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        菌絲霉素NZ2114基因在畢赤酵母中表達(dá)及中試發(fā)酵研究

        2015-01-22 05:58:22楊靜美逯佩鳳孫丹丹周玉巖
        飼料工業(yè) 2015年16期
        關(guān)鍵詞:發(fā)酵液菌絲酵母

        ■ 葉 滔 楊靜美 閆 凱 馮 蓓 逯佩鳳 孫丹丹 周玉巖

        (1.廣東海納川生物科技股份有限公司,廣東佛山528515;2.廣東省獸藥與飼料添加劑工程技術(shù)研發(fā)中心,廣東佛山528515;3.仲愷農(nóng)業(yè)工程學(xué)院,廣東廣州 510225)

        防御素(defensin)是廣泛存在于生物體中的一類內(nèi)源性抗菌肽(antibacterial peptide),在一定誘導(dǎo)條件下,由宿主細(xì)胞特定編碼基因產(chǎn)生的對抗外源性病原微生物的小分子肽類活性物質(zhì)。它具有廣泛的殺菌活性、細(xì)胞毒性和免疫趨化活性,是機(jī)體天然免疫系統(tǒng)的重要組成部分[1]。防御素作用機(jī)理獨(dú)特,它主要作用于病原菌的細(xì)胞膜,因此不易產(chǎn)生耐藥性。另外,研究發(fā)現(xiàn),防御素還可以作為一種效應(yīng)分子,激活和調(diào)節(jié)免疫系統(tǒng),參與胞內(nèi)信號轉(zhuǎn)導(dǎo),具有抗細(xì)菌、抗真菌、抗病毒、抗腫瘤功能,有望在抵御病原菌感染中顯示巨大的潛力和廣闊的應(yīng)用前景[2]。

        菌絲霉素(Plectasin)是Mygind等(2005)研究小組通過篩查腐生子囊菌(the saprophytic ascomycete Pseudoplectania nigrella)分泌蛋白的cDNA庫,從中找出一些與無脊柱動物防御素序列高度相似的片段,并篩選分離出來的首例真菌防御素[3]。防御素新藥研發(fā)工作一直進(jìn)展緩慢,主要障礙就是它們在大規(guī)模生產(chǎn)時成本過高。Plectasin的發(fā)現(xiàn)打破了一直局限在高等生物,如哺乳動物、昆蟲和植物中分離防御素的現(xiàn)狀,將防御素的來源拓展到具有廣闊開發(fā)前景的低等生物真菌中,從真菌中提取防御素獲得成功,必將大幅降低防御素類抗菌藥物的研究和生產(chǎn)成本,從而加速這類新型抗菌藥物的開發(fā)和應(yīng)用,具有重要意義[2]。

        圖1 Plectasin與幾種無脊椎動物防御素的相似性

        目前制備大量的防御素是研究和應(yīng)用的前提,其主要途徑有三個:①天然提??;②化學(xué)合成;③基因工程表達(dá)技術(shù)。前兩種方法工藝復(fù)雜、成本高,只能滿足研究所需要的樣品量,難以工業(yè)化生產(chǎn)?;蚬こ瘫磉_(dá)技術(shù)可以用于表達(dá)重組肽,且具有低成本、表達(dá)產(chǎn)物活性高的優(yōu)勢,是目前獲取大量外源蛋白的有效方法。因此,本研究采用基因工程技術(shù),嘗試在畢赤酵母中通過組成型分泌到胞外的方式表達(dá)重組肽菌絲霉素NZ2114,并進(jìn)行重組肽菌絲霉素NZ2114表達(dá)的50 L發(fā)酵罐規(guī)模中試研究,研究其體外抗菌活性鑒定,為其在規(guī)模化生產(chǎn)和應(yīng)用提供前期基礎(chǔ)和依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 試驗(yàn)材料

        菌絲霉素NZ2114基因,由上海捷瑞生物工程有限公司合成。

        載體pPicZα,由暨南大學(xué)醫(yī)藥生物技術(shù)研究開發(fā)中心惠贈。

        畢赤酵母GS115,由暨南大學(xué)醫(yī)藥生物技術(shù)研究開發(fā)中心惠贈。

        受試菌:金黃色葡萄球菌CMCC26003,由華中農(nóng)業(yè)大學(xué)獸醫(yī)藥理實(shí)驗(yàn)室惠贈。

        MHB培養(yǎng)基:MHB肉湯培養(yǎng)基21 g溶于1 L蒸餾水中,充分溶解后,121℃高壓蒸汽滅菌20 min。

        LB瓊脂培養(yǎng)基:酵母提取物5 g、胰蛋白胨10 g、NaCl 10 g,定容至1 L,121℃高壓蒸汽滅菌20 min。配置LB固體培養(yǎng)基時,加入1.5%的瓊脂粉,121℃高壓蒸汽滅菌20 min。

        BMGY培養(yǎng)基:酵母提取物10 g、蛋白胨20 g,定容至700 ml,121℃高壓蒸汽滅菌20 min后,添加滅菌的10%甘油100 ml,13.4%無氨基酸酵母氮源(YNB)100 ml,0.02%生物素2 ml,1 mol/l磷酸緩沖液pH值6.0 100 ml。

        BMMY培養(yǎng)基:酵母提取物10 g、蛋白胨20 g,定容至700 ml,121℃高壓蒸汽滅菌20 min后,添加滅菌的5%甲醇100 ml,13.4%無氨基酸酵母氮源YNB 100 ml,0.02%生物素2 ml,1 mol/l pH值6.0磷酸緩沖液100 ml。

        YPD培養(yǎng)基:酵母提取物10 g、蛋白胨20 g,定容至900 ml,121℃高壓蒸汽滅菌20 min后添加過濾滅菌的20%葡萄糖100 ml。

        考馬斯亮藍(lán)試劑:考馬斯亮藍(lán)G-250 100 mg溶于50 ml 95%乙醇中,加入100 ml 85%磷酸,用蒸餾水稀釋至1 000 ml,濾紙過濾。最終試劑中含0.01%(W/V)考馬斯亮藍(lán)G-250,4.7%(W/V)乙醇,8.5%(W/V)磷酸。

        電泳系統(tǒng):XCell SureLock?Mini-Cell蛋白垂直電泳槽(美國生產(chǎn))。

        1.2 方法

        1.2.1 重組表達(dá)載體的構(gòu)建

        NZ2114蛋白序列如下:

        抗菌肽Plectasin:GFGCNGPWDEDDMQCHNHCKSIKGYKGGYCAKGGFVCKCY

        菌絲霉素NZ2114:GFGCNGPWNEDDLRCHNHCKSIKGYKGGYCAKGGFVCKCY

        根據(jù)蛋白編碼序列,設(shè)計(jì)相對應(yīng)畢赤酵母的酵母偏愛性密碼子,提交生物公司合成。將合成的NZ2114基因克隆到pUC57中,用XhoI、AvrII雙酶切后,將NZ2114基因插入畢赤酵母表達(dá)載體pPicZα,位于α因子信號肽突變體序列的下游,得到重組質(zhì)粒pPicZα-NZ2114,并對該質(zhì)粒進(jìn)行限制性酶切及測序鑒定。將重組質(zhì)粒pPicZα-NZ2114經(jīng)PmeI酶切后,電轉(zhuǎn)到畢赤酵母 GS115 中,用含 500~1 000 μg/ml Zeocin(博萊霉素)的YPD培養(yǎng)基篩選,30 ℃培養(yǎng)2~3 d,PCR鑒定篩選多拷貝陽性轉(zhuǎn)化子[4]。

        1.2.2 菌絲霉素NZ2114基因在畢赤酵母中表達(dá)

        將陽性轉(zhuǎn)化子接種于含20 ml BMGY(含Zeocin 500 μg/ml)培養(yǎng)基的試管中,30 ℃、220 r/min搖床培養(yǎng)24 h。將20 ml菌液轉(zhuǎn)移至200 ml BMMY誘導(dǎo)培養(yǎng)基中,30℃、220 r/min繼續(xù)培養(yǎng),每24 h補(bǔ)加1%的含量100%甲醇,共培養(yǎng)120 h。

        1.2.3 菌絲霉素NZ2114組成型表達(dá)菌株的中試發(fā)酵

        一級種子:上述篩選得到的抗菌活性最強(qiáng)的重組菌株斜面菌種,用接菌針將其接入含YPD培養(yǎng)基100 ml的500 ml錐形瓶中,30 ℃、220 r/min培養(yǎng)17 h;二級種子:按10%的接種量接入含有YPD培養(yǎng)基9 L的20 L發(fā)酵罐,同樣條件下培養(yǎng)約24 h。

        50 L罐發(fā)酵:培養(yǎng)在50 L發(fā)酵罐中進(jìn)行,發(fā)酵罐基礎(chǔ)培養(yǎng)基為25 L的YPD培養(yǎng)基,接種前校正pH值電極和溶氧電極,培養(yǎng)過程中保持通氣量大于60 L/min,發(fā)酵過程中菌體利用葡萄糖產(chǎn)酸,用氨水溶液調(diào)節(jié)pH值5.0,培養(yǎng)溫度設(shè)定為30.0℃,起始轉(zhuǎn)速為250 r/min,隨著菌體的生長不斷提高轉(zhuǎn)速,發(fā)酵過程中控制溶氧大于20%,培養(yǎng)96 h后放罐。每24 h取少量發(fā)酵液,測定其菌體濕重、葡萄糖殘?zhí)橇?、蛋白含量、抑菌活性以及MIC值。轉(zhuǎn)速、溫度、pH值和溶氧等參數(shù)由發(fā)酵罐自動檢測,記錄數(shù)據(jù)。

        1.2.4 菌絲霉素NZ2114組成型表達(dá)菌株的中試發(fā)酵產(chǎn)物測定

        發(fā)酵液蛋白濃度測定:取100 μl的發(fā)酵液溶液于小試管中,用雙蒸水調(diào)整體積到1 ml,然后加入5 ml考馬斯亮藍(lán)試劑,充分振蕩混合,5 min后于595 nm測定光吸收值。以1 ml雙蒸水及加5 ml考馬斯亮藍(lán)試劑作為空白對照。

        發(fā)酵液抑菌活性測定:以金黃色葡萄球菌CMCC26003為實(shí)驗(yàn)菌株,將金黃色葡萄球菌懸浮液(OD600nm=0.5~0.6)50 μl與 46 ℃的 LB 固體培養(yǎng)基100 ml混勻后鋪平板,待其凝固后4℃保存,用無菌打孔器打孔,每孔中滴加待測培養(yǎng)發(fā)酵液上清(誘導(dǎo)0、24、48、72、96 h)5 μl,待孔中液體被培養(yǎng)基吸收完全后,上述平板37℃倒置培養(yǎng)過夜(10~12 h)。以同體積的無菌水培養(yǎng)上清為陰性對照,氨芐青霉素(Amp)為陽性對照。

        發(fā)酵液MIC測定:將受試菌CMCC26003在平板劃線,再轉(zhuǎn)接到相應(yīng)的液體培養(yǎng)基中,至對數(shù)生長期,用生理鹽水調(diào)節(jié)受試菌液,使之在OD625nm=0.09~0.1,然后按1∶100稀釋,搖勻。發(fā)酵液菌絲霉素蛋白用微孔濾膜過濾,加入受試菌中,并使終濃度稀釋為1 200、1 500、2 000倍。然后置于37℃條件下,培養(yǎng)12 h??瞻讓φ諡槲醇影l(fā)酵液和氨芐青霉素。陽性對照為氨芐青霉素(100 μg/ml)。

        2 結(jié)果

        2.1 重組載體的構(gòu)建與鑒定

        以pUC57為模板,利用上下游特異性引物F和R,通過PCR方法獲得編碼菌絲霉素NZ2114蛋白的DNA片段。擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)1.5%瓊脂糖凝膠電泳,在500 bps附近得到目的條帶,與預(yù)期大小相符(見圖2)。PCR擴(kuò)增得到的基因片段經(jīng)限制性內(nèi)切酶(Xho I和AvrII)雙酶切后將NZ2114基因連接到畢赤酵母表達(dá)載體pGAPZα上,位于α因子信號肽突變體序列的下游,得到重組質(zhì)粒pPicZα-NZ2114,Zeocin抗性篩選重組轉(zhuǎn)化子并送生物技術(shù)有限公司進(jìn)行DNA序列測定。挑取抗性平板上的多拷貝轉(zhuǎn)化子,30℃、220 r/min,振蕩培養(yǎng)過夜,離心收集菌體進(jìn)行PCR鑒定,結(jié)果(見圖2)顯示:NZ2114基因位于α-factor突變體基因下游,二者總共約500 bps,PCR鑒定所得到編碼重組蛋白菌絲霉素NZ2114的DNA序列與預(yù)期一致,即所挑取重組子呈陽性轉(zhuǎn)化子。

        圖2 PCR擴(kuò)增產(chǎn)物

        2.2 菌絲霉素NZ2114基因在畢赤酵母中表達(dá)

        將上述PCR鑒定呈陽性的重組轉(zhuǎn)化子接種于含20 ml BMGY(含Zeocin 500 μg/ml)培養(yǎng)基中的試管中,30℃、220 r/min搖床培養(yǎng)24 h。將20 ml菌液轉(zhuǎn)移至200 ml BMMY誘導(dǎo)培養(yǎng)基中,30℃、220 r/min繼續(xù)培養(yǎng),每24 h補(bǔ)加1%的含量100%甲醇,共培養(yǎng)120 h后,離心收集發(fā)酵液上清。發(fā)酵液上清的Tricine-SDS-PAGE結(jié)果表明,重組轉(zhuǎn)化子培養(yǎng)上清在4.4 kDa處均有一明顯的蛋白條帶(見圖3),與菌絲霉素NZ2114蛋白的理論分子量一致。瓊脂孔穴擴(kuò)散法測定甲醇誘導(dǎo)重組轉(zhuǎn)化子的抗菌活性結(jié)果也顯示(見圖4),重組轉(zhuǎn)化子甲醇誘導(dǎo)發(fā)酵液上清對金黃色葡萄球菌CMCC26003具有明顯的抑制作用。

        圖3 甲醇誘導(dǎo)畢赤酵母重組表達(dá)菌絲霉素的發(fā)酵液電泳分析

        圖4 誘導(dǎo)畢赤酵母重組表達(dá)菌絲霉素的發(fā)酵液抑菌活性

        2.3 菌絲霉素NZ2114組成型表達(dá)菌株的中試發(fā)酵

        經(jīng)電泳系統(tǒng)篩選得到工程菌畢赤酵母pPicZα-NZ2114,通過種子活化和二級種子擴(kuò)增后,轉(zhuǎn)入50 L發(fā)酵罐進(jìn)行中試發(fā)酵研究。如圖5所示,工程菌畢赤酵母pPicZα-NZ2114接種后0~4 h,菌體濕重緩慢增加,處于適應(yīng)期,4 h后,菌體開始快速生長進(jìn)入指數(shù)生長期,利用葡萄糖產(chǎn)酸導(dǎo)致pH值下降,緩慢流加氨水維持pH值在5.0左右。至發(fā)酵24 h后,加入甲醇誘導(dǎo),隨著發(fā)酵誘導(dǎo)時間的延長,抗菌活性增強(qiáng),甲醇誘導(dǎo)48 h后,菌絲霉素NZ2114在畢赤酵母表達(dá)開始進(jìn)入平臺期,抗菌活性增長緩慢,至甲醇誘導(dǎo)96 h,抗菌活性達(dá)到最大,停止發(fā)酵,取發(fā)酵液離心保存上清。結(jié)果顯示:培養(yǎng)0~24 h階段,細(xì)胞濕重達(dá)到151.23 g/l,菌體細(xì)胞數(shù)最大值達(dá)到37億個/ml,8 h后的殘?zhí)橇烤S持0.05%;甲醇誘導(dǎo)0~96 h階段,發(fā)酵液菌體濕重保持不變,菌體細(xì)胞數(shù)略有下降,蛋白濃度達(dá)到606 μg/ml。

        圖5 50 L發(fā)酵罐種子在不同時間段的生長情況

        2.4 菌絲霉素NZ2114組成型表達(dá)菌株中試發(fā)酵產(chǎn)物的檢測

        取發(fā)酵液離心的上清,經(jīng)XCell SureLock?Mini-Cell蛋白垂直電泳系統(tǒng)檢測結(jié)果顯示,培養(yǎng)上清在4.4 kDa處均有一明顯的蛋白條帶(見圖6),與菌絲霉素NZ2114蛋白的理論分子量一致。瓊脂孔穴擴(kuò)散法測定甲醇誘導(dǎo)菌絲霉素NZ2114蛋白的抗菌活性結(jié)果也顯示(見圖7),重組轉(zhuǎn)化子甲醇誘導(dǎo)發(fā)酵液上清對金黃色葡萄球菌CMCC26003具有明顯的抑制作用。

        圖6 不同時間段畢赤酵母重組表達(dá)菌絲霉素的Tricine-SDS-PAGE分析

        圖7 誘導(dǎo)畢赤酵母重組表達(dá)菌絲霉素的發(fā)酵液抑菌活性

        50 L發(fā)酵罐誘導(dǎo)96 h獲取發(fā)酵液上清,將上清用微孔濾膜過濾,加入受試菌中,并使終濃度稀釋為1 200、1 500、2 000倍。然后置于37℃條件下,培養(yǎng)12 h。空白對照為未加發(fā)酵液和氨芐青霉素。陽性對照為氨芐青霉素(100 μg/ml)。結(jié)果顯示:氨芐青霉素對金黃色葡萄球菌CMCC26003的MIC為0.028 6 μg/ml,菌絲霉素發(fā)酵液誘導(dǎo)96 h對金黃色葡萄球菌CMCC26003的MIC等效于氨芐青霉素0.012 3~0.016 3 μg/ml。

        圖8 誘導(dǎo)96 h時畢赤酵母重組表達(dá)菌絲霉素發(fā)酵液的MIC

        3 討論

        目前,全球抗生素濫用情況日益嚴(yán)重,導(dǎo)致越來越多傳統(tǒng)抗生素耐藥致病菌株的產(chǎn)生,使人們重新審視抗生素的定位和作用。越來越多的國家對抗生素在農(nóng)產(chǎn)品中的添加予以限制和禁止,因此,迫切需要開發(fā)能夠取代傳統(tǒng)抗生素的新型添加劑[5]。防御素具有獨(dú)特的抗菌機(jī)理、不易產(chǎn)生耐藥性和殺菌高效性的優(yōu)勢,并且具有多靶向性和多作用途徑的免疫保護(hù)促進(jìn)作用,有望成為新一代的抗感染藥物,具有廣闊的發(fā)展前景[2]。

        體外實(shí)驗(yàn)研究報(bào)道[6],菌絲霉素對G-和真菌抑菌效果不理想,而對G+的幾個種類(包括鏈球菌屬、葡萄狀球菌屬、腸球菌屬、棒狀桿菌屬和桿狀菌屬)具有殺傷作用,尤其是菌絲霉素對肺炎鏈球菌(S.pneumoniae)的MIC僅為0.125 mg/l[2],與萬古霉素和青霉素的殺菌速率相當(dāng)[7]。菌絲霉素具有良好的鹽離子耐受能力,在生理鹽離子濃度下同樣具有殺菌活性。此外,它還具有良好的pH值穩(wěn)定性和熱穩(wěn)定性,在pH值2.0~10.0范圍內(nèi),菌絲霉素對金黃色葡萄球菌均有抑菌活性;100℃熱處理1 h后,亦能抵抗木瓜蛋白酶和胃蛋白酶的降解[8]。此外,菌絲霉素對鼠類L929成纖維細(xì)胞、正常的人角質(zhì)化表皮細(xì)胞(NHEK)、肺成纖維細(xì)胞和人支氣管上皮細(xì)胞都沒有細(xì)胞毒性,對人血紅細(xì)胞、兔血紅細(xì)胞也沒有溶血性[6]。

        研究開發(fā)防御素的主要任務(wù)是尋求低成本且獲得大量高活性抗菌肽的工藝。天然提取的防御素非常有限,化學(xué)合成成本高,且其分子中含有3~4對二硫鍵,化學(xué)合成也比較困難,不足以滿足臨床需要。通過基因工程表達(dá)技術(shù)以其低成本、重組肽活性高和可以對基因進(jìn)行改造等優(yōu)勢,在防御素表達(dá)中得到迅速發(fā)展和應(yīng)用。畢赤酵母表達(dá)系統(tǒng)是真核表達(dá)系統(tǒng),已有多種外源蛋白在酵母表達(dá)系統(tǒng)中成功表達(dá)并得以應(yīng)用。它具有完備的基因表達(dá)調(diào)控機(jī)制、蛋白質(zhì)加工修飾及分泌能力,而且不會產(chǎn)生內(nèi)毒素[9]。此方法獲得的菌絲霉素方便快捷,不會因內(nèi)毒素而導(dǎo)致動物機(jī)體中毒和腹瀉;同時,組成型區(qū)別于甲醇誘導(dǎo)型的酵母表達(dá)方式,培養(yǎng)簡單,無需更換碳源,也可以避免揮發(fā)性的毒性物質(zhì)甲醇污染動物機(jī)體和環(huán)境[5]。

        4 結(jié)語

        本研究基于菌絲霉素具有良好的穩(wěn)定性,通過畢赤酵母表達(dá)系統(tǒng)表達(dá)菌絲霉素NZ2114基因,通過信號肽將其分泌到細(xì)胞外,并進(jìn)行了50 L發(fā)酵罐的中試研究。結(jié)果顯示:菌體濕重后期增長緩慢,其主要原因是菌絲霉素NZ2114在表達(dá)的過程中,隨著菌絲霉素NZ2114蛋白濃度不斷上升,其表現(xiàn)出對酵母宿主菌的毒性作用,當(dāng)表達(dá)的菌絲霉素NZ2114蛋白濃度達(dá)到一定濃度后,宿主菌停止生長,菌絲霉素NZ2114表達(dá)進(jìn)入平臺期后結(jié)束發(fā)酵;菌絲霉素NZ2114發(fā)酵液稀釋1 500~2 000倍對金黃色葡萄球菌CMCC26003具有抑制作用;該發(fā)酵周期短,培養(yǎng)簡單方便,成本低。后期主要提高菌絲霉素NZ2114基因工程菌的生物量及其表達(dá)量,通過優(yōu)化發(fā)酵培養(yǎng)基的碳氮比,進(jìn)一步降低生產(chǎn)成本,為日后的規(guī)?;笊a(chǎn)和應(yīng)用奠定基礎(chǔ);同時促進(jìn)抗菌肽菌絲霉素在獸藥、醫(yī)藥、生物農(nóng)藥、生物飼料添加劑、天然食品防腐劑、動植物抗病基因工程方面等領(lǐng)域上的發(fā)展。

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