChemother, 1966, 27(2): 427-439.

        [12]Beghdadi W, Porcherie A, Schneider BS,etal. Inhibition of histamine- mediated signaling confers significant protection against severe malaria in mouse models of disease[J].JExpMed, 2008, 205(2): 395-408.

        [13]Metz M, Doyle E, Bindslev- Jensen C,etal. Effects of antihistamines on innate immune responses to severe bacterial infection in mice[J].IntArchAllergyImmunol, 2011, 155(4): 355-360.

        [14]鐘斐,蔣瑾瑾.組胺及組胺受體對免疫系統(tǒng)調(diào)節(jié)作用[J]. 中華臨床醫(yī)師雜志, 2013,7(21):9753-9755.

        [15]Fitzpatrick LA, Buzas E, Gagne TJ,etal. Targeted deletion of histidine decarboxylase gene in mice increases bone formation and protects against ovariectomy- induced bone loss[J].ProcNatlAcadSciUSA, 2003, 100(10): 6027-6032.

        [16]Ma RZ, Gao J, Meeker ND,etal. Identification of Bphs, an autoimmune disease locus, as histamine receptor H1[J].Science, 2002, 297(5581): 620-623.

        [17]Gailit J, Marchese MJ, Kew RR,etal. The differentiation and function of myofibroblasts is regulated by mast cell mediators[J].JInvestDermatol, 2001, 117(5): 1113-1119.

        [18]Minami T, Kuroishi T, Ozawa A,etal. Histamine amplifies immune response of gingival fibroblasts[J].JDentRes, 2007, 86(11): 1083-1088.

        [19]Gutierrez- Venegas G, Cruz- Arrieta S, Villeda- Navarro M,etal. Histamine promotes the expression of receptors TLR2 and TLR4 and amplifies sensitivity to lipopolysaccharide and lipoteichoic acid treatment in human gingival fibroblasts[J].CellBiolInt, 2011, 35(10): 1009-1017.

        [20]Nakashima K, Roehrich N, Cimasoni G. Osteocalcin, prostaglandin E2 and alkaline phosphatase in gingival crevicular fluid: their relations to periodontal status[J].JClinPeriodontol, 1994, 21(5): 327-333.

        [21]Van Dyke TE, Serhan CN. Resolution of inflammation: a new paradigm for the pathogenesis of periodontal diseases[J].JDentRes, 2003, 82(2): 82-90.

        [22]O'Mahony L, Akdis M, Akdis CA. Regulation of the immune response and inflammation by histamine and histamine receptors[J].JAllergyClinImmunol, 2011, 128(6): 1153-1162.

        [23]Hasturk H, Kantarci A, Ebrahimi N,etal. Topical H2 antagonist prevents periodontitis in a rabbit model[J].InfectImmun, 2006, 74(4): 2402-2414.

        [24]Baudry M, Martres MP, Schwartz JC. H1 and H2 receptors in the histamine- induced accumulation of cyclic AMP in guinea pig brain slices[J].Nature, 1975, 253(5490): 362-364.

        [25]Garbarg M, Schwartz JC. Synergism between histamine H1- and H2- receptors in the cAMP response in guinea pig brain slices: effects of phorbol esters and calcium[J].MolPharmacol, 1988, 33(1): 38-43.

        [26]Matsubara M, Tamura T, Ohmori K,etal. Histamine H1 receptor antagonist blocks histamine- induced proinflammatory cytokine production through inhibition of Ca2+-dependent protein kinase C, Raf/MEK/ERK and IKK/I kappa B/NF- kappa B signal cascades[J].BiochemPharmacol,2005, 69(3): 433-449.

        [27]Neumann D, Schneider EH, Seifert R. Analysis of histamine receptor knockout mice in models of inflammation[J].JPharmacolExpTher, 2014, 348(1): 2-11.

        Differential expression of histamine and histamine receptor 1 in rats with periodontitis

        FENG Xiao- qian, ZHANG Gang, ZHANG Hui- yu, FENG Xiao- dan, ZHANG Ping, TAN Ying- hui

        (ChongQing,DepartmentofStomatology,XingQiaohospital,TheThirdMilitaryMedicalUniversity,Chongqing400037,China)

        AIM: To investigate the expression of histamine and histamine receptor 1(HR1) in rat gingival crevicular fluid (GCF) and gingival tissues. METHODS: 40 adult SD rats were randomly divided into 2 groups(n=20): The periodontitis models were established by ligation technique and the rats in control group received no treatment. After 8 weeks, Histamine in GCF was detected by ELISA. HRI mRNA expression in gingival tissues was detected by QT- PCR. RESULTS: The level of histamine in GCF in the periodontitis group (35.47±3.908) μg/L was higher than that in control group (19.77±3.832)μg/L(P<0. 05). HRI mRNA in gingival tissues of periodontitis group was lower than that of the control group (P<0.05). CONCLUSION: Upregulation of histamine in GCF and downregulation of HRI in gingival tissues may play important roles in pathogenesis of periodontitis.

        periodontitis; rat; histamine; histamine receptor 1

        2014-06-30;

        2014-12-09

        軍隊(duì)十二五課題(CWS12J096)

        馮小倩(1988-), 女, 漢族, 安徽人。碩士生(導(dǎo)師: 譚穎徽)

        譚穎徽,E-mail: tanyh1962@outlook.com

        R781.4

        A

        1005-2593(2015)01-0015-05

        第三軍醫(yī)大學(xué)校管課題(2011D274)

        猜你喜歡
        齦溝牙周組織組胺
        牙周組織再生術(shù)與正畸聯(lián)合治療牙周炎患者臨床效果分析
        兒童醫(yī)院門診口服抗組胺藥應(yīng)用情況分析
        正畸治療過程中支抗種植體周圍齦溝液中IL-1β,IL-6,IL-8的研究
        牙周炎牙齒正畸加力前后齦溝液中RANKL和OPG的變化
        評價(jià)3種抗組胺藥治療慢性特發(fā)性蕁麻疹的療效
        牙周組織再生術(shù)聯(lián)合正畸治療牙周炎的臨床效果
        種植體周圍炎齦溝液中IL-2、IFN-γ、IL-4、IL-6的表達(dá)及臨床意義
        高金合金和鎳鉻合金冠橋修復(fù)體對牙周組織遠(yuǎn)期影響的比較
        中藥緩釋藥條對大鼠牙周組織再生的研究
        柱前衍生-高效液相色譜法測定魚粉中組胺的含量
        国产精品私密保养| 亚洲av精品一区二区三| 久久开心婷婷综合中文| 欧美又大粗又爽又黄大片视频| 丰满爆乳在线播放| 香蕉视频在线观看国产| 久久人妻av不卡中文字幕| 亚洲av综合色一区二区| 无码人妻精品一区二区三区9厂| 久久久久久久性潮| 久久久国产精品ⅤA麻豆百度 | 国产精品乱一区二区三区| 亚洲国产精品午夜一区| 亚洲av不卡免费在线| 欧美裸体xxxx极品少妇| 国产精品99久久久久久98AV| 一区二区中文字幕蜜桃| 国产精品亚洲av三区亚洲| 99精品一区二区三区无码吞精| 亚洲中文字幕在线一区二区三区| 中文字幕日本五十路熟女| 亚洲综合图色40p| 大香伊蕉国产av| 高清高速无码一区二区| 91成人国产九色在线观看 | 白白色发布免费手机在线视频观看| 摸进她的内裤里疯狂揉她动图视频| 久久ri精品高清一区二区三区| 91亚洲精品久久久蜜桃| 日韩精品在线视频一二三 | 久久精品夜夜夜夜夜久久| 91自国产精品中文字幕| 19款日产奇骏车怎么样| www插插插无码视频网站| 亚洲电影中文字幕| 美女被内射中出在线观看| 天天摸夜夜摸夜夜狠狠摸| 99热这里只有精品国产99热门精品| 国产成人亚洲合色婷婷 | 久久婷婷国产色一区二区三区| 十四以下岁毛片带血a级|