■ 王 勇 張錦玲 張立明 郭 鵬 袁麗佳 劉大程
(1.內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學獸醫(yī)學院,內(nèi)蒙古呼和浩特010018;2.農(nóng)業(yè)部動物臨床診療技術(shù)重點實驗室,內(nèi)蒙古呼和浩特010018)
酵母菌在特殊的發(fā)酵工藝下能夠產(chǎn)生多種營養(yǎng)活性物質(zhì),如葡聚糖、甘露聚糖、氨基酸、多肽、有機酸等,這些營養(yǎng)活性物質(zhì)在調(diào)控瘤胃功能和提高反芻動物免疫功能方面發(fā)揮積極的功效[1-2]。但前期科研工作中也發(fā)現(xiàn),復合酵母菌培養(yǎng)物在固態(tài)發(fā)酵過程存在著缺陷:培養(yǎng)物中活性物質(zhì)的產(chǎn)生規(guī)律及含量不清楚;發(fā)酵工藝多依靠技術(shù)工人的經(jīng)驗來控制,缺乏科學數(shù)據(jù)的支持;發(fā)酵結(jié)束后復合菌培養(yǎng)物質(zhì)量的均一性較差,產(chǎn)品質(zhì)量不穩(wěn)定。
現(xiàn)階段,對固態(tài)發(fā)酵動力學模型的研究大多在實驗室條件下進行,且以β-葡聚糖、甘露聚糖為產(chǎn)物建立動力學模型研究鮮見報道,菌體生長動力學模型建立時,多以測定菌體細胞組分含量為主,如葡萄糖胺[3]、核酸[4]和麥角固醇[5],但這些方法通常較復雜,且發(fā)酵基質(zhì)成分對結(jié)果也可能會產(chǎn)生干擾[6]。M.R.Terebiznik等[6-8]通過測定發(fā)酵過程中發(fā)酵料干重的變化成功建立了估算發(fā)酵不同階段菌體生物量的數(shù)學模型。
綜上所述,本研究建立的動力學模型以生產(chǎn)實際為基礎(chǔ),通過測定發(fā)酵基質(zhì)干重的變化估算菌體生物量,建立菌體生成動力學模型,以β-葡聚糖、甘露聚糖為活性產(chǎn)物建立產(chǎn)物生成動力學模型,應用這些模型對發(fā)酵工藝進行優(yōu)化,對發(fā)酵過程進行預測及控制,為生產(chǎn)優(yōu)質(zhì)綠色飼料添加劑提供有力的理論基礎(chǔ)。
本研究分別于2014年9月、10月和11月在內(nèi)蒙古自治區(qū)呼和浩特市某生物科技有限公司發(fā)酵車間進行。
釀酒酵母菌(Saccharomyces cerevisiae,SC)BC株、XR4株,均來源于內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學獸醫(yī)學院反芻動物微生態(tài)制劑項目組菌種庫;酵母菌活化培養(yǎng)基、麥芽汁培養(yǎng)基來自廣東環(huán)凱微生物科技有限公司;固態(tài)發(fā)酵培養(yǎng)基[9]:培養(yǎng)基的基質(zhì)成分及配比為麩皮52.69%、玉米片20.45%、玉米粉16.07%、米糠 4.09%、棉粕1.86%、豆粕 3.99%和無機鹽 0.85%;β-葡聚糖、甘露聚糖、鉛化玻璃珠(粒徑0.45~0.6 mm,英國Sigma-Aldrich公司)。
安捷倫LC1100液相色譜儀(原產(chǎn)地美國)、T6系列紫外可見分光光度計(北京普析通用儀器有限責任公司)、Thermo Scientific生物安全柜(原產(chǎn)地德國)、HPS-160恒溫生化培養(yǎng)箱(哈爾濱市東聯(lián)電子技術(shù)開發(fā)有限公司生產(chǎn))、Sigma 2-16pk高速低溫冷凍離心機(SIGMA公司)、Sartorius精密電子分析天平(德國賽多利斯公司生產(chǎn))。
試驗菌種制備:取 4℃ 保存的BC、XR4斜面菌種3環(huán),接種于含有300 ml無菌麥芽汁培養(yǎng)基的1.5 L三角瓶中,于30℃、180 r/min搖床培養(yǎng)24 h后接種于50 L液體發(fā)酵罐中,30℃、180 r/min轉(zhuǎn)速下培養(yǎng)48 h。
固態(tài)發(fā)酵:發(fā)酵料水質(zhì)量比為1∶0.52,充分攪拌后,將混合好的發(fā)酵料堆放于發(fā)酵池(2 m×1.5 m×1.5 m)內(nèi),料高55 cm。
1.3.1 采樣
用采樣器每隔3 h從固態(tài)發(fā)酵料表層下15~20 cm處均勻取樣100 g,緯線圈法[10]取樣225 g,混合均勻后,平均分為9份,3份樣品用于測定干重,3份樣品用于測定葡聚糖和甘露聚糖,剩下3份在80℃條件下烘干至恒重,用于測定底物總糖。
1.3.2 底物干重測定
稱取不同時間的樣品16 g,80℃烘干至恒重,稱重[7]。
1.3.3 葡聚糖和甘露聚糖含量的測定
酵母破壁:渦流微珠破壁法[11]。
收集多糖:處理后的樣品用冷卻的去離子水充分清洗,收集玻璃珠,并收集洗液,重復5次。沉淀物加入3 ml去離子水,充分振蕩,收集洗液,重復5次,合并洗液。將所得液體55℃靜置24 h蒸發(fā)水分[12]。
酸水解:72%(w/w)的硫酸溶液進行酸水解[13]。
單糖含量測定:采用液相色譜-示差折光檢測器測定樣品及校正多糖中甘露糖和無水葡萄糖含量[14]。
結(jié)果計算:以校正多糖的含量為橫坐標,峰面積為縱坐標制備校正曲線,得出回歸方程。樣品的峰面積代入回歸方程中計算得到酵母β-葡聚糖及甘露聚糖含量。
1.3.4 底物總糖測定
采用硫酸蒽酮法測定底物總糖[15]。
2.1.1 底物干重變化與菌體生物量關(guān)系的確定在固態(tài)發(fā)酵過程中,將底物烘干后,底物組成為[8]:
式中:W——發(fā)酵料干重(g);
S——固態(tài)基質(zhì)干重(g);
B——菌體生物量(g);
P——產(chǎn)物質(zhì)量(g);
dW/dt——發(fā)酵料干重變化率(g/h);
dS/dt——固態(tài)基質(zhì)消耗速率(g/h);
dB/dt——菌體生長速率(g/h);
dP/dt——產(chǎn)物生成速率(g/h)。
在固態(tài)發(fā)酵過程中,底物的消耗主要由于菌體生長、維持菌體生長和生成產(chǎn)物造成[15],因此,可將式(2)變換為:
其中:
式中:(dS/dt)g——菌體生長消耗固態(tài)基質(zhì)速率(g/h);
(dS/dt)m——菌體維持消耗固態(tài)基質(zhì)速率(g/h);
(dS/dt)p——產(chǎn)物生成消耗固態(tài)基質(zhì)速率(g/h);
Yg——菌體生物量相關(guān)系數(shù);
Yp——產(chǎn)物生成相關(guān)系數(shù);
-km——維持菌體相關(guān)系數(shù)。
通過式(1)~(6)可得出底物干重與菌體生物量的關(guān)系:
其中:
式中:γ、δ、k1和k2均為方程常數(shù)。
由Borzani等研究[8]可知,固態(tài)發(fā)酵過程中底物干重變化主要可分為2個階段,結(jié)合圖1、圖2中底物干重變化可知,0~21 h為第1階段,21~30 h為第2階段,方程分別為:
式中:W1——第1階段發(fā)酵料干重(g);
W2——第2階段發(fā)酵料干重(g);
W0——發(fā)酵料起始干重(g);
B0——初始菌體生物量(g);
μ——菌體生長比生長率(h-1);
t——發(fā)酵時間(h);
ta——第1階段結(jié)束時間(h);
tb——第2階段結(jié)束時間(h);
kt——方程常數(shù)。
由式(7)~(11)可得底物干重的變化與菌體生物量的關(guān)系式:
式中:Bs——不同時間菌體生物量(g)。
將底物干重結(jié)果帶入式(10)和式(11)中,利用Origin 8軟件進行曲線擬合,不同階段擬合曲線見圖1和圖2,擬合方程式:
方程(13)和(14)的R2分別為0.974 9和0.929 9,方程均極顯著(P<0.000 1),表明方程計算所得干重值可以分別解釋第1階段97.49%的干重變化和第2階段92.99%的干重變化,曲線擬合度較好。
由式(10)、(12)、(13)和(15)可得第1階段菌體生物量的表達式:
由式(11)、(12)、(14)和(16)可得第2階段菌體生物量的表達式:
圖1 第1階段干重變化擬合曲線
圖2 第2階段干重變化擬合曲線
2.1.2 Logistic模型的建立
Logistic模型是一個典型的S型曲線,通常被看作是一個表現(xiàn)細胞生長與營養(yǎng)物質(zhì)之間的非線性關(guān)系的經(jīng)驗方程,能很好地反映該過程中菌體濃度增加對自身生長的抑制作用[16],因此,采用此模型描述復合酵母生長動力學特性,Logistic方程[17]:
式中:Bm——最大菌體生物量(mg/g);
μm——菌體生長最大比生長率(h-1)。
通過方程(17)和(18)計算所得生物量數(shù)據(jù)利用Origin 8軟件進行擬合,參數(shù)估計值見表1。
表1 Logistic方程參數(shù)估計值
則復合酵母菌固態(tài)發(fā)酵菌體生長動力學模型為:
方程(21)的R2為0.959 8,方程極顯著(P<0.001),表明方程曲線擬合度較好,可以描述復合酵母菌在發(fā)酵過程中的生長情況。
本研究用Luedeking-Piret方程來描述β-葡聚糖、甘露聚糖和菌體生長的關(guān)系[18],即:
α、β為動力學參數(shù),當α=0,β≠0時,產(chǎn)物生成與菌體生長為非偶聯(lián)型;α≠0,β≠0時,產(chǎn)物生成與菌體生長為部分偶聯(lián)型;α≠0,β=0時,產(chǎn)物生成與菌體生長為偶聯(lián)型。本研究中,β-葡聚糖和甘露聚糖為酵母細胞壁的主要成分,其中β-葡聚糖為酵母細胞壁的主要多糖[19-21],由于以β-葡聚糖和甘露聚糖建立Luedeking-Piret方程研究較少,因此,對模型的建立進行分類討論。
①假設(shè)β-葡聚糖和甘露聚糖的生成模型為偶聯(lián)型,即當β=0時,式(22)可簡化為:
當t=0時,P=P0,將方程(19)帶入方程(23)中,可得:
將不同時間點葡聚糖和甘露聚糖含量的P、B,以及P0、B0帶入式(25)中,在軟件1stOpt15PRO中利用Levenberg-Marquardt法和通用全局優(yōu)化法求回歸系數(shù),可得:α1=4.09,α2=1.27。
②假設(shè)β-葡聚糖和甘露聚糖的生成模型為部分偶聯(lián)型,即β≠0,
當t=0時,P=P0,將方程(19)帶入方程(22)中,可得:
積分可得:
式中:P0——起始產(chǎn)物質(zhì)量(g)。
將不同時間點葡聚糖和甘露聚糖含量的P、B以及P0、B0帶入式(27)中,在軟件1stOpt15PRO中利用Levenberg-Marquardt法和通用全局優(yōu)化法求回歸系數(shù),可得:α1=5.083 5,β1=-3.23×10-5;α2=2.38,β2=-2.17×10-4。
由于β1和β2的值近似為0,因此,可知兩種產(chǎn)物的生成與菌體的生長為偶聯(lián)型,則可得:
β-葡聚糖生成模型:
甘露聚糖生成模型:
方程(28)和(29)R2分別為0.913 0和0.906 5,方程均極顯著(P<0.000 1),表明所選方程可以較好的反映產(chǎn)物生成的實際情況,相關(guān)性結(jié)果見圖3和圖4。
圖3 β-葡聚糖生成與菌體生物量相關(guān)性
圖4 甘露聚糖生成與菌體生物量相關(guān)性
常用的底物消耗動力學模型是基于底物消耗物料恒算建立的Luedeking-Piret/like方程式[22],即:
式中:St——底物總糖含量(mg/g);
St0——起始底物總糖含量(mg/g);
YBt——總糖用于菌體生長的得率常數(shù);
k——維持常數(shù)。
酵母發(fā)酵過程中,總糖的消耗與產(chǎn)物合成僅有間接關(guān)系,假設(shè)基質(zhì)的消耗用于產(chǎn)物合成的比例很小,可忽略不計,認為總糖的消耗僅用于菌體的生長,所以式(30)可簡化為:
將式(19)帶入式(31)積分得:
將不同時間點的B、St和B0帶入式(32)中,在軟件1stOpt15PRO中利用Levenberg-Marquardt法和通用全局優(yōu)化法求回歸系數(shù),可得:YBt=0.112,S0=128.12。
則可得底物消耗動力學模型為:
方程(33)R2為0.949 6,方程均極顯著(P<0.000 1),表明所選方程可以很好的反映底物消耗的實際情況,相關(guān)性分析見圖5。
圖5 底物總糖消耗與菌體生物量相關(guān)性
為了驗證模型的準確性,在相同條件下進行復合酵母菌固態(tài)發(fā)酵的重復實驗3次,實驗結(jié)果取平均值,與動力學模型計算值進行比較,結(jié)果見表2。
表2 復合酵母菌固態(tài)發(fā)酵菌體生物量、甘露聚糖含量、β-葡聚糖含量和底物總糖含量動力學模型理論值與實際值對比
由表2可知,發(fā)酵料干重、甘露聚糖含量、β-葡聚糖含量和底物總糖含量的相對誤差基本都小于10%,說明建立的動力學模型能較好地描述生產(chǎn)實際中復合酵母菌固態(tài)發(fā)酵過程。
①以固態(tài)發(fā)酵料干重變化為基礎(chǔ)建立了復合酵母菌菌體生物量生長Logistic動力學模型,B=方程極顯著(P<0.001),通過模型驗證,干重模型平均相對誤差為0.94%,間接表明在生產(chǎn)實際中復合酵母菌的生長符合Logistic方程。
②通過對Luedeking-Piret方程參數(shù)α和β分類討論并計算,發(fā)現(xiàn)β-葡聚糖與甘露聚糖的生成與酵母菌為偶聯(lián)型,其中β-葡聚糖生成模型P=80.79+4.09甘露聚糖生成模型P=R2分 別 為0.913 0和0.906 5,平均相對誤差分別為4.71%和3.7%,方程均極顯著(P<0.000 1)。底物消耗動力學模 型R2為0.949 6,平均相對誤差為6.63%,方程極顯著(P<0.000 1),說明模型可較好地描述發(fā)酵過程,對優(yōu)化實際生產(chǎn)工藝,控制和預測發(fā)酵過程具有重要的參考價值。