黨慧敏,劉艷巧*,吳曉玲,劉潤(rùn)俠,安 鵬
(1西安交通大學(xué)第二附屬醫(yī)院中醫(yī)科,西安 710004;2西安交通大學(xué)第二附屬醫(yī)院婦產(chǎn)科;*通訊作者,E-mail:liuyanqiao@sohu.com)
應(yīng)激(stress)是指機(jī)體在受到各種內(nèi)外環(huán)境刺激時(shí)所出現(xiàn)的非特異性全身反應(yīng),其對(duì)于生殖能夠產(chǎn)生較為不利的影響,通常都與妊娠失敗密切相關(guān)且還會(huì)影響子代的健康[1,2],以往對(duì)聲波應(yīng)激模型研究表明,圍著床期接受應(yīng)激后會(huì)使流產(chǎn)率增加[3],而其可能的機(jī)制與母胎界面的炎性細(xì)胞募集等有關(guān)[4];胚胎是一種半同種異體移植物,但大多數(shù)都不被母體免疫系統(tǒng)所排斥,而是維持至分娩,即母胎免疫耐受[5],而補(bǔ)體系統(tǒng)對(duì)于適應(yīng)性免疫具有調(diào)節(jié)作用[6],活化的補(bǔ)體成分如C3a、C5a等可趨化招募炎性細(xì)胞,炎性細(xì)胞經(jīng)可溶性血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子受體(fms-like tyrosine kinase-1,sFlt-t)途徑如血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)表達(dá)下降導(dǎo)致胎盤發(fā)育不足,發(fā)生胚胎損傷,導(dǎo)致復(fù)發(fā)性自然流產(chǎn)(recurrent spontaneous abortion,RSA)及宮內(nèi)發(fā)育遲緩(intrauterine growth restriction,IUGR)的發(fā)生[7]。CBA/J(雌)×DBA/2J(雄)小鼠為國(guó)際上公認(rèn)的自發(fā)性流產(chǎn)經(jīng)典模型,與人類RSA臨床表現(xiàn)類似,本文以其為研究對(duì)象,明確補(bǔ)體激活在應(yīng)激后自發(fā)性流產(chǎn)孕鼠早期流產(chǎn)及胎兒宮內(nèi)發(fā)育遲緩中的作用。
選擇8周齡未經(jīng)產(chǎn)雌性CBA/J小鼠80只,雄性DBA/2J小鼠30只及BALB/c小鼠10只,體質(zhì)量18-22 g,均購(gòu)自北京華阜康實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心,并飼養(yǎng)于SPF級(jí)環(huán)境中。將雌性CBA/J小鼠與雄性DBA/2J及BALB/c小鼠按2∶1于前晚6∶00合籠,次日晨8∶00用鑷子檢查陰栓,可見陰栓者即為妊娠0.5 d,雌性CBA/J小鼠與雄性DBA/2J小鼠合籠后成功受孕57只,受孕率為95%,將成功受孕的自然流產(chǎn)模型CBA/J(雌)×DBA/2J(雄)孕鼠編號(hào)后按隨機(jī)化原則分為模型組、低應(yīng)激組及高應(yīng)激組,每組各19只。雌性CBA/J小鼠與雄性BALB/c小鼠合籠后成功受孕20只,設(shè)為正常對(duì)照組,模型組小鼠平均周齡(7.32± 0.82)周,平均體質(zhì)量(19.89±1.38)g。高應(yīng)激組平均周齡(7.58±0.69)周,平均體質(zhì)量(20.30±1.23)g。低應(yīng)激組平均周齡(7.42±0.77)周,平均體質(zhì)量(20.05±1.32)g。對(duì)照組平均周齡(7.55±0.60)周,平均體質(zhì)量(20.28±1.28)g。各組小鼠年齡及體質(zhì)量差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
參照Blois等[8]聲波應(yīng)激模型方法,低應(yīng)激組孕鼠于妊娠5.5 d給予持續(xù)24 h聲頻為460 Hz,1 s/次,間隔14 s(由 Mathworks Matlab R2009a軟件控制),分貝強(qiáng)度為88 dB(由優(yōu)利德電子(上海)有限公司生產(chǎn)UT351分貝測(cè)量?jī)x測(cè)定)的聲波刺激;高應(yīng)激組孕鼠于妊娠5.5 d給予持續(xù)24 h聲頻為460 Hz,5 s/次,間隔 10 s,分貝強(qiáng)度為 88 dB 的聲波刺激;對(duì)照組及模型組孕鼠均不接受任何聲波刺激。
將各組孕鼠分為兩批取材,首先于妊娠7.5 d對(duì)各組孕鼠各14只行眶下靜脈取血2 ml,檢測(cè)其血清C3a及VEGF、sFlt-1水平,同時(shí)留取各組孕鼠胎盤蛻膜組織測(cè)定VEGF蛋白表達(dá)水平;最后于妊娠13.5 d處死對(duì)照組孕鼠6只及模型組、低、高應(yīng)激組孕鼠各5只,分別記錄活胎數(shù)、死胎數(shù),稱重胚胎質(zhì)量,并計(jì)算胚胎吸收率。
1.3.1 血清C3a及VEGF、sFlt-1檢測(cè) 將各組孕鼠2 ml靜脈血1 500 r/min離心5 min后取上清,采用雙抗體夾心法酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(ELISA)分別檢測(cè)所采集血清標(biāo)本的C3a、VEGF、sFlt-1水平,操作按試劑盒(購(gòu)自福州藍(lán)圖生物科技有限公司)的說明書進(jìn)行;根據(jù)吸光度及標(biāo)準(zhǔn)曲線換算小鼠血清C3a、VEGF及sFlt-1質(zhì)量濃度。
1.3.2 蛻膜組織VEGF蛋白表達(dá)測(cè)定 將各組孕鼠胎盤蛻膜組織固定于0.01 mg/ml甲醛中,經(jīng)常規(guī)脫水、石蠟包埋,4μm連續(xù)切片后,常規(guī)脫蠟,梯度酒精中浸泡,滴加3%的雙氧水15 min以滅活內(nèi)源性酶;熱修復(fù)抗原;滴加兔抗VEGF多克隆抗體(一抗,滴度1∶100,Abcam公司生產(chǎn)),4℃孵育過夜;滴加有辣根過氧化物酶標(biāo)記的抗兔IgG抗體(二抗,北京中杉金橋生物有限公司生產(chǎn)),37℃孵育45 min,DBA顯色,鏡下控制反應(yīng)時(shí)間,顯色后脫水,透明,封片。光鏡下觀察,VEGF表達(dá)陽性為棕黃色顆粒。陰性對(duì)照用PBS代替一抗,其他步驟相同。選取同批染色切片,每張切片在光鏡下隨機(jī)取5個(gè)不同視野,以切片染色的背景作對(duì)照,用OLYMPUS CX31病理圖文分析系統(tǒng)測(cè)定陽性信號(hào)的積分光密度(integral optical density,IOD)值,以此反映組織切片中相應(yīng)陽性物質(zhì)的相對(duì)表達(dá)量。
1.3.3 胚胎吸收率及重量測(cè)定 將各組孕鼠于麻醉處死后記錄活胎數(shù)、死胎數(shù),稱重胚胎質(zhì)量,并計(jì)算胚胎吸收率[胚胎吸收率=死胎數(shù)/(活胎數(shù)+死胎數(shù))×100%]。
死胎判斷標(biāo)準(zhǔn)[9]:丟失胚胎為體積明顯縮小,或失去正常胚胎形狀,胎兒胎盤單位顏色暗紅,母胎界面有出血水腫。
將各組孕鼠處死后,觀察并記錄其子宮、胚胎、胎盤、羊膜囊的情況。正常對(duì)照組(圖1A,見第1001頁)可見正常胚胎粗大如串珠狀,胚胎呈淡紅色,胚胎體積及形態(tài)正常,母胎界面無出血及水腫;應(yīng)激組(圖1B、1C,見第1001頁)可見羊膜囊較小,胎兒胎盤單位顏色暗紅,母胎界面有明顯出血或可見部分子宮呈竹節(jié)樣改變,胚胎呈黑褐色,僅見到胚胎著床點(diǎn),胚胎已完全或部分消失。
圖1 丟失胚胎的判定(妊娠13.5 d)Figure 1 Macroscopic evaluation of fetal loss(gestational 13.5 d)
圖2 免疫組織化學(xué)檢測(cè)各實(shí)驗(yàn)組蛻膜組織的VEGF表達(dá)水平(×400)Figure 2 Expression of VEGF in decidual tissue by immunohistochemistry(×400)
我們進(jìn)一步分析各組胚胎吸收率和胚胎重量,結(jié)果顯示:相比對(duì)照組,模型組胚胎吸收率明顯升高;低、高應(yīng)激組與模型組分別相比較,其胚胎吸收率均明顯升高;且高應(yīng)激組與低應(yīng)激組相比,胚胎吸收率明顯增高,各組間差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P<0.05,見表1)。各組胚胎重量相比較,模型組顯著低于對(duì)照組;模型組胚胎重量值高于低、高應(yīng)激組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;高應(yīng)激組與低應(yīng)激組相比,其胚胎重量明顯下降,各組間差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P<0.05)。
表1 各組胚胎吸收率及胚胎重量的比較Table 1 Comparison of embryo absorption rate and embryo weight among four groups
各組血清C3a及sFlt-1水平相比較,模型組均明顯高于對(duì)照組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,見表2);各應(yīng)激組與模型組相比,其血清C3a及sFlt-1水平均顯著升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);而高應(yīng)激組血清C3a及sFlt-1水平均明顯高于低應(yīng)激組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。同時(shí),各組血清VEGF水平相比,模型組低于對(duì)照組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),應(yīng)激組其血清VEGF水平相比模型組均明顯下降(P<0.05),高應(yīng)激組血清VEGF水平相比低應(yīng)激組顯著降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。
表2 各組血清C3a、VEGF及sFlt-1水平的比較(±s)Table 2 Comparison of serum C3a,VEGF and sFlt-1 levels among four groups(±s)
表2 各組血清C3a、VEGF及sFlt-1水平的比較(±s)Table 2 Comparison of serum C3a,VEGF and sFlt-1 levels among four groups(±s)
與對(duì)照組比較,ΔP<0.05;與模型組比較,#P<0.05;與低應(yīng)激組比較,*P<0.05
高應(yīng)激組 201.16±103.2523.55±7.172 797.00±396.57
在各組小鼠蛻膜中,VEGF主要表達(dá)于腺上皮細(xì)胞和血管內(nèi)皮細(xì)胞胞質(zhì)中(圖2,見第1002頁),模型組小鼠蛻膜VEGF陽性染色明顯低于正常對(duì)照組,組間表達(dá)差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),應(yīng)激后自然流產(chǎn)小鼠蛻膜VEGF積分光密度值相比模型組明顯下降,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),其中高應(yīng)激組小鼠蛻膜VEGF表達(dá)水平與低應(yīng)激組比較明顯降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,見表3)。
表3 各組蛻膜VEGF表達(dá)水平的比較(±s)Table 3 Comparison of decidual VEGF expression levels among four groups(±s)
表3 各組蛻膜VEGF表達(dá)水平的比較(±s)Table 3 Comparison of decidual VEGF expression levels among four groups(±s)
與對(duì)照組比較,ΔP<0.05;與模型組比較,#P<0.05;與低應(yīng)激組比較,*P<0.05
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固有免疫系統(tǒng)為抵御外源性微生物侵害機(jī)體的第一道防線,補(bǔ)體是固有免疫的重要組成成員。補(bǔ)體系統(tǒng)經(jīng)經(jīng)典途徑、旁路途徑、甘露糖結(jié)合凝集素(MBL)途徑所激活,形成C3轉(zhuǎn)化酶,將C3分解為C3a和C3b,C3a脫落進(jìn)入體液,而C3b分別與C4b2b和C3bBb結(jié)合組成C5轉(zhuǎn)化酶C4b3b2b和C3b3bBb,進(jìn)而形成攻膜復(fù)合物(MAC)[10]?;罨疌5a和 C3a是強(qiáng)烈的過敏性毒素,可招募激活炎性細(xì)胞,導(dǎo)致或增強(qiáng)炎癥反應(yīng)。相關(guān)研究發(fā)現(xiàn),CBA/J(雌)×DBA/2J(雄)自然流產(chǎn)模型小鼠胚胎吸收率明顯較正常對(duì)照組高,胎盤及存活胚胎的重量顯著低于正常組;胚胎殘骸、胎盤及蛻膜的單核細(xì)胞有大量C3沉著,炎性細(xì)胞的浸入。補(bǔ)體抑制劑Crry-Ig或B因子敲除或抗B因子抗體處理后均可顯著降低胚胎吸收率、胚胎重量增長(zhǎng),減少C3的沉著和炎性細(xì)胞的浸潤(rùn),與正常組無差異,表明RSA及IUGR發(fā)生與補(bǔ)體異常激活密切相關(guān)[11,12]。本研究結(jié)果顯示,自發(fā)流產(chǎn)模型組孕鼠胚胎吸收率相比正常對(duì)照組明顯升高,胚胎重量低于對(duì)照組,同時(shí)血清C3a水平較對(duì)照組明顯升高,亦證明自然流產(chǎn)及IUGR的發(fā)病與補(bǔ)體異常激活關(guān)系密切。
近年來研究顯示,補(bǔ)體異常激活可通過sFlt-1途徑導(dǎo)致RSA的發(fā)生。胎盤正常發(fā)育依賴于血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子(VEGF)、胎盤生長(zhǎng)因子(PIGF)及相應(yīng)的受體,體內(nèi)外研究發(fā)現(xiàn),補(bǔ)體異常激活型RSA可能與血管生成因子紊亂有關(guān),sFlt-1具有血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子受體Ⅰ樣結(jié)合VEGF的能力,但無生物學(xué)功能,具有強(qiáng)烈的抗血管生成作用[13]。自然流產(chǎn)模型小鼠血清游離VEGF水平明顯低于正常組,不足以滿足妊娠的需求,而流產(chǎn)組sFlt-1較對(duì)照組明顯升高;流產(chǎn)組經(jīng)補(bǔ)體抑制劑Crry-Ig處理,可阻止sFlt-1升高,游離VEGF水平與對(duì)照組相當(dāng),妊娠得以維持,且胚胎重量相比自然流產(chǎn)明顯升高,表明sFlt-1升高是補(bǔ)體異常激活的結(jié)果,是RSA及IUGR的重要機(jī)制。本研究結(jié)果表明,模型組相比正常組血清sFlt-1升高,血清VEGF水平下降同時(shí)胎盤蛻膜VEGF表達(dá)減少,影響胚胎原始血管形成、胚胎發(fā)育、胎盤形成等過程,從而導(dǎo)致RSA及IUGR的發(fā)生。
研究表明,軀體或心理的應(yīng)激都會(huì)使神經(jīng)、內(nèi)分泌及免疫系統(tǒng)受到影響,而這些系統(tǒng)的平衡正是妊娠維持所必需的,在通常狀態(tài)下,細(xì)胞應(yīng)激或組織受損,細(xì)胞里一般就會(huì)釋放一些分子并且與固有免疫細(xì)胞表面上的模式識(shí)別受體(pattern recognition receptor,PRRs)相結(jié)合,進(jìn)而引發(fā)炎性反應(yīng)[14],通過研究接受應(yīng)激后的小鼠模型表明,其成熟的子宮樹突狀細(xì)胞數(shù)目增長(zhǎng),子宮引流淋巴結(jié)中Treg細(xì)胞下降,并且分泌炎性細(xì)胞因子如TNF-α、IFN-γ的Th1細(xì)胞克隆擴(kuò)增增長(zhǎng),從而嚴(yán)重影響了胚胎耐受[15],其中精神應(yīng)激不但能夠?qū)е虏辉卸夷軐?dǎo)致流產(chǎn),有研究表明聲波應(yīng)激能夠?qū)е氯焉镌缙谕N異體胚胎的丟失,可能與其導(dǎo)致Th1/Th2比值升高有關(guān)[16],其能夠減少高和低胚胎丟失模型鼠中大血管分布密度,在高胚胎丟失模型中,聲波應(yīng)激可使表達(dá)VCAM-1的血管分布顯著增加[17]。通過本研究結(jié)果顯示,接受聲波應(yīng)激后自然流產(chǎn)孕鼠相比較模型組,胚胎吸收率明顯升高,存活胚胎重量進(jìn)一步下降,同時(shí)血清C3a及sFlt-1水平異常增高,且升高水平與其接受應(yīng)激的強(qiáng)度呈正比,血清VEGF水平及蛻膜VEGF表達(dá)顯著下降,分析其導(dǎo)致高胚胎流失率并加劇IUGR發(fā)生的作用機(jī)制可能與應(yīng)激導(dǎo)致補(bǔ)體過度活化產(chǎn)生過多的C3a趨化激活中性粒細(xì)胞或單核細(xì)胞,激活的中性粒細(xì)胞或單核細(xì)胞經(jīng)sFlt途徑導(dǎo)致胎盤蛻膜VEGF表達(dá)減少,胎盤血管形成不足,血管重塑障礙有關(guān),且病情程度與應(yīng)激程度呈正相關(guān)。
總之,本研究證實(shí)補(bǔ)體異常激活在應(yīng)激致RSA早期流產(chǎn)、IUGR中均發(fā)揮重要作用,不同程度的應(yīng)激刺激導(dǎo)致補(bǔ)體系統(tǒng)經(jīng)經(jīng)典途徑或旁路途徑異常激活,且活化的程度與其受應(yīng)激的強(qiáng)度成正比,異?;罨难a(bǔ)體成分趨化招募炎性細(xì)胞,炎性細(xì)胞經(jīng)sFlt途徑導(dǎo)致胎盤發(fā)育不足導(dǎo)致胚胎損傷,導(dǎo)致早期流產(chǎn)及IUGR發(fā)生,而應(yīng)激導(dǎo)致補(bǔ)體過度活化等具體機(jī)制有待進(jìn)一步研究。
[1]Nakamura K,Sheps S,Arck PC.Stress and reproductive failure:past notions,present insights and future directions[J].J Assist Reprod Genet,2008,25(2/3):47-62.
[2]Seckl J,Meaney M.Glucocorticoid programming[J].Ann NY Acad Sci,2004,1032(1):63-84.
[3]Blois S,Tometten M,Kandil J,etal.Intercellular adhesion molecule-1/LFA-1 cross talk isa proximate mediator capable of disrupting immune integration and tolerance mechanism at the feto-maternal interface in murine pregnancies[J].J Immunol,2005,174(4):1820-1829.
[4]Arck P,Merali F,Manuel J,etal.Stress-triggered abortion:inhibition of protective suppression and promotion of tumor necrosis factor-alpha(TNF-alpha)release as a mechanism triggering resorptions in mice[J].Am.J Reprod Immunol,1995,33(1):74-80.
[5]Girardi G,Prohaszka Z,Bulla R,etal.Complement activation in animal and human pregnancies as a model for immunological recognition[J].Mol Immunol,2011,48(14):1621-1630.
[6]Sj?berg A,Trouw L,Blom A.Complement activation and inhibition:a delicate balance[J].Trends Immunol,2009,30(2):83-90.
[7]蘇小玲,趙愛民,林其德.補(bǔ)體異常激活在復(fù)發(fā)性流產(chǎn)中的作用[J].國(guó)際婦產(chǎn)科學(xué)雜志,2013,40(4):353-357.
[8]Blois S,Ilarregui J,Tometten M,etal.A pivotal role for galectin-1 in fetomaternal tolerance[J].Nat Med,2007,12(13):1450-1457.
[9]Chaouat G,Zourbas S,Ostojic S,etal.A brief review of recent data on some cytokine expression at maternal fetal interface which hight challenge the classical Th1/Th2 dichotomy[J].JReprod Immunol,2002,53(1-2):241-256.
[10]Lim W.Complement and the antiphospholipid syndrome[J].Curr Opin Hematol,2011,18(5):361-365.
[11]Takeshita A,Kondo T,Okada T,etal.Elevation of adipsin,a complement activating factor,in the mouse placenta during spontaneous abortion[J].J Reprod Dev,2010,56(5):508-514.
[12]Girardi G,Yarilin D,Thurman J,etal.Complement activation induces dysregulation of angiogenic factors and causes fetal rejection and growth restriction[J].JExp Med,2006,23(9):2165-2175.
[13]Breen K,Seed P,Parmar K,etal.Complement activation in patients with isolated antiphospholipid antibodiesor primary antiphospholipid syndrome[J].Thromb Haemost,2012,107(3):423-429.
[14]Seong S,Matzinger P.Hydrophobicity:an ancient damage-associated molecular pattern that initiates innate immune responses[J].Nat Rev Immunol,2004,4(6):469-478.
[15]Blois S,Kammerer U,Soto C,etal.Dendritic cells:key to fetal tolerance[J].Biol Reprod,2007,77(4):590-598.
[16]Clark D,Blois S,Kandil J,etal.Reduced uterine indoleamine 2,3-dioxygenase versus increased Th1/Th2 cytokine ratios as a basis for occult and clinical pregnancy failure in mice and humans[J].Am JReprod Immunol,2005,54(4):203-216.
[17]Prados M,Solano ME,F(xiàn)riebe A,etal.Stress increases VCAM-1 expression at the fetomaternal interface in an abortion-pronemouse model[J].Reprod Immunol,2011,89(2):207-211.