蔡廣知,鄭 丹,張彥飛,貢濟(jì)宇
(長(zhǎng)春中醫(yī)藥大學(xué),長(zhǎng)春 130117)
微衛(wèi)星DNA指紋圖譜(microsatellite,MS)又稱(chēng)為短串聯(lián)重復(fù)(short tandem repeats,STR)或簡(jiǎn)單序列重復(fù)(simple sequnce repeat,SSR),是基因組中一段由幾十個(gè)核苷酸組成的序列,此序列一般由幾個(gè)核苷酸(一般為2~4個(gè))為單位多次串聯(lián)重復(fù)組成[1-2]。其中以雙核苷酸重復(fù)最為常見(jiàn),真核生物的基因組中有大量的微衛(wèi)星DNA存在,約每隔10~550 kb就存在一個(gè)微衛(wèi)星。微衛(wèi)星DNA由于具有特異性的PCR擴(kuò)增、多態(tài)信息容量高、引物通用性好、突變率高、共顯性等特點(diǎn)[3-4]。本文采用微衛(wèi)星鑒別技術(shù),對(duì)長(zhǎng)白山、黑龍江伊春、遼寧撫順、吉林四海林場(chǎng)4個(gè)地區(qū)的林蛙開(kāi)展了鑒別研究。
1.1 儀器 1110型PCR儀(美國(guó)Bio-Rad公司);TGL型臺(tái)式高速離心機(jī)(湖南星科科學(xué)儀器有限公司);Dolphin-Doc凝膠成像分析儀(美國(guó)wealtec公司);JY-SP10水平電泳槽(杭州匯爾儀器公司);電泳儀(美國(guó)Bio-Rad公司);微型離心機(jī)(北京六一儀器有限公司);PCF型超純水機(jī)(成都品成科技有限公司)。
1.2 試劑及耗材 DL500 Marker購(gòu)自寶生物工程有限公司;熒光染料(EB)和單染料購(gòu)于天根生化科技有限公司;50XTAE緩沖液和瓊脂糖均購(gòu)自上海生工生物工程有限公司;PCR mix(英杰生命科技有限公司);DNA提取試劑盒編號(hào)SK-8222和動(dòng)物組織快速直接PCR試劑盒均購(gòu)自上海生工生物工程有限公司。
2.1 PCR的反應(yīng)體系 PCR反應(yīng)體系為25 μL:PCR反應(yīng)液為12.5 μL(1 x),模板為0.5 μL(0.1~10 ng),引物為上下游引物各1 μL(0.4 μmol/L),超純水10 μL,PCR反應(yīng)程序以正品長(zhǎng)白山野生林蛙為模板。
2.2 PCR反應(yīng)程序 95 ℃預(yù)變性5 min;95 ℃變性50 s;46~60 ℃退火50 s;72 ℃延伸90 s;共35個(gè)循環(huán);最后72 ℃延伸5 min;8 ℃保存。
2.3 特異性鑒別引物的篩選 根據(jù)GenBank發(fā)表的中國(guó)林蛙的基因序列,以及國(guó)內(nèi)外文獻(xiàn)的報(bào)道,選出11對(duì)微衛(wèi)星引物作為本實(shí)驗(yàn)的引物,最終有5對(duì)能夠穩(wěn)定擴(kuò)增:
引物1:RCMS035 F:AATGGCGAGGAGGTTGACTA
EU377559 R:GCAGTGTTTTATCGCTCGGT
引物2:RCMS042 F:TCTAGCCAGCAGGTAAAACTC
EU377560 R:GAAGTTTGTTCTATTGACCTCTGT
引物3:RCMS092 F:CAAAAGCAGATGGCTGGATAC
EU377562 R:GCTCTATGATAGTGCGTGAAGG
引物4:RCMS029 F:CTATGGACAGAGCAGAAAGAC5
EU377556 R:GCATCTGCTGGTTGGGTAGTG
引物5:RCMS030 F:ACAGGGCAGGACATCTCAGC
EU377557 R:GCATGGGACAAGATACTGGC
3.1 5引物對(duì)不同地區(qū)林蛙的PCR電泳圖譜分析
3.1.1 引物1的PCR電泳圖譜分析 提取4種林蛙DNA模板,加入引物1,退火溫度為52.8 ℃,模板濃度為0.5 μL,循環(huán)次數(shù)為35個(gè)循環(huán),擴(kuò)增產(chǎn)物用2%的瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳,電泳電壓為120 V,電泳時(shí)間為35 min,上樣量為0.5 μL,在全自動(dòng)凝膠成像分析系統(tǒng)上觀察和分析。由擴(kuò)增后的電泳圖可以看出,長(zhǎng)白山林蛙在240 bp左右有明顯的擴(kuò)增條帶,黑龍江伊春的林蛙在200 bp處有明顯的擴(kuò)增條帶,遼寧撫順林蛙在179 bp處有明顯的擴(kuò)增條帶,吉林四海林場(chǎng)林蛙在220 bp處有明顯的擴(kuò)增條帶。
3.1.2 引物2的PCR電泳圖譜分析 提取4種林蛙DNA模板,加入引物2,退火溫度為55 ℃,后續(xù)操作同引物1。結(jié)果表明,長(zhǎng)白山林蛙在120 bp左右有明顯的擴(kuò)增條帶,黑龍江伊春的林蛙在165 bp處有明顯的擴(kuò)增條帶,遼寧撫順林蛙在135 bp處有明顯的擴(kuò)增條帶,吉林四海林場(chǎng)林蛙在150 bp處有明顯的擴(kuò)增條帶。
3.1.3 引物3的PCR電泳圖譜分析 提取4種林蛙DNA模板,加入引物3進(jìn)行擴(kuò)增,其退火溫度為57 ℃,后續(xù)操作同引物1。結(jié)果表明,長(zhǎng)白山林蛙在200 bp左右有明顯的擴(kuò)增條帶,黑龍江伊春的林蛙在150 bp處有明顯的擴(kuò)增條帶,遼寧撫順林蛙在190 bp處有明顯的擴(kuò)增條帶,吉林四海林場(chǎng)林蛙在230 bp處有明顯的擴(kuò)增條帶。
3.1.4 引物4的PCR電泳圖譜分析 提取4種林蛙DNA模板,加入引物4進(jìn)行擴(kuò)增,其退火溫度為57 ℃,后續(xù)操作同引物1。結(jié)果表明,長(zhǎng)白山林蛙在280 bp左右有明顯的擴(kuò)增條帶,黑龍江伊春的林蛙在180 bp處有明顯的擴(kuò)增條帶,遼寧撫順林蛙在210 bp處有明顯的擴(kuò)增條帶,吉林四海林場(chǎng)林蛙在245 bp處有明顯的擴(kuò)增條帶。
3.1.5 引物5的PCR電泳圖譜分析 提取4種林蛙DNA模板,加入引物5進(jìn)行擴(kuò)增,其退火溫度為55 ℃,后續(xù)操作同引物1。結(jié)果表明,長(zhǎng)白山林蛙在280 bp左右有明顯的擴(kuò)增條帶,黑龍江伊春的林蛙在180 bp處有明顯的擴(kuò)增條帶,遼寧撫順林蛙在200 bp處有明顯的擴(kuò)增條帶,吉林四海林場(chǎng)林蛙在300 bp處有明顯的擴(kuò)增條帶。
3.2 微衛(wèi)星等位基因分型 對(duì)上述5對(duì)引物的正向引物5’端用熒光標(biāo)記進(jìn)行修飾,分別進(jìn)行40只林蛙樣本的動(dòng)物DNA提取,根據(jù)上述PCR條件進(jìn)行等位基因擴(kuò)增。PCR產(chǎn)物應(yīng)用ABI 3730自動(dòng)測(cè)序儀分型進(jìn)行等位基因測(cè)試;并用GeneMapper ID v3.2軟件對(duì)等位基因進(jìn)行判讀。對(duì)每對(duì)引物擴(kuò)增產(chǎn)物的等位基因做頻數(shù)分布圖。結(jié)果見(jiàn)圖1~5。
圖1 引物1的基因頻數(shù)分布圖
圖2 引物2的基因頻數(shù)分布圖
圖3 引物3的基因頻數(shù)分布圖
圖4 引物4的基因頻數(shù)分布圖
圖5 引物5的基因頻數(shù)分布圖
由等位基因圖可看出,等位基因的擴(kuò)增結(jié)果與瓊脂糖電泳的電泳結(jié)果無(wú)明顯差異,其片段大小均上下浮動(dòng)在16bp 左右,表明這種方法準(zhǔn)確可靠。中國(guó)林蛙長(zhǎng)白山亞種與其它地區(qū)林蛙的等位基因片段大小頻次分布不一樣,基因片段大小差異比較大,有利于中國(guó)林蛙長(zhǎng)白山亞種與其他種屬林蛙的區(qū)分。
采用5種微衛(wèi)星引物對(duì)中國(guó)林蛙長(zhǎng)白山亞種、黑龍江伊春林蛙、遼寧桓仁林蛙以及吉林四海林場(chǎng)林蛙進(jìn)行PCR擴(kuò)增和分析。由5對(duì)引物的PCR擴(kuò)增結(jié)果可知,在瓊脂糖電泳圖中,每種引物均可以鑒別4種不同產(chǎn)區(qū)的林蛙。為使實(shí)驗(yàn)結(jié)果更準(zhǔn)確,采用熒光標(biāo)記的方法進(jìn)行等位基因擴(kuò)增,進(jìn)一步驗(yàn)證了微衛(wèi)星鑒別方法的準(zhǔn)確性和可靠性。
微衛(wèi)星PCR結(jié)果雖有差異,但5種引物的擴(kuò)增片段大小差異并不大,實(shí)際應(yīng)用中可采用多種引物分別進(jìn)行鑒別,綜合多引物擴(kuò)增片段的結(jié)果來(lái)評(píng)價(jià)和鑒別。每個(gè)物種的不同引物PCR擴(kuò)增片段的大小均不相同,增加引物進(jìn)行研究可以提高鑒別的精準(zhǔn)度,今后可考慮大量篩選微衛(wèi)星引物,增加選取樣品的品種和數(shù)量,篩選具有更高特異性的微衛(wèi)星引物[5-7]。
[1]Yang W,Qi Y,Bi K,et al.Toward understanding the genetic basis of adaptation to high-elevation life in poikilothermic species:a comparative transcriptomic analysis of two ranid frogs,Rana chensinensis and R.kukunoris[J].BMC Genomics,2012(1):583-588.
[2]Zhao J,Sun Y,Li Z,et al.Molecular cloning of novel antimicrobial peptide genes from the skin of the Chinese brown frog,Rana chensinensis[J].Zoolog Sci,2011,28(2):112-117.
[3]Zhang H,Wu Q.Studies on the multiple gene system and gene linkage of lactate dehydrogenase in Rana chensinensis[J].Yi Chuan Xue Bao,1996,23(1):11-17.
[4]Fushimi H,Komatsu K,Isobe M,et al.A new approach for the identification of a Chinese traditional medicine “Chuan xiong” by 18S ribosomal RNA sequences[J].Phytomedicine,1997,3(4):387-389.
[5]詹立平,趙鑫,劉志梅.基于PCR技術(shù)的現(xiàn)代分子生物學(xué)操作在中藥鑒定中的應(yīng)用[J].中國(guó)醫(yī)藥商報(bào),2013,10(7):12-15.
[6]李力,徐永莉,張?jiān)略?等.DNA分子標(biāo)記在中藥鑒定中的應(yīng)用及發(fā)展趨勢(shì)分析[J].時(shí)珍國(guó)醫(yī)國(guó)藥,2009,20(11):23.
[7]王樂(lè),李素霞,陳晶.中藥指紋圖譜在中藥質(zhì)量控制中的應(yīng)用[J].河北化工,2010,33(1):34-36.