胡琳,祖茂衡,華淺近,王丹
血管內(nèi)皮細(xì)胞增殖過(guò)程中碘離子與MEK1表達(dá)及磷酸化關(guān)系的研究
胡琳,祖茂衡,華淺近,王丹
目的研究血管內(nèi)皮細(xì)胞(VEC)增殖過(guò)程中碘離子(I-)與絲裂原活化蛋白激酶1(MEK1)表達(dá)及其磷酸化的關(guān)系,探討高碘促VEC增殖效應(yīng)的作用通路。方法①將體外培養(yǎng)的VEC分為空白對(duì)照組和不同碘離子濃度的實(shí)驗(yàn)組。②采用蛋白質(zhì)印跡技術(shù)(Western blot)檢測(cè)不同碘離子濃度培養(yǎng)環(huán)境中MEK1蛋白表達(dá)量及磷酸化水平。結(jié)果①在300 μg/L碘離子濃度組,MEK1蛋白相對(duì)表達(dá)量高于其他組(P<0.05)。②500 μg/L、1 000 μg/L碘離子濃度可促進(jìn)MEK1(Ser298位點(diǎn))磷酸化水平上調(diào)(P<0.05)。③各實(shí)驗(yàn)組MEK1(Thr286位點(diǎn))磷酸化水平下調(diào)(P<0.05)。結(jié)論碘促VEC增殖可能與胞外信號(hào)調(diào)節(jié)激酶(ERK)通路的激活有關(guān)。
布加綜合征;血管內(nèi)皮細(xì)胞;碘離子
【Abstract】ObjectiveTo investigate the relationship between iodine ion and the expression of both MEK1 and its phosphorylation during the course of vascular endothelial cell(VEC)proliferation,and to explore the pathway of the promoting effect of iodine ion on VEC proliferation.Methods①The vascular endothelial cells cultured in vitro were divided into the control group(without any treatment)and four KI groups(treated with 100 μg/L KI,300 μg/L KI,500 μg/L K and 1 000 μg/L KI,respectively).②The effects of iodine ion concentration(100 μg/L,300 μg/L,500 μg/L and 1 000 μg/L,respectively)on the expression of MEK1 and its phosphorylation were determined using Western Blot method.Results①The expression of MEK1 in 300 μg/L KI group was higher than that in other groups(P<0.05).②The MEK1 phosphorylation levels at Ser298 site in iodine ion concentration of 500 μg/L and 1 000 μg/L groups were significantly increased(P<0.05).③The MEK1 phosphorylation levels at Thr286 site in all different iodine ion concentration groups were significantly decreased(P<0.05).ConclusionThe promotion effect of iodine ion on vascular endothelial cell proliferation is related to the activation of extracellular signal-regulated kinase(ERK)signal transduction.(J Intervent Radiol,2015,24:150-153)
【Key words】Budd-Chiari syndrome;vascular endothelial cell;iodine ion
我國(guó)布加綜合征(Budd-Chiari syndrome,BCS)以下腔靜脈隔膜阻塞型(membranous obstruction ofthe inferior vene cava,MOVC)為主,其特征是下腔靜脈和(或)肝靜脈開(kāi)口處隔膜形成。病理學(xué)研究發(fā)現(xiàn)隔膜組織主要由血管內(nèi)皮和纖維組織構(gòu)成[1-2]。同時(shí)流行病學(xué)研究顯示該型患者分布與水源性高碘地區(qū)分布相符[3]。針對(duì)碘離子(I-)與血管內(nèi)皮細(xì)胞(VEC)增殖的關(guān)系,研究顯示碘不促進(jìn)VEC合成血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子(VEGF)[4],且高碘環(huán)境未誘導(dǎo)VEGF受體(VEGFR)與VEC增殖有關(guān)的位點(diǎn)磷酸化改變[5]。但細(xì)胞增殖檢測(cè)顯示碘促VEC增殖可能與MEK1激活有關(guān)[6],提示高碘促VEC增殖效應(yīng)可能發(fā)生于細(xì)胞質(zhì)。
本研究在體外用不同濃度I-培養(yǎng)VEC,檢測(cè)MEK1的表達(dá)及調(diào)控增殖相關(guān)位點(diǎn)Ser298、Thr286的磷酸化水平,探討高碘促VEC增殖效應(yīng)的作用通路。
1.1細(xì)胞株培養(yǎng)
EA.hy926人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞融合細(xì)胞(目錄號(hào)GNHu39)購(gòu)自中國(guó)科學(xué)院上海生命科學(xué)研究院細(xì)胞資源中心。細(xì)胞培養(yǎng)于Corning培養(yǎng)皿中,使用DMEM高糖培養(yǎng)基(GIBCO公司),加10%胎牛血清(GIBCO公司),置于37℃、5%CO2條件的培養(yǎng)箱中培養(yǎng),至細(xì)胞貼壁生長(zhǎng)匯合即可傳代。
1.2檢測(cè)方法
Western blot檢測(cè)絲裂原活化蛋白激酶1(MEK1)蛋白表達(dá)及磷酸化:取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期內(nèi)皮細(xì)胞1∶5傳代,常規(guī)培養(yǎng)至70%細(xì)胞匯合,再以不加血清的DMEM培養(yǎng)基饑餓培養(yǎng)24 h。隨后根據(jù)加入濃度不同I-,將細(xì)胞分5組:①空白對(duì)照組,直接使用DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng);②高碘組,向DMEM培養(yǎng)基中分別加入碘化鉀,使I-終濃度分別為100、300、500和1 000 μg/L。再將細(xì)胞于培養(yǎng)箱中孵育12 h。用冰PBS洗滌3次,每個(gè)皿中加入80 μl含有蛋白酶抑制劑和磷酸酶抑制劑的RIPA裂解液提取細(xì)胞總蛋白,使用BCA法測(cè)蛋白濃度并分裝。取等量樣品加入上樣緩沖液煮沸5 min后上樣、電泳、轉(zhuǎn)膜和免疫反應(yīng)。MEK1、p-MEK1(Ser298)、p-MEK1(Thr286)一抗均以1∶1 000稀釋,二抗稀釋比亦為1∶1 000。顯色方法為5-溴-4-氯-3-吲哚基-磷酸鹽/氯化硝基四氮唑藍(lán)(BCIP/NBT)發(fā)色顯色法。以上條帶均以β-actin作為內(nèi)參照。掃描后采用IPP6.0圖像分析軟件對(duì)特異性條帶進(jìn)行半定量分析,以MEK1、p-MEK1(Ser298)、p-MEK1(Thr286)各自與β-acting的灰度值的比值評(píng)定MEK1及p-MEK1(Ser298、Thr298)蛋白表達(dá)水平。以上實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。
1.3統(tǒng)計(jì)學(xué)方法
用SPSS16.0軟件行統(tǒng)計(jì)分析,計(jì)量數(shù)據(jù)結(jié)果以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示。兩組之間比較采用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn),多組之間比較采用單因素方差分析(one-way ANOVA),多組之間兩兩比較采用LSD法或Tamhane's T2法。以P<0.05表示差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1I-對(duì)MEK1蛋白表達(dá)的影響
各碘濃度組與空白組比較,300 μg/L組MEK1蛋白相對(duì)表達(dá)量較空白對(duì)照組明顯提高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)表1、圖1。
表1 不同濃度碘環(huán)境中MEK1總蛋白及Ser298、Thr286位點(diǎn)磷酸化蛋白的表達(dá)
圖1 MEK1、p-MEK1(Ser298)、p-MEK1(Thr286)在各組中的表達(dá)
2.2I-對(duì)Ser298位點(diǎn)磷酸化的影響
與空白對(duì)照組比較,500 μg/L組和1 000 μg/L組的MEK1(Ser298)蛋白磷酸化水平上調(diào)(P<0.05),500 μg/L組和1 000 μg/L組的組間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。
2.3I-對(duì)Thr286位點(diǎn)磷酸化的影響
各離子組與空白對(duì)照組比較,MEK1(Thr286)蛋白磷酸化水平下調(diào)(P<0.05);碘濃度300 μg/L組、500 μg/L組、1 000 μg/L組與100 μg/L組比較,磷酸化水平下調(diào)(P<0.05);300 μg/L組、500 μg/L組、1 000 μg/L組組間兩兩比較,僅500μg/L組較300 μg/L組磷酸化水平下調(diào),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。
3.1I-與VEC增殖作用及增殖途徑的探討
與國(guó)外不同,我國(guó)BCS患者以MOVC型多見(jiàn),隔膜由不含彈性蛋白的纖維組織表面覆蓋內(nèi)皮細(xì)胞構(gòu)成[7],并與下腔靜脈管壁相延續(xù)[1]。國(guó)內(nèi)流行病學(xué)調(diào)查顯示MOVC型患者分布與水源性高碘地區(qū)分布相符,患者尿碘水平亦高于正常人[3]。目前研究顯示患者血清中碘含量明顯高于正常人(未發(fā)表資料)。在體外培養(yǎng)VEC發(fā)現(xiàn)一定濃度的I-能夠促進(jìn)其增殖[8-9],我們認(rèn)為I-可能是引起下腔靜脈隔膜形成的重要因素之一。
我們的前期研究發(fā)現(xiàn)MOVC型BCS患者下腔靜脈血中VEGF含量明顯高于非BCS對(duì)照組[10],但體外高碘培養(yǎng)的VEC并未出現(xiàn)VEGF的高表達(dá)[4],且I-對(duì)細(xì)胞膜受體VEGFR-2的總表達(dá)量無(wú)影響,同時(shí)介導(dǎo)細(xì)胞增殖的VEGFR-2 Tyr1175位點(diǎn)的磷酸化水平未出現(xiàn)上調(diào)[5],提示I-促VEC增殖效應(yīng)不依賴于VEGF和VEGFR的高表達(dá)。VEC增殖檢測(cè)發(fā)現(xiàn)I-促增殖效應(yīng)可能與MEK1的激活有關(guān)[6],以此為切入點(diǎn),我們推測(cè)I-可能直接作用于細(xì)胞質(zhì),激活ERK通路引起細(xì)胞增殖效應(yīng)。
ERK是絲裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK)家族的一員,是調(diào)節(jié)細(xì)胞生長(zhǎng)、發(fā)育及分裂的信號(hào)網(wǎng)絡(luò)的樞紐。Ras/Raf-1/ MEK1/ERK1/2是ERK通路的主要途徑[11],Raf-1是MAPK級(jí)聯(lián)反應(yīng)的啟動(dòng)蛋白,一旦被上游蛋白R(shí)as激活,可與MEK1結(jié)合并使之磷酸化,活化的MEK1連接并激活ERKs,ERKs進(jìn)入細(xì)胞核,直接激活大量的轉(zhuǎn)錄因子[12],發(fā)揮細(xì)胞增殖效應(yīng)。
3.2I-與MEK1、p-MEK1(Ser298、Thr286)蛋白表達(dá)的關(guān)系及意義
MEK1是調(diào)控ERK通路級(jí)聯(lián)反應(yīng)的核心,300 μg/L組的MEK1蛋白高表達(dá),提示I-可能通過(guò)提高M(jìn)EK1的蛋白表達(dá)量來(lái)發(fā)揮VEC增殖效應(yīng)。其激活是通過(guò)磷酸化實(shí)現(xiàn)的,MEK1存在多個(gè)磷酸化位點(diǎn),其中兩個(gè)重要位點(diǎn)Ser298和Thr286的磷酸化對(duì)MEK1活性的影響截然不同,并對(duì)隨后的酶促級(jí)聯(lián)反應(yīng)有不同的調(diào)控作用。
本研究的Western blot結(jié)果顯示,I-濃度500 μg/ L組和1 000 μg/L組較對(duì)照組的Ser298位點(diǎn)磷酸化水平明顯上調(diào),提示高濃度I-能讓Ser298位點(diǎn)的磷酸化水平上調(diào)。碘對(duì)體外培養(yǎng)的VEC有刺激增殖的作用,這種作用與I-濃度及作用時(shí)間有關(guān),高濃度I-組細(xì)胞數(shù)量及細(xì)胞活性明顯升高所需的作用時(shí)間短于低濃度I-組,低濃度I-組需延長(zhǎng)作用時(shí)間才顯示出細(xì)胞數(shù)量及活性的明顯升高[9],高碘對(duì)VEC的作用呈現(xiàn)出劑量-時(shí)間-效應(yīng)關(guān)系。鑒于本實(shí)驗(yàn)中I-作用12 h后即提取各組蛋白以備用,我們推測(cè)100和300 μg/L組在延長(zhǎng)培養(yǎng)時(shí)間后Ser298的磷酸化水平也較對(duì)照組上調(diào)。位點(diǎn)Ser298位于MEK1第Ⅸ至Ⅹ催化區(qū)之間的多聚脯氨基序列中,Ser298的磷酸化可最大化Raf-1和MEK1的結(jié)合作用,并增強(qiáng)MEK1的活化[13]?;罨腗EK1通過(guò)其N端區(qū)域與ERKs直接連接,催化ERK的亞功能區(qū)8“TEY盒”中的Tyr和Thr殘基雙特異性磷酸化,激活ERK,隨后發(fā)揮細(xì)胞增殖效應(yīng)。MEK1不僅僅是ERK的激活物,還可能是ERK在胞質(zhì)中的錨定器,當(dāng)信號(hào)通路無(wú)活性時(shí),它將ERK固定在胞質(zhì)中,一旦有信號(hào)刺激ERKs磷酸化及二聚體化,可激活ERKs并將其轉(zhuǎn)移到胞核或其他活化位點(diǎn),再進(jìn)一步磷酸化下游底物。
與對(duì)照組比較,各實(shí)驗(yàn)組Thr286磷酸化水平下調(diào);與100 μg/L組比較,300、500和1 000 μg/L組Thr286磷酸化水平下調(diào);500 μg/L組較300 μg/L組Thr286磷酸化水平下調(diào)。Thr286的磷酸化直接滅活MEK1[14],引起隨后MEK1和ERK的解偶聯(lián)[15],從而使MAPK級(jí)聯(lián)反應(yīng)終止。所以在細(xì)胞周期中,Thr286可能是終止細(xì)胞有絲分裂的調(diào)控點(diǎn)[14]。本研究中,各實(shí)驗(yàn)組較對(duì)照組的差異及實(shí)驗(yàn)組組間的差異提示I-可引起MEK1(Thr286)磷酸化水平的下調(diào),并且在一定濃度范圍內(nèi),隨著I-濃度的增高,ERK通路的負(fù)向調(diào)控作用逐漸減弱。
綜上所述,本研究通過(guò)I-促VEC增殖的作用通路,探討MOVC型BCS的可能發(fā)病機(jī)制,本研究中發(fā)現(xiàn)不同濃度I-可以促進(jìn)MEK1蛋白高表達(dá)及MEK1(Ser298、Thr286)的磷酸化水平改變,提示I-促VEC增殖效應(yīng)最終是通過(guò)ERK通路的激活來(lái)實(shí)現(xiàn)的。但本研究不能確定I-是否直接作用于MEK1,且100 μg/L組與300 μg/L組延長(zhǎng)I-培養(yǎng)細(xì)胞時(shí)間是否能上調(diào)Ser298位點(diǎn)的磷酸化水平需跟進(jìn)觀察。作為MAPK家族成員,ERK通路與其他的細(xì)胞內(nèi)信息傳遞通路相互聯(lián)系和作用,是調(diào)節(jié)細(xì)胞生長(zhǎng)、發(fā)育及分裂的信息網(wǎng)絡(luò)的中樞,其各級(jí)酶促級(jí)聯(lián)反應(yīng)易受其他通路及各種細(xì)胞因子的調(diào)控,I-促VEC增殖效應(yīng)是否經(jīng)其他通路激活ERK通路也有待進(jìn)一步研究。
[1]王佾,張輝,郭成浩,等.下腔靜脈隔膜阻塞型布-加綜合征的病理學(xué)及病因?qū)W研究[J].介入放射學(xué)雜志,2008,17:500-503.
[2]白衛(wèi)星,李天曉,翟水亭,等.布-加綜合征隔膜組織病理學(xué)與相關(guān)因素研究[J].介入放射學(xué)雜志,2008,17:463-467.
[3]肖培瑞,藺新英,郭成浩,等.布-加綜合征分布與飲用水碘含量關(guān)系研究[J].環(huán)境與健康雜志,2010,27:618-620.
[4]李鵬飛,騰飛,莊銀萍,等.碘對(duì)血管內(nèi)皮細(xì)胞表達(dá)VEGF影響的研究[J].徐州醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào),2012,32:442-444.
[5]滕飛,祖茂衡,華淺近,等.血管內(nèi)皮細(xì)胞增殖過(guò)程中碘離子與血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子及其受體的關(guān)系[J].介入放射學(xué)雜志,2013,22:403-408.
[6]李鵬飛,騰飛,莊銀萍,等.碘促進(jìn)血管內(nèi)皮細(xì)胞增殖作用與MEK1相關(guān)性及碘對(duì)血管內(nèi)皮細(xì)胞表達(dá)VEGF影響的實(shí)驗(yàn)研究[J].當(dāng)代醫(yī)學(xué),2012,18:13-15.
[7]Riemens SC,Haagsma EB,Kok T,et al.Familial occurrence of membranous obstruction of the inferior vena cava:arguments in favor of a congenital etiology[J].J Hepatol,1995,22:404-409.
[8]王曉磊,徐麗雅,張海濤,等.不同碘濃度對(duì)培養(yǎng)血管內(nèi)皮細(xì)胞增殖的影響[J].山東大學(xué)學(xué)報(bào):醫(yī)學(xué)版,2007,45:310-312.
[9]劉倫,焦波,郭成浩.碘伏對(duì)血管內(nèi)皮細(xì)胞增殖的影響[J].山東醫(yī)藥,2007,47:46-47.
[10]韓新強(qiáng),祖茂衡.VEGF在下腔靜脈隔膜型布-加綜合征患者中異常表達(dá)的意義分析[J].當(dāng)代醫(yī)學(xué),2010,16:672-674.
[11]趙明哲,劉靖華,李玉花,等.ERK信號(hào)通路的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)調(diào)控機(jī)制[J].國(guó)際病理科學(xué)與臨床雜志,2009,29:15-19.
[12]Coles LC,Shaw PE.PAK1 primes MEK1 for phosphorylation by Raf-1 kinase during cross-cascade activation of the ERK pathway[J].Oncogene,2002,21:2236-2244.
[13]Frost JA,Steen H,Shapiro P,et al.Cross-cascade activation of ERKs and ternary complex factors by Rho family proteins[J]. EMBO J,1997,16:6426-6438.
[14]Sharma P,Sharma M,Amin ND,et al.Phosphorylation of MEK1 by cdk5/p35 down-regulates the mitogen-activated protein kinase pathway[J].J Biol Chem,2002,277:528-534.
[15]Ramos-Miguel A,García-Sevilla JA.Crosstalk between cdk5 and MEK-ERK signalling upon opioid receptor stimulation leads to upregulation of activator p25 and MEK1 inhibition in rat brain[J].Neuroscience,2012,215:17-30.
The relationship between iodine ion and the expression of both MEK1 and its phosphorylation duringthe course of vascular endothelial cell proliferation
HU Lin,ZU Mao-heng,HUA Qian-jin,WANG Dan.Department of Interventional Radiology,Affiliated Hospital of Xuzhou Medical College,Xuzhou,Jiangsu Province 221002,China
ZU Mao-heng,E-mail:cjr.zumaoheng@vip.163.com
R543.5
A
1008-794X(2015)-02-0150-04
2014-07-09)
(本文編輯:李欣)
10.3969/j.issn.1008-794X.2015.02.015
江蘇省科技創(chuàng)新與成果轉(zhuǎn)化專項(xiàng)基金資助項(xiàng)目(BL2012021)
221002江蘇徐州徐州醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院介入放射科
祖茂衡E-mail:cjr.zumaoheng@vip.163.com