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        siRNA靶向干擾IL-12基因?qū)δX膠質(zhì)瘤細胞增殖與凋亡的影響

        2014-09-12 09:59:38張啟財
        中國老年學(xué)雜志 2014年11期
        關(guān)鍵詞:印跡膠質(zhì)瘤質(zhì)粒

        翟 旭 張啟財

        (遼寧醫(yī)學(xué)院附屬第一醫(yī)院神經(jīng)外科,遼寧 錦州 121001)

        腦膠質(zhì)瘤惡性程度較高,目前多采用外科治療與放療、化療相結(jié)合的療法,治療效果難以滿意〔1〕。白細胞介素(IL)-12可以在細胞的生理變化中促進TH1細胞增殖和活化,還可以促進自然殺傷(NC)細胞增殖和分化。在體內(nèi)IL-12可以增強機體抵抗細菌、病毒侵害的能力,促進抗腫瘤免疫,增強抗病毒效應(yīng)。RNA干擾技術(shù)目前在基因治療中應(yīng)用廣泛,是現(xiàn)今沉默某些目標(biāo)致癌基因的常用手段〔2〕。在本實驗中將已制備好的IL-12 siRNA表達載體成功轉(zhuǎn)染至處于對數(shù)生長期的U251細胞,通過western 印跡法檢測其對U251細胞IL-12蛋白表達,通過噻唑藍(MTT)法和吖啶橙/溴化乙啶(AO/EB)法檢測檢測其對U251細胞增殖、凋亡的影響,為進一步基因治療腦膠質(zhì)瘤提供實驗依據(jù)。

        1 材料和方法

        1.1實驗材料 人腦膠質(zhì)瘤細胞株(U251,遼寧醫(yī)學(xué)院附屬第一醫(yī)院實驗室制備),鼠抗人IL-12多克隆抗體,轉(zhuǎn)染用IL-12 siRNA質(zhì)粒,轉(zhuǎn)染劑陽離子脂質(zhì)體,RIPA裂解液,MTT試劑盒,Biorad凝膠成像系統(tǒng),AO/EB雙染色試劑盒。

        1.2實驗方法

        1.2.1實驗分組 本實驗分為:轉(zhuǎn)染control-siRNA組(control組),不轉(zhuǎn)染質(zhì)粒組(negative組),轉(zhuǎn)染IL-12 siRNA質(zhì)粒組(IL-12 siRNA組)。

        1.2.2IL-12 siRNA質(zhì)粒的轉(zhuǎn)染 于轉(zhuǎn)染前24 h進行,將對數(shù)生長期的U251細胞株以5 ml/孔的劑量,分別接種于6孔培養(yǎng)板上,培養(yǎng)板每孔均設(shè)4個復(fù)孔,接種完畢后立即按照LIPOFECTAMINE 2000說明書進行IL-12 siRNA質(zhì)粒轉(zhuǎn)染。轉(zhuǎn)染72 h后置于熒光顯微鏡下觀察綠色熒光蛋白的表達。

        1.2.3western 印跡實驗檢測IL-12蛋白的表達水平 在成功轉(zhuǎn)染72 h后,收集各組轉(zhuǎn)染好的U251細胞,使用RIPA裂解液放置于冰上進行裂解,保持4℃,13 000 r/min離心10 min,收集離心后所得上清液即可得到總蛋白。分別加入2×十二烷基硫酸鈉(SDS)凝膠加樣緩沖液緩沖搖勻后,保持100℃溫度煮沸使蛋白變性5 min。所得樣品中的蛋白經(jīng)Bradford定量,能夠保證蛋白上樣量的一致。然后通過12%SDS-聚丙烯酰胺凝膠(PAGE)分離,轉(zhuǎn)移至聚偏二氟乙烯膜(PVDF)膜上,加入一抗鼠抗人IL-12多克隆抗體(1∶3 000)和一抗鼠抗人β-actin單克隆抗體(1∶1 000),在4℃培養(yǎng)箱孵育過夜。用磷酸鹽緩沖液(PBS)緩沖液洗膜10 min,洗膜3次。二抗采用1∶20稀釋好的羊抗鼠(通用型生物素標(biāo)記)IgG(1∶3 000),顯色方法采用化學(xué)發(fā)光法。完成后用凝膠圖像分析系統(tǒng)分別檢測實驗所得各條帶的灰度值,可以檢測各組IL-12蛋白的表達情況。

        1.2.4MTT法檢測膠質(zhì)瘤細胞(U251)的增殖情況 把各組細胞經(jīng)消化處理后,配置成為2×104/ml濃度水平的細胞懸液,然后分別接種于96孔板,劑量為200 μl/孔,每組均設(shè)6枚復(fù)孔。同時設(shè)置試劑組,不加任何細胞。觀察細胞完成貼壁后,分別于0、24、48、72、96 h加入5 mg/L的MTT溶液(MTT 0.5 g,溶于100 ml的PBS液)20 μl,繼續(xù)培養(yǎng)4 h,離心后丟棄上清液。加入二甲基亞砜(DMSO)100 μl/孔。酶標(biāo)儀于570 nm處測定吸光度值(A570),并繪制對數(shù)生長曲線。

        1.2.5AO/EB法檢測膠質(zhì)瘤細胞(U251)的凋亡率 各組細胞經(jīng)收集后離心,丟棄上清液后用PBS洗滌3次,制成細胞懸液,各組均加入濃度100 mg/L的AO及EB試劑,混合均勻后,滴于載玻片上,并分別計數(shù)200個以上細胞的凋亡率。細胞經(jīng)過染色后,核染色質(zhì)呈綠色者為活細胞(VN),可觀察到正常細胞結(jié)構(gòu);核染色質(zhì)呈綠色者為早期凋亡細胞(VA),呈圓珠狀或固縮狀;核染色質(zhì)呈橘紅色并呈正常結(jié)構(gòu)者為非凋亡的死細胞(NVN);核染色質(zhì)呈橘紅色并呈破裂裝或固縮狀〔1〕者為晚期凋亡細胞(NVA)。細胞凋亡率=(VA+NVA)/(VN+NVN+VA+NVA)。

        2 結(jié) 果

        2.1Western 印跡法測定IL-12蛋白的表達水平 實驗組的IL-12蛋白表達(0.225±0.052)較control組(0.836±0.047)及negative組(0.978±0.034)明顯減少,其表達水平約為negative組的83%。表明IL-12 siRNA表達載體在U251細胞轉(zhuǎn)染成功,并可顯著降低IL-12基因的表達水平。見圖1。

        圖1 western 印跡分析各組IL-12蛋白表達情況

        圖2 各組U251細胞的生長曲線

        2.2MTT法實驗結(jié)果 圖2可見,待培養(yǎng)96 h后,IL-12 siRNA組、control組和negative組的A570=分別為1.014±0.037,1.132±0.030,1.147±0.023。IL-12 siRNA組膠質(zhì)瘤細胞的增殖活性較control組和negative組明顯降低(F=15.211,P<0.01),而control組和negative組的U251細胞仍具有較高的增殖活性。

        2.3AO/EB染色后檢測腦膠質(zhì)瘤細胞的凋亡率 各組至少計數(shù)200個細胞如表。IL-12 siRNA組的細胞凋亡率較negative組及control組明顯增高(均P<0.01)。見表1。

        表1 AO/EB法檢測不同組別細胞凋亡率

        3 討 論

        RNA干擾是指在進化過程中高度保守的、由雙鏈RNA誘發(fā)的、同源mRNA高效特異性降解的現(xiàn)象,能夠使相應(yīng)的基因表達受到特異性抑制,具有高特異性、高效性〔3,4〕。此項基因技術(shù)在惡性腫瘤的研究中得到非常廣泛的應(yīng)用。通過RNA干擾技術(shù)高特異性的特點,能夠選擇性地抑制目的癌基因的表達,使癌細胞增殖減少或凋亡,從而達到治療的目的,在惡性腫瘤的治療中有較高的應(yīng)用價值和前景。

        IL-12又叫做NK 細胞刺激因子,具有顯著抑制腫瘤細胞生長的作用。但是其的抗腫瘤應(yīng)用會給機體造成許多副作用(發(fā)熱、 惡心、嘔吐等),人們試圖通過基因轉(zhuǎn)染技術(shù)解決這一問題,通過提高機體對抗瘤的免疫應(yīng)答功能,達到針對性治療腫瘤的目的〔5~7〕。通過基因轉(zhuǎn)染技術(shù)將IL-12基因?qū)?腫瘤細胞,讓其分泌細胞因子,使細胞內(nèi)局部積聚高濃度IL-12,改變腫瘤內(nèi)部免疫微環(huán)境,更能夠促進免疫環(huán)境的激發(fā)〔8,9〕;同時可使IL-1在局部獲得持續(xù)的表達,達到維持免疫反應(yīng)的作用。經(jīng)IL-12基因修飾過后,腫瘤細胞的免疫原性得到增強,其表面某些黏附分子和組織相密性復(fù)合體(MHC)抗原的表達明顯增強,這樣機體就可以被誘導(dǎo),從而產(chǎn)生較強免疫應(yīng)答。機體對此種經(jīng)IL-12基因轉(zhuǎn)染、修飾的腫瘤細胞的殺傷能力明顯增強。

        綜上,將構(gòu)建好的IL-12 siRNA表達載體成功轉(zhuǎn)染入U251細胞,使之在U251細胞內(nèi)有效表達。IL-12基因在腦膠質(zhì)瘤增殖、凋亡過程中發(fā)揮重要作用,也為腦膠質(zhì)瘤的基因靶向治療提供了可行的辦法。

        4 參考文獻

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        2Yakata Y,Nakayama T,Yoshizaki A,etal.Expression of p-STAT3 in human gastric carcinoma:significant correlation in tumour invasion and prognosis〔J〕.Int J Oncol,2007;30(2):437-42.

        3Tomari Y,Zamore PD.Perspective:machines for RNAi〔J〕.Genes Dev,2005;19(5):517-29.

        4Shankar P,Manjunath N,Lieberman J.The prospect of silencing disease using RNA interference〔J〕.JAMA,2005;293(11):1367-73.

        5趙雯紅,程建新,史鵬飛,等.轉(zhuǎn)染IL-12基因的人臍帶間充質(zhì)干細胞對卵巢癌細胞的體外增殖和對裸鼠體內(nèi)移植瘤的抑制作用〔J〕.南方醫(yī)科大學(xué)學(xué)報,2011;31(5):903-7.

        6李軼杰,劉歡歡,李新蘋,等.不同途徑的乳球菌介導(dǎo)重組IL-12基因抗小鼠黑素瘤的效果〔J〕.細胞與分子免疫學(xué)雜志,2013;29(4):392-5.

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        8賈秀紅,孝飛飛,李建廠,等.RNA干擾Apollon基因逆轉(zhuǎn)白血病K562細胞多藥耐藥〔J〕.中國癌癥雜志,2013;23(9):713-20.

        9劉艷寧,樓國華,陳 智,等.基于RNA干擾技術(shù)和micro RNA調(diào)控的丙型肝炎治療研究進展〔J〕.浙江大學(xué)學(xué)報(醫(yī)學(xué)版),2011;40(6):609-16.

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