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        Hela 細胞早孕因子基因的克隆與原核表達

        2015-06-18 11:27:52鄭瑋璐劉為民王丙云梁梓森計慧琴謝瑩佳
        動物醫(yī)學(xué)進展 2015年5期
        關(guān)鍵詞:菌液質(zhì)粒載體

        鄭瑋璐,劉為民,陳 芳,王丙云*,梁梓森,計慧琴,謝瑩佳

        (1.佛山科學(xué)技術(shù)學(xué)院,廣東佛山 528231;2.華南農(nóng)業(yè)大學(xué),廣東廣州 510642)

        早孕因子(early pregnancy factor,EPF)是哺乳動物受精后最早在血清中檢測到的具有免疫抑制和生長調(diào)節(jié)作用的妊娠相關(guān)蛋白[1-2]。國外學(xué)者通過玫瑰花環(huán)抑制試驗(RIT)在妊娠小鼠血清中檢測到早孕因子的活性,因為其早在小鼠受精后4h~6h即可被檢測到,將其命名為早孕因子[3]。研究發(fā)現(xiàn),在妊娠婦女以及羊、豬、牛、馬和兔等妊娠母體血清中也檢測到了EPF活性。

        EPF是一種糖蛋白,耐透析、對酸堿度的耐受性較強,溫度低于56℃時很穩(wěn)定,但超過72℃時容易失活,EPF無動物品種特異性[4]。人、豬和牛EPF的氨基酸序列完全相同,分子質(zhì)量均為10.93 ku,等電點約為6.5。EPF對妊娠具有很高的特異性,是最早確認妊娠的生化指標(biāo)之一[5-6]。研究表明,小鼠交配后6h,兔交配后16h,大鼠、綿羊、牛、豬交配后24h即可從母體內(nèi)測出EPF,遠遠早于人絨毛膜促性腺素(hCG),而且EPF的活性在妊娠期存在時間較長,在小鼠可持續(xù)至產(chǎn)仔前4d,綿羊、豬則幾乎持續(xù)整個孕期,直至分娩結(jié)束,并且豬懷孕3周~4周時EPF活性最高,但卵子如不受精則測不出[7],EPF對人和動物的超早期妊娠診斷具有重要意義。除了妊娠婦女以及羊、豬、牛、馬和兔等妊娠哺乳動物母體血清中能檢測到EPF活性之外,一些學(xué)者們還在腫瘤細胞中發(fā)現(xiàn)了EPF,并且證實其有促細胞生長的功能[8-9]。本研究從人腫瘤細胞系Hela細胞成功克隆到EPF基因,嘗試采用原核表達方法獲得大量EPF,為進一步制備EPF單克隆抗體和開發(fā)母豬早孕檢測試劑盒奠定基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 材料

        1.1.1 菌株、質(zhì)粒 大腸埃希菌BL21(DE3)、Hela細胞均由華南農(nóng)業(yè)大學(xué)獸醫(yī)學(xué)院微生物學(xué)教研室惠贈;基因工程菌大腸埃希菌DH5α、pREST-A質(zhì)粒由佛山科學(xué)技術(shù)學(xué)院生命科學(xué)學(xué)院基礎(chǔ)獸醫(yī)學(xué)實驗室保存。

        1.1.2 主要試劑和材料 Premix ExTaq、XhoI、EcoRI、DNA Marker均為大連TaKaRa公司產(chǎn)品;T4DNA連接酶為NEB公司產(chǎn)品;低分子質(zhì)量蛋白Marker、DNA凝膠回收試劑盒為上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司產(chǎn)品;質(zhì)粒提取試劑盒為Omega公司產(chǎn)品;NC膜、脫脂奶粉、BSA、丙烯酰胺,亞甲叉丙烯酰胺、甘氨酸、AP、Amp、咪唑、Tris base、透析袋等為北京鼎國公司產(chǎn)品;胰蛋白胨大豆肉湯(TSB)、酵母提取物(Yeast Extract)為 OXOID公司產(chǎn)品;一站式His標(biāo)記蛋白質(zhì)微量純化套裝為北京天恩澤產(chǎn)品;兔抗人EPF抗體、HRP羊抗兔二抗、HRP驢抗羊二抗為Proteintech公司產(chǎn)品。

        1.2 方法

        1.2.1 Hela細胞的培養(yǎng) 凍存的Hela細胞置于水浴鍋中37℃快速解凍復(fù)蘇,離心洗滌后重懸細胞,37℃、體積分數(shù)為5%的CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),當(dāng)細胞生長密度到達80%~90%匯合度時進行傳代,選用第3代細胞抽提RNA,備用。

        1.2.2 引物設(shè)計與合成 用Primer5.0對Gen-Bank上已經(jīng)發(fā)表的EPF基因(CR407688)設(shè)計一對特異性引物,在引物的5′端加入XhoⅠ、EcoRⅠ 酶切位點(下劃線部分),設(shè)計時加入保護性堿基。引物序列如下:

        引物由生工生物工程(上海)有限公司合成,預(yù)期擴增片段長度為309bp。

        1.2.3 RT-PCR 參照TaKaRa公司的AMV逆轉(zhuǎn)錄酶使用說明進行。反轉(zhuǎn)錄體系如下:向4μL 5×AMV buffer中加入10mmol/L 的 dNTP 2μL,RNA 酶抑制劑1μL,Oligo(dT)1μL,AMV 1μL,模板RNA 11μL,反應(yīng)總體積20μL,離心混勻后,42℃作用1h。獲得的cDNA作為模板進行PCR。在 PCR管中依次加入:Premix ExTaq酶12.5μL,模板DNA 1μL,10μmol/L的EPF-1和10μmol/L的EPF-1各1μL,滅菌的雙蒸水9.5μL,使反應(yīng)體系總體積為25μL。PCR反應(yīng)條件 :94℃5min;94℃30s,53℃30s,72℃45s,循環(huán)30次;72℃10 min。采用10g/L瓊脂糖凝膠電泳檢測EPF基因的擴增結(jié)果。

        1.2.4 表達載體的構(gòu)建 將純化后的PCR產(chǎn)物和表達載體pREST-A分別用XholⅠ和EcoRⅠ雙酶切。將獲得的雙酶切產(chǎn)物與已雙酶切純化后的pREST-A在16℃連接過夜,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化DH5α感受態(tài)細胞,對轉(zhuǎn)化成功的重組質(zhì)粒進行菌落PCR,將鑒定為陽性的克隆菌落進行挑菌過夜培養(yǎng),小量制備質(zhì)粒,經(jīng)酶切分析與測序鑒定。

        1.2.5 組蛋白的誘導(dǎo)表達 將鑒定為陽性的重組表達載體pREST-A轉(zhuǎn)化宿主菌BL21(DE3),用1.0 mmol/L IPTG誘導(dǎo),37℃恒溫搖床200r/min振蕩培養(yǎng)5h。將誘導(dǎo)表達的重組菌進行離心,12 000 r/min 10min,收集沉淀,PBS洗滌兩次,再將沉淀用PBS(10%原液體積)重懸。于冰浴中超聲波裂解細菌,裂解至菌液變清亮,12 000r/min離心20 min,分別收集上清和沉淀,通過SDS-PAGE分析目的蛋白的表達情況和可溶性,大量培養(yǎng)細菌,用于重組蛋白的純化。

        1.2.6 重組蛋白的純化 按照一站式His標(biāo)記蛋白質(zhì)微量純化套裝說明書的操作步驟進行純化,收集洗脫液。采用脫鹽柱去除洗脫液中的鹽離子和多余水分子,采用PEG2000對脫鹽后的目的蛋白進一步透析濃縮。以紫外分光光度計測定獲得的蛋白濃度,以SDS-PAGE法測定目的蛋白的純度,用Wes tern blot檢測蛋白的抗原特異性。

        1.2.7 Western blot檢測 純化后的蛋白加入上樣緩沖液水沸煮5min后電泳;200mA恒流電轉(zhuǎn);結(jié)束后,將NC膜用PBST洗3×5min;而后加入一抗37℃溫育2h,PBST洗3×5min,加入酶標(biāo)二抗,37℃溫育1h,取出用PBST洗3×5min;DAB顯色。

        2 結(jié)果

        2.1 EPF-cDNA的RT-PCR克隆

        以Hela細胞總RNA為模板對EPF mRNA全長進行RT-PCR擴增,擴增后采用瓊脂糖凝膠電泳檢測,結(jié)果顯示擴增出長約309bp的條帶,與預(yù)期設(shè)計的大小一致(圖1)。

        圖1 EPF目的片段PCR產(chǎn)物電泳Fig.1 Electrophoresis of PCR products of EPF genes

        2.2 重組表達載體pREST-A-EPF的雙酶切鑒定

        用限制性內(nèi)切酶XholⅠ和EcoRⅠ對重組表達載體pREST-A-EPF進行雙酶切,其中一條大小約為2 897bp,與pREST-A載體分子質(zhì)量大小一致,另一條大小約309bp,與EPF cDNA大小相符(圖2)。測序結(jié)果與目的片段同源性為100%。

        2.3 目的蛋白的表達

        將IPTG 誘導(dǎo)的 搖菌 過夜 的 BL21(DE3)-pREST-A-EPF菌液和BL21(DE3)-pREST-A菌液用SDS-PAGE電泳鑒定。結(jié)果顯示,搖菌過夜的連接載體表達菌液出現(xiàn)特異條帶,條帶大小約為16 ku,與預(yù)期蛋白大小相符,而搖菌過夜的空載體表達菌液沒有此特異性條帶(圖3)。

        圖2 重組表達載體pREST-A-EPF酶切鑒定Fig.2 Identication of recombinant pREST-A-EPF plasmid by enzyme digestion

        圖3 重組蛋白的SDS-PAGEFig.3 SDS-PAGE analysis of recombinant protien

        將搖菌過夜的BL21(DE3)-pREST-A-EPF菌液于超聲波裂解,分別取上清和沉淀用SDS-PAGE電泳鑒定。結(jié)果顯示,重組目的蛋白主要以可溶性形式表達(圖4)。

        2.4 表達產(chǎn)物的純化

        用HIS標(biāo)簽蛋白純化試劑盒純化重組蛋白。純化后的樣品進行SDS-PAGE電泳。結(jié)果表明,得到純度高的融合蛋白,其分子質(zhì)量約為16ku,與預(yù)期相符(圖5)。

        2.5 表達產(chǎn)物的 Western blot檢測

        將純化的重組蛋白進行Western blot檢測。結(jié)果顯示,純化的重組蛋白能被抗EPF抗體識別,并發(fā)生特異性結(jié)合(圖6)。

        圖4 菌體超聲裂解產(chǎn)物的SDS-PAGEFig.4 SDS-PAGE analysis of bacterial ultrasound pyrolysis product

        圖5 純化的重組EPF蛋白SDS-PAGEFig.5 SDS-PAGE analysis of purified recombinant EPF protein

        圖6 純化的重組EPF蛋白Western blot檢測Fig.6 Western blot analysis of purified recombinant EPF protein

        3 討論

        Morton H等[10]運用原核表達系統(tǒng)制備了重組EPF,采用真核表達系統(tǒng)制備重組EPF,并通過玫瑰花環(huán)抑制試驗證明了重組EPF的活性與天然EPF活性相當(dāng),無明顯差別[11]。也有通過原核表達成功獲得EPF的報道[12-14]。這些研究成果為解決從血清中分離EPF的難題提供了新的途徑與方法。

        本試驗采用的pRSET-A原核表達系統(tǒng)有兩個優(yōu)點:①pRSET-A質(zhì)粒帶有34個氨基酸前導(dǎo)肽序列的融合標(biāo)簽,為小多肽融合標(biāo)簽,在大多數(shù)情況下,由于多肽標(biāo)簽相對較小,對融合蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)影響很小,不需要從融合蛋白質(zhì)中切除,因而多肽融合標(biāo)簽較蛋白質(zhì)標(biāo)簽更為實用;②該質(zhì)粒帶有His6-tag,可以采用His柱親和層析法對表達的重組蛋白進行純化,該方法不使蛋白質(zhì)變性,最大限度地保留目的蛋白的免疫原性。在誘導(dǎo)表達時,發(fā)現(xiàn)當(dāng)IPTG濃度低于0.05mmol/L時細菌仍能表達目的蛋白,并且還發(fā)現(xiàn)無需IPTG誘導(dǎo),只要搖菌37℃過夜,也能得到目的蛋白。經(jīng)SDS-PAGE電泳和 Wes tern blot分析證實為目的蛋白。分析出現(xiàn)這種現(xiàn)象可能原因:①pRSET-A原核表達系統(tǒng)受lacO的調(diào)控,而lacO本身不是嚴謹操縱子,所以出現(xiàn)了泄漏表達;②在培養(yǎng)基中會含有一些乳糖的成分,導(dǎo)致本底表達。因為這不是本試驗的內(nèi)容,所以不做進一步研究。將表達細菌體經(jīng)超聲波破碎后,離心收集上清和沉淀,通過SDS-PAGE電泳分析發(fā)現(xiàn)目的蛋白存在上清中,為可溶性蛋白。以可溶形式表達的目的蛋白,具有天然的四級結(jié)構(gòu),能夠保持目的蛋白的天然構(gòu)象,從而可以簡化目的蛋白的純化,減少純化過程中目的蛋白的損失。

        母豬妊娠診斷技術(shù)的趨勢是向著診斷時間早、診斷準確率和靈敏度高的方向發(fā)展。所以,母豬超早期妊娠診斷的價值很大,對確診已妊娠的母豬,保證胎兒正常發(fā)育,防止流產(chǎn)以及預(yù)測分娩日期;對未妊娠的母豬,可以及時進行檢查,找出未孕原因,采取相應(yīng)的治療措施,能有效地提高母豬繁殖效率和減少經(jīng)濟損失[15-16]。而EPF作為具有生長調(diào)節(jié)活性的妊娠相關(guān)蛋白,是最早確認妊娠的生化指標(biāo)之一,在超早期妊娠診斷中有著至關(guān)重要的檢測意義和應(yīng)用價值。

        研究證明,EPF無動物以及品種特異性[17],而且人和豬的EPF的氨基酸序列完全相同[11]。所以,本研究獲得的重組人EPF蛋白同樣適用于對EPF蛋白的相關(guān)研究以及母豬早孕診斷試劑盒的開發(fā)。

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