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        高內(nèi)涵篩選結(jié)合活細(xì)胞實(shí)時(shí)成像技術(shù)分析谷氨酸誘導(dǎo)的小鼠神經(jīng)瘤母細(xì)胞N2a凋亡

        2015-11-19 05:16:44崔士超胡捷先陳獻(xiàn)華
        關(guān)鍵詞:胞核細(xì)胞核谷氨酸

        喬 可 崔士超 胡捷先 陳獻(xiàn)華

        (1復(fù)旦大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院醫(yī)學(xué)分子病毒學(xué)教育部/衛(wèi)生部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,2醫(yī)學(xué)神經(jīng)生物學(xué)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 上海 200032)

        谷氨酸是中樞神經(jīng)系統(tǒng)內(nèi)一種重要的興奮性神經(jīng)遞質(zhì),在突觸可塑性和介導(dǎo)突觸興奮性活動(dòng)等方面發(fā)揮著重要的作用,對(duì)腦內(nèi)神經(jīng)元生長(zhǎng)發(fā)育、分化、遷移、成熟、修復(fù)等具有重要的影響[1]。但在病理情況下,過多谷氨酸積聚可導(dǎo)致谷氨酸受體的過度激活引起鈣超載,從而激活神經(jīng)毒性信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑,最后導(dǎo)致細(xì)胞凋亡和壞死。目前認(rèn)為谷氨酸興奮毒性與多種神經(jīng)元退行性疾病的神經(jīng)元丟失有關(guān),包括阿爾茨海默病、帕金森綜合征、亨廷頓氏疾病、多發(fā)性硬化癥等[2-3]。研究證實(shí),谷氨酸誘導(dǎo)的神經(jīng)元凋亡模型具有良好的可重復(fù)性,可作為研究神經(jīng)元凋亡的可靠實(shí)驗(yàn)?zāi)P停?-5]。因此,建立和評(píng)價(jià)谷氨酸誘導(dǎo)的神經(jīng)細(xì)胞損傷模型,對(duì)研究神經(jīng)損傷和退行性疾病有重要意義。

        高內(nèi)涵篩選(high-content screening,HCS)分析系統(tǒng)是利用顯微成像及圖像分析技術(shù),在細(xì)胞結(jié)構(gòu)和功能完整的條件下,實(shí)時(shí)快速檢測(cè)樣品多維立體的生物效應(yīng)信息,在單個(gè)細(xì)胞/亞細(xì)胞水平獲取樣品生物學(xué)變化的多元化數(shù)據(jù),包括單細(xì)胞圖像和各項(xiàng)指標(biāo)、細(xì)胞群體的統(tǒng)計(jì)分析結(jié)果、細(xì)胞數(shù)量和形態(tài)改變、亞細(xì)胞結(jié)構(gòu)變化、熒光信號(hào)隨時(shí)間和空間的變化等[6-7]。該分析系統(tǒng)不僅能夠像傳統(tǒng)流式細(xì)胞儀那樣進(jìn)行群體分析,而且還可以對(duì)群體分析中具有特定數(shù)值特征的細(xì)胞進(jìn)行形態(tài)觀察和數(shù)值檢測(cè)。神經(jīng)瘤母細(xì)胞N2a是小鼠神經(jīng)外胚層來源的細(xì)胞,因其易于轉(zhuǎn)染并大量表達(dá)微管蛋白等特點(diǎn),在神經(jīng)細(xì)胞分化、軸突生長(zhǎng)及信號(hào)通路領(lǐng)域被廣泛應(yīng)用[8]。

        本實(shí)驗(yàn)利用HCS技術(shù),分析不同濃度谷氨酸誘導(dǎo)的N2a細(xì)胞凋亡比例;并結(jié)合活細(xì)胞實(shí)時(shí)成像技術(shù),跟蹤谷氨酸誘導(dǎo)不同時(shí)間下的N2a凋亡的形態(tài)學(xué)變化特征以及N2a凋亡過程的各項(xiàng)指標(biāo),包括凋亡過程中細(xì)胞核的凝縮過程以及細(xì)胞核碎片化的過程。

        材料和方法

        儀器和試劑 HCS分析系統(tǒng)(Perkin Elmer Operetta);Annexin V-FITC/PI試劑盒(BD),Hoechst 33342(Sigma),NucRed Live 647(Life Technologies);二氧化碳培養(yǎng)箱(Fisher Scientific)。

        細(xì)胞培養(yǎng) N2a細(xì)胞在含10%胎牛血清(FBS)的MEM培養(yǎng)基(Gibco)中通氣培養(yǎng)(37℃、5%CO2)。每3天以0.05%胰酶消化,按1∶5的比例傳代。

        谷氨酸處理細(xì)胞 將細(xì)胞接種于96孔板,每孔含100μL培養(yǎng)液,培養(yǎng)36 h后每孔加入不同濃度谷氨酸(250、500、750、1 000μg/mL)處理24 h,對(duì)照孔不加谷氨酸。

        細(xì)胞熒光標(biāo)記 谷氨酸處理24 h后,96孔板每孔100μL細(xì)胞培養(yǎng)基中加入1μL Annexin VFITC、1μL PI、1μL Hoechst 33342,輕輕混勻置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中,孵育30 min后置于HCS系統(tǒng)。細(xì)胞凋亡形態(tài)實(shí)時(shí)追蹤選擇谷氨酸濃度750μg/mL處理20 h的N2a細(xì)胞,用NucRed Live 647和Annexin V-FITC標(biāo)記。

        圖像獲取、處理和數(shù)據(jù)分析 分別使用60×、20×、40×物鏡(LWD),每孔選取10個(gè)視野分FITC、PI和Hoechst 33342等3個(gè)熒光通道拍攝圖片,熒光光源為250 W連續(xù)氙燈。恒溫37℃、5%CO2下連續(xù)拍攝活細(xì)胞實(shí)時(shí)成像圖片。每隔0.5 h拍攝FITC和NucRed Live 647等2個(gè)熒光通道圖片,連續(xù)采集記錄6 h Time-lapse圖像,從T0~T12。同時(shí)啟動(dòng)系統(tǒng)遠(yuǎn)紅外激光自動(dòng)對(duì)焦功能,防止長(zhǎng)時(shí)間拍攝過程中焦點(diǎn)的漂移和維持焦平面穩(wěn)定。

        使用HCS系統(tǒng)Operetta中的Columbus軟件來獲取圖像,并對(duì)圖像進(jìn)行參數(shù)調(diào)整以及生成顯微縮時(shí)序列圖,通過Hoechst 33342或NucRed Live 647找到細(xì)胞核,分別計(jì)算細(xì)胞總數(shù)、FITC熒光強(qiáng)度和早期凋亡細(xì)胞比例、胞核NucRed Live 647熒光染色面積以及熒光強(qiáng)度變異系數(shù)(coefficient of variation,CV),CV=(標(biāo)準(zhǔn)差÷平均值)×100%。對(duì)于谷氨酸對(duì)N2a細(xì)胞凋亡的影響和谷氨酸誘導(dǎo)N2a細(xì)胞凋亡的形態(tài)學(xué)動(dòng)態(tài)追蹤,各重復(fù)3次獨(dú)立實(shí)驗(yàn),每孔統(tǒng)計(jì)的細(xì)胞總數(shù)為417~1 176個(gè),使用Excel結(jié)合SigmaPlot軟件計(jì)算±s并作二維折線圖。組間差異比較采用t檢驗(yàn),P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        結(jié) 果

        谷氨酸對(duì)N2a細(xì)胞凋亡的影響 在N2a細(xì)胞凋亡的檢測(cè)中,Hoechst 33342標(biāo)記細(xì)胞核(藍(lán)色),Annexin V-FITC標(biāo)記胞膜上外翻的磷脂酰絲氨酸(綠色),PI標(biāo)記胞膜完整性被破壞的凋亡晚期細(xì)胞或壞死細(xì)胞的胞核(紅色)。于谷氨酸處理24 h后,在細(xì)胞培養(yǎng)液中加入上述染色劑,利用HCS技術(shù)捕捉和分析細(xì)胞凋亡不同階段的特征,并統(tǒng)計(jì)不同濃度谷氨酸誘導(dǎo)的N2a細(xì)胞發(fā)生早期凋亡的比例。

        谷氨酸誘導(dǎo)的N2a細(xì)胞凋亡在不同階段的特征 谷氨酸處理N2a細(xì)胞24 h后,利用HCS技術(shù)可以捕捉到細(xì)胞凋亡在不同階段的特征。其中,未發(fā)生凋亡的細(xì)胞僅胞核被Hoechst 33342染色(藍(lán)色)(圖1A);細(xì)胞凋亡早期胞核被 Hoechst 33342染色(藍(lán)色),胞膜被 AnnexinV-FITC染色(綠色)(圖1B);細(xì)胞凋亡中晚期胞核同時(shí)被 Hoechst 33342(藍(lán)色)和PI(紅色)染色,胞膜被AnnexinVFITC染色(綠色)(圖1C、D)。

        圖1 谷氨酸誘導(dǎo)的N2a細(xì)胞凋亡在不同階段的特征圖像(×60)Fig 1 Characteristic images of N2acells at different apoptotic periods induced by glutamate(×60)

        不同谷氨酸濃度誘導(dǎo)對(duì)N2a細(xì)胞早期凋亡比例的影響 隨著谷氨酸誘導(dǎo)濃度的增加,早期凋亡細(xì)胞比例逐漸增加。當(dāng)谷氨酸濃度為750μg/mL時(shí),早期凋亡細(xì)胞比例達(dá)到峰值42.07%;當(dāng)谷氨酸濃度為1 000μg/mL時(shí),早期凋亡細(xì)胞比例開始減少(圖2、3)。這可能與較高濃度谷氨酸誘導(dǎo)下直接進(jìn)入壞死狀態(tài)的細(xì)胞增多以及凋亡晚期進(jìn)入壞死期細(xì)胞的增加有關(guān)。統(tǒng)計(jì)學(xué)分析發(fā)現(xiàn),未加谷氨酸組和加不同濃度谷氨酸組之間數(shù)據(jù)的差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

        圖2 不同濃度谷氨酸誘導(dǎo)下早期凋亡N2a細(xì)胞的比例Fig 2 The percentage of early apoptotic N2acells induced by different concentrations of glutamate

        圖3 不同濃度谷氨酸誘導(dǎo)下早期凋亡N2a細(xì)胞比例的變化(×20)Fig 3 The percentage of early apoptotic N2acells induced by different concentrations of glutamate(×20)

        谷氨酸誘導(dǎo)N2a細(xì)胞凋亡的形態(tài)學(xué)動(dòng)態(tài)追蹤選擇可誘導(dǎo)N2a細(xì)胞達(dá)凋亡峰值的谷氨酸濃度750μg/mL處理N2a細(xì)胞20 h作為拍攝起點(diǎn),利用HCS系統(tǒng)對(duì)N2a細(xì)胞凋亡的形態(tài)學(xué)動(dòng)態(tài)變化進(jìn)行實(shí)時(shí)追蹤。由于PI染料不適合長(zhǎng)時(shí)間染色和追蹤細(xì)胞凋亡動(dòng)態(tài),我們采用可進(jìn)行活細(xì)胞染色和成像分析的NucRed Live 647標(biāo)記細(xì)胞核(紅色),同時(shí)結(jié)合Annexin V-FITC標(biāo)記發(fā)生凋亡細(xì)胞的胞膜(綠色)。

        結(jié)果顯示,隨著拍攝追蹤時(shí)間的增加,帶有綠色熒光(Annexin V-FITC)的細(xì)胞數(shù)目逐漸增多,即發(fā)生凋亡的細(xì)胞數(shù)目增多,而且細(xì)胞核逐漸出現(xiàn)碎片化(圖4)。此外,還可以捕捉到同一個(gè)細(xì)胞發(fā)生凋亡的動(dòng)態(tài)過程(圖4中白色三角和箭頭分別標(biāo)示了兩個(gè)細(xì)胞的凋亡動(dòng)態(tài)變化)。與之相對(duì)應(yīng),隨著拍攝追蹤時(shí)間的增加,胞核的紅色熒光(NucRed Live 647)強(qiáng)度不均一且熒光強(qiáng)度CV逐漸增大(圖5A),凋亡細(xì)胞的胞核面積逐漸縮?。▓D5B)。統(tǒng)計(jì)學(xué)分析發(fā)現(xiàn),未加谷氨酸組和加不同濃度谷氨酸組之間數(shù)據(jù)的差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。

        圖4 谷氨酸誘導(dǎo)N2a細(xì)胞凋亡的形態(tài)學(xué)實(shí)時(shí)追蹤(×40)Fig 4 The morphological real-time tracking images of apoptotic N2acells induced by glutamate(×40)

        圖5 凋亡的N2a細(xì)胞的胞核熒光強(qiáng)度CV值(A)及胞核面積(B)隨谷氨酸誘導(dǎo)時(shí)間的變化Fig 5 CV of nucleus fluorescence intensity of glutamate induced apoptotic N2acells at different induction time

        討 論

        有研究報(bào)道[9-10],離體培養(yǎng)的大腦皮層膠質(zhì)細(xì)胞經(jīng)不同濃度谷氨酸刺激后分別引起細(xì)胞的壞死和凋亡,低濃度谷氨酸(1×10-3mol/L)即可誘導(dǎo)膠質(zhì)細(xì)胞發(fā)生凋亡,隨著谷氨酸濃度的增高,凋亡細(xì)胞數(shù)目逐漸增多,但高濃度谷氨酸(1×10-2mol/L)則使膠質(zhì)細(xì)胞的死亡方式以壞死為主。本實(shí)驗(yàn)選取介于兩者之間的濃度250、500、750、1 000μg/mL(1.7~6.8×10-3mol/L)作為谷氨酸的誘導(dǎo)劑量,摸索其誘導(dǎo)N2a細(xì)胞凋亡達(dá)到峰值的濃度。通過HCS分析結(jié)合活細(xì)胞實(shí)時(shí)成像跟蹤拍攝,可以捕捉到谷氨酸誘導(dǎo)后N2a細(xì)胞凋亡的形態(tài)學(xué)動(dòng)態(tài)變化過程,包括從活細(xì)胞(Hoechst 33342+/AnnexinV-/PI-)進(jìn)入凋亡早期(Hoechst 33342+/AnnexinV+/PI-)的胞膜磷脂酰絲氨酸外翻、細(xì)胞核凝縮狀態(tài),進(jìn)一步進(jìn)入細(xì)胞核碎裂的凋亡晚期(Hoechst 33342+/AnnexinV+/PI+)等各個(gè)階段。

        HCS分析系統(tǒng)通過全自動(dòng)高速顯微成像在短時(shí)間內(nèi)生成大量的圖像,全自動(dòng)圖像分析從這些圖像中提取大量的數(shù)據(jù),數(shù)據(jù)管理軟件負(fù)責(zé)建檔存儲(chǔ)、注釋比較、檢索分享這些圖像和數(shù)據(jù)。高內(nèi)涵分析軟件具有預(yù)設(shè)解決方案(ready-made solutions),預(yù)先安裝常用圖像分析方法和預(yù)設(shè)數(shù)據(jù)處理方案,如發(fā)現(xiàn)胞核、發(fā)現(xiàn)胞質(zhì)、發(fā)現(xiàn)斑點(diǎn)、選擇細(xì)胞區(qū)域、計(jì)算圖像紋理密度特性數(shù)據(jù)、計(jì)算熒光特性數(shù)據(jù)、計(jì)算形態(tài)學(xué)特性數(shù)據(jù)等,不僅能獲取大量細(xì)胞形態(tài)學(xué)數(shù)據(jù),而且能對(duì)其進(jìn)行有效的管理和分析[11-12]。

        HCS分析不僅能夠像傳統(tǒng)流式細(xì)胞儀那樣對(duì)樣品進(jìn)行群體分析,而且還可以對(duì)群體分析中具有特定數(shù)值特征的細(xì)胞進(jìn)行形態(tài)學(xué)觀察和數(shù)值檢測(cè),如對(duì)細(xì)胞核熒光強(qiáng)度變異系數(shù)以及胞核面積大小的改變等形態(tài)學(xué)指標(biāo)進(jìn)行定量檢測(cè)。HCS分析結(jié)合活細(xì)胞實(shí)時(shí)成像技術(shù)可直觀清晰地追蹤拍攝谷氨酸誘導(dǎo)N2a細(xì)胞凋亡的形態(tài)學(xué)變化特征,是一種體外追蹤單一神經(jīng)細(xì)胞凋亡形態(tài)學(xué)變化的理想方法。該方法也可應(yīng)用于藥物對(duì)細(xì)胞凋亡的促進(jìn)或抑制作用的形態(tài)學(xué)變化特征的研究。

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