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        小鼠腎臟中CD133表達(dá)的研究

        2014-09-26 03:33:58馬云勝穆長(zhǎng)征
        重慶醫(yī)學(xué) 2014年5期
        關(guān)鍵詞:小管腎小管陽(yáng)性細(xì)胞

        劉 偉,馬云勝,穆長(zhǎng)征,田 鶴

        (遼寧醫(yī)學(xué)院組織學(xué)與胚胎學(xué)教研室,遼寧錦州121000)

        腎臟損傷后可以再生,原因是由于在腎臟組織中存在一部分再生能力較強(qiáng),具有一定自我更新能力的干細(xì)胞樣細(xì)胞成分。從目前的研究結(jié)果看,由于腎臟中細(xì)胞成分復(fù)雜,腎臟中有可能存在幾種干/祖細(xì)胞,因此其標(biāo)志物亦可能根據(jù)不同的節(jié)段而不同。Bussolati等[1]發(fā)現(xiàn)從人腎臟中分離培養(yǎng)的CD133細(xì)胞具有較強(qiáng)的增殖能力,也可以分化為上皮或內(nèi)皮細(xì)胞,修復(fù)小管損傷,因此這群細(xì)胞具有干細(xì)胞特性。本研究在小鼠腎臟原位檢測(cè)CD133細(xì)胞的表達(dá)與分布,從空間定位角度分析該細(xì)胞的位置及數(shù)量,為該細(xì)胞組織修復(fù)提供數(shù)據(jù)支持,現(xiàn)報(bào)道如下。

        1 材料與方法

        1.1 材料與試劑 選取昆明小鼠12只(遼寧醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供,清潔級(jí),雌雄不限,35~30g,3月齡);兔抗CD133(北京博奧森公司),DAB(武漢博士德公司);HRP標(biāo)記的羊抗兔IgG(北京中杉金橋公司)。

        1.2 方法

        1.2.1 腎臟組織的采集 取成熟健康昆明小鼠,左心室灌流固定后,取雙側(cè)腎臟,4%多聚甲醛固定24h后,梯度乙醇脫水,入二甲苯透明,60℃浸蠟3h,包埋制成石蠟塊。

        1.2.2 切片制備與CD133免疫組織化學(xué)檢測(cè) 用Leca3215切片機(jī)將腎臟組織切成5μm厚度切片,黏附于涂有多聚賴(lài)氨酸的防脫片上,60℃烤片2h后,切片二甲苯脫蠟2h,梯度乙醇下行入水。3%過(guò)氧化氫清除內(nèi)源性過(guò)氧化物酶5min,枸櫞酸鹽緩沖液高壓鍋法進(jìn)行抗原修復(fù)。自然冷卻后,磷酸鹽緩沖液(PBS)洗3次,每次5min,組畫(huà)筆畫(huà)圈,5%BSA封閉10min室溫下滴加兔抗CD133(1∶200)抗體。濕盒內(nèi)4℃冰箱過(guò)夜。次日取出去除一抗,PBS洗3次,滴加HRP標(biāo)記的羊抗兔IgG,室溫孵育1h,PBS洗3次,DAB顯色并觀(guān)察,適時(shí)終止顯示,清水沖洗,蘇木精復(fù)染細(xì)胞核,梯度乙醇脫水,樹(shù)膠封片。

        1.2.3 免疫蛋白印跡法(Western blot)檢測(cè)CD133表達(dá) 取整個(gè)腎臟,眼科剪剪碎,加1mL蛋白裂解液,超聲波使細(xì)胞充分裂解,然后分別轉(zhuǎn)移到1.5mL的離心管中,置于冰中30 min,然后4℃下12 000r/min離心40min,取總蛋白每孔30 μg,100 ℃ 煮 沸 10min,10% 聚 丙 烯 酰 胺 凝 膠 電 泳 (SPSPAGE)分離總蛋白,然后將蛋白轉(zhuǎn)移至聚偏氟乙烯(PDVF)膜上,用5%脫脂奶粉封閉2h,一抗(兔抗CD133,1∶500)4℃孵育過(guò)夜,次日加二抗(1∶1 500)孵育2h,ECL顯色。

        1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 Western blot結(jié)果采用系統(tǒng)自帶軟件對(duì)目的條帶進(jìn)行光密度值的分析。采用SPSS13.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行分析,采用單因素方差分析比較樣本均數(shù),以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié) 果

        2.1 免疫組織化學(xué)結(jié)果 CD133陽(yáng)性細(xì)胞分布于腎臟的皮質(zhì)和髓質(zhì)(圖1)。在皮質(zhì)區(qū)域,CD133表達(dá)于一小部分遠(yuǎn)端小管上皮細(xì)胞的頂端(圖1a),散在分布,注意CD133都表達(dá)在靠近腎小體血管極的遠(yuǎn)端小管曲部上。偶爾在細(xì)胞質(zhì)里也可見(jiàn)到陽(yáng)性表達(dá)(圖1b)。甚至有少量CD133細(xì)胞表達(dá)在小管上皮細(xì)胞的側(cè)面和整個(gè)小管的周?chē)?。在髓質(zhì)和腎乳頭區(qū)域CD133表達(dá)于升支粗段,細(xì)段和集合管(圖1c)。在內(nèi)髓CD133分布的較外髓內(nèi)帶要廣泛,并且以一小群細(xì)胞或單個(gè)細(xì)胞表達(dá)形式存在(圖1d~f)。

        圖1 小鼠腎臟中CD133的免疫組織化學(xué)結(jié)果

        2.2 Western blot檢測(cè)結(jié)果 Western blot檢測(cè)提示小鼠腎臟組織中均檢測(cè)到CD133表達(dá),在120×103左右出現(xiàn)特異性結(jié)合條帶,見(jiàn)圖2。

        圖2 小鼠腎臟組織CD133Western blot結(jié)果

        3 討 論

        腎臟中組織成分復(fù)雜,其損失后修復(fù)的機(jī)制可能有多種。腎小管上皮細(xì)胞具有一定的更新能力,這說(shuō)明腎小管上皮必然存在具有干細(xì)胞屬性的細(xì)胞成分。而在很多疾病導(dǎo)致的腎臟小管上皮細(xì)胞壞死等都依賴(lài)于腎小管上皮細(xì)胞的修復(fù)和再生,以重新恢復(fù)其營(yíng)養(yǎng)重新收及水代謝功能。CD133被認(rèn)為是腫瘤細(xì)胞標(biāo)志物,在某些腫瘤如腎透明細(xì)胞癌中呈大量陽(yáng)性表達(dá)。CD133也可以被認(rèn)為是一群干/祖細(xì)胞標(biāo)志物,CD133抗原早期用于從造血組織和神經(jīng)組織中分離干細(xì)胞,在造血組織中CD133只表達(dá)于CD34陽(yáng)性干細(xì)胞和祖細(xì)胞上[2]。此外,在骨骼肌和神經(jīng)組織中也存在一部分CD133陽(yáng)性細(xì)胞[3]。Osafune等[4]從腎臟細(xì)胞中分離的CD133細(xì)胞不表達(dá)CD34和CD45,這說(shuō)明在不同的組織中表達(dá)CD133細(xì)胞是不同的。Bruno等[5]在體外研究發(fā)現(xiàn)該細(xì)胞具有自我更新和復(fù)制的能力。此外從形態(tài)上看CD133細(xì)胞具有明顯的極性,這說(shuō)明他們具有分化細(xì)胞的特征。體外研究表明,CD133細(xì)胞具有較強(qiáng)的擴(kuò)增能力,標(biāo)記后的CD133細(xì)胞靜脈注射到SCID小鼠后,該細(xì)胞在腎小管并修復(fù)了腎小管損傷,從而修復(fù)腎臟損傷[6-7]。

        本研究發(fā)現(xiàn),在成年小鼠的腎臟內(nèi)髓,腎乳頭區(qū)集合管,細(xì)段,廣泛分布著CD133陽(yáng)性細(xì)胞。而在皮質(zhì)和外髓區(qū)CD133陽(yáng)性細(xì)胞的數(shù)量較少,僅限于髓放線(xiàn)集合管和腎單位區(qū)髓袢升支細(xì)段和遠(yuǎn)曲小管,皮質(zhì)集合管則沒(méi)有分布。Lazzeri等[8]應(yīng)用Brud標(biāo)記法發(fā)現(xiàn)腎乳頭區(qū)細(xì)胞增殖能力強(qiáng),表現(xiàn)為大量的標(biāo)記細(xì)胞出現(xiàn),并認(rèn)為該區(qū)為腎臟干細(xì)胞的定居點(diǎn)[8],本研究發(fā)現(xiàn),CD133分布在內(nèi)髓腎乳頭區(qū)較多,少量分布于外髓的集合管和腎單位遠(yuǎn)端小管。作者的發(fā)現(xiàn)進(jìn)一步印證了O′N(xiāo)eill等[9]的觀(guān)點(diǎn),該觀(guān)察可以為對(duì)于腎臟損傷修復(fù)的細(xì)胞分布的空間位置關(guān)系提供形態(tài)學(xué)依據(jù),同時(shí)本研究也可能解釋遠(yuǎn)端小管修復(fù)機(jī)制,下一步實(shí)驗(yàn)應(yīng)該研究在腎臟損傷疾病模型上CD133的表達(dá)情況,進(jìn)一步揭示腎臟損傷及修復(fù)的機(jī)制。總之,腎臟中干細(xì)胞表達(dá)CD133,本實(shí)驗(yàn)從原位尋找CD133表達(dá)位置,為腎臟干細(xì)胞提供空間表達(dá)數(shù)據(jù)。

        [1]Bussolati B,Bruno S,Grange C,et al.Isolation of Renal Progenitor Cells from Adult Human Kidney[J].Am J Pathol,2005,166(2):545-555.

        [2]Dekel B,Zangi L,Shezen E,et al.Isolation and characterization of nontubular sca-1+Lin-multipotent stem progenitor cells from adult mouse kidney[J].J Am Soc Nephrol,2006,17(12):3300-3314.

        [3]Yousof G,Masoud S,Zeinali S,et al.Isolation of stem cells from adult rat kidneys[J].Biocell,2009,33(1):33-38.

        [4]Osafune K,Takasato M,Kispert A,et al.Identification of multipotent progenitors in the embryonic mouse kidney by a novel colony-forming assay[J].Development,2005,133(1):151-161.

        [5]Bruno S,Bussolati B,Grange C,et al.Isolation and characterization of resident mesenchymal stem cells in human glomeruli[J].Stem Cells Dev,2009,18(6):867-880.

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        [9]O′N(xiāo)eill AC,Ricardo SD.Human kidney cell reprogramming:applications for disease modeling and personalized medicine[J].J Am Soc Nephrol,2013,24(9):1347-1356.

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