王東升,黃江麗,譚胤靜,田曉娟,張志紅,丁建南
(江西省科學(xué)院生物資源研究所,330096,南昌)
近些年來,分子生物學(xué)技術(shù)在環(huán)境工程學(xué)、微生物生態(tài)學(xué)和環(huán)境生物學(xué)的研究中應(yīng)用越來越廣泛。例如,環(huán)境中土壤微生物功能基因的發(fā)掘和種群的分析與檢測(cè)等就主要是應(yīng)用分子生物學(xué)手段來研究,而提取高質(zhì)量的DNA是分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)的前提和基礎(chǔ)。已知土壤、特別是湖泊河流的沉積物中含有大量的腐殖質(zhì),主要包括能溶于酸也溶于堿的富里酸(Fulvic Acids,F(xiàn)A),溶于堿但不溶于酸的胡敏酸(Humic Acids,HA)和不溶于酸堿的胡敏素(Humin,HM)[1],其中腐質(zhì)酸在沉積物DNA提取過程中不容易被去除,這些物質(zhì)可對(duì)后續(xù)的PCR擴(kuò)增、內(nèi)切酶消化、DNA雜交等實(shí)驗(yàn)產(chǎn)生不利影響[2-3],因而在沉積物微生物總DNA提取過程中去除腐質(zhì)酸尤為重要。然而,在現(xiàn)有土壤和沉積物總DNA提取的方法中,腐質(zhì)酸很難被完全去除,目前普遍采用并相對(duì)較好的方法主要是DNA提取試劑盒法和CTAB-SDS-凍融法[4-5]。本文以3種不同河口沉積物為研究對(duì)象,采用改進(jìn)的CTAB-SDS-凍融法和DNA提取試劑盒法提取DNA并加以分析比較,旨在建立一種適用于高含腐殖質(zhì)沉積物總DNA的提取方法,以期為后續(xù)的分子生物學(xué)研究奠定基礎(chǔ)。
實(shí)驗(yàn)材料1取自修河與贛江交匯處修河上游200 m處,沉積物呈黑色,腐殖質(zhì)含量非常高;實(shí)驗(yàn)材料2取自修河與贛江交匯處贛江上游150 m處,沉積物為黃色粘土,黃色色素含量高;實(shí)驗(yàn)材料3取自饒河進(jìn)入鄱陽湖的河口,沉積物主要以沙子為主。取上層0~3 cm的沉積物作為樣品,每個(gè)河口取6個(gè)點(diǎn)混合在一起。
脫腐殖酸緩沖液:參考魏斐[4]等改進(jìn),100 mmol/L Tris,100 mmol/L Na4P2O7,100 mmol/L Na2EDTA,1.0% 聚乙烯吡咯烷酮 K30(PVP),NaCl,0.05%Trition X-100,pH10.0,121 ℃ 高壓滅菌20 min。
CTAB溶液:由終濃度為 100 mM的 Tris-HCl,100 mM 的 EDTA,1.5 M 的 NaCl,1% 的十六烷基三甲基溴化銨(CTAB),1 mg/mL的溶菌酶和0.2 mg/mL的蛋白酶K組成(溶菌酶和蛋白酶K用時(shí)再加入)。
10%的十二烷基磺酸鈉(SDS);酚/氯仿/異戊醇(25∶24∶1)。
洗滌緩沖液:0.33 mol Tris·HCl(pH8.0),1 mmol EDTA·Na(pH8.0)。
核酸電泳緩沖液:1×TAE緩沖液。
DNA沉淀和洗滌試劑:異丙醇,無水乙醇。
1.3.1 方法1 1)沉積物中微生物的細(xì)胞裂解:稱取1.5 g沉積物樣品,加3 mL CTAB溶液,渦旋充分混勻;在液氮和65℃水浴中反復(fù)凍融3次;在37℃下?lián)u30 min。2)DNA的分離:加10%的SDS至終濃度為2%,在65℃水浴中保溫1.5 h,每隔20 min顛倒混勻1次;室溫12 000 r/min離心10 min,收集上清;上清加等體積酚/氯仿/異戊醇(25∶24∶1),輕輕顛倒混勻;室溫12 000 r/min離心10 min,留上清;酚/氯仿/異戊醇(25∶24∶1)抽提3次;上清加等體積的異丙醇,沉淀1-2 h;在4℃下,以12 000 r/min離心10 min,棄上清;用70%的冰凍乙醇洗滌DNA沉淀,在4℃下,以12 000 r/min離心5 min,棄上清;70%的冰凍乙醇洗滌DNA沉淀3次,自然干燥;用100 μL TE(pH8.0)溶解 DNA沉淀,得到河口底泥總DNA粗提液。DNA跑0.8%的瓊脂糖凝膠電泳。
1.3.2 方法2 1)沉積物的預(yù)處理:稱取15 g河口底泥放入50 mL離心管中,加入30 mL脫腐殖酸緩沖液,渦旋振蕩5 min,靜置2 min,在4℃下先2 500 r/min低速離心3 min,再10 000 r/min高速離心8 min,棄上清,取沉淀的上部1/2轉(zhuǎn)移到另一新的離心管中;重復(fù)上步2次,將得到1.5 g底泥轉(zhuǎn)移到10 mL離心管中,再用脫腐殖酸緩沖液洗滌到無色為止;最后用洗滌緩沖液洗滌底泥2次。2)細(xì)胞裂解和DNA分離步驟與方法1相同。
1.3.3 方法3 1)樣品預(yù)處理方法與方法2相同;2)細(xì)胞裂解和DNA分離步驟與方法一相同;3)DNA重沉淀:DNA粗提液加1倍體積的冰凍異丙醇,在 -20℃下沉淀1.5 h;在4℃下,以12 000 r/min離心10 min,棄上清;沉淀用70%的冰凍乙醇洗滌,在4℃下,以12 000 r/min離心5 min,棄上清,本步驟重復(fù)2 次;用50 μL TE(pH8.0)溶解DNA沉淀,得到最終河口沉積物總DNA。1.3.4 方法4 沉積物總 DNA提取使用 ZOMANBIO公司的離心柱型超純土壤基因組DNA快速提取試劑盒,操作步驟見說明書。
提取的DNA樣品跑0.8%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)。
用美國(guó)Nanodrop公司的ND-1000紫外分光光度法分別測(cè)定 DNA溶液的 OD230、OD260和OD280值。DNA濃度可以直接讀數(shù),通過計(jì)算OD260/OD280(DNA/蛋白質(zhì))和OD260/OD230(DNA/腐殖酸)的比值來評(píng)價(jià)所提取DNA的純度[6]。
以上述4種方法提取的沉積物總DNA為模板,用細(xì)菌16S rDNA 通用引物63F(5'-CAGGCCTAACACATGCAAGTC-3')和 1387R(5'-GGGCGGWGTGTACAAGGC-3')進(jìn)行 PCR擴(kuò)增。PCR反應(yīng)體系:模板 DNA 1 μL,20 μM 的引物 63F 和1387R 各 1 μL,2 × EasyTaq PCR SuperMix 25 μL,加ddH2O到50 μL。PCR反應(yīng)參數(shù):95℃變性5 min;95℃變性35 s,54℃退火40 s,72℃延伸90 s,30個(gè)循環(huán);72℃延伸8 min。PCR產(chǎn)物跑1%的瓊脂糖凝膠電泳。
如圖1所示,泳道1~12的DNA電泳圖譜條帶單一清晰,幾乎無拖尾現(xiàn)象,DNA片斷大小約23 130 bp,說明所提取的 DNA沒有斷裂。從DNA條帶的明亮程度來判斷,CTAB-SDS-凍融法和樣品預(yù)處理-CTAB-SDS-凍融法提取的DNA濃度高,沉積物樣品經(jīng)過預(yù)處理所提取的DNA濃度最高,而樣品預(yù)處理-CTAB-SDS-凍融-DNA 重沉淀法和土壤總DNA提取試劑盒法提取的DNA濃度較低。這說明方法3中DNA重沉淀會(huì)損失大量的DNA;土壤總DNA提取試劑盒的吸附柱能吸附的DNA量有限,大量的DNA沒能附著在吸附柱上;沉積物樣品經(jīng)過預(yù)處理去除了大量的腐殖酸,有利于提高DNA的回收率(如圖1中泳道1~6)。此外,由于沉積物樣品的不同,也會(huì)影響DNA的提取量,如圖1中泳道3、6比較暗,DNA含量少,主要是由于饒河沉積物多為沙子,含有微生物少,而泳道1、2和4、5比較亮,DNA含量多,它們分別為修河和贛江沉積物,沙子少,營(yíng)養(yǎng)多,含有微生物量也多。
圖1 沉積物總DNA的0.8%瓊脂糖凝膠電泳圖譜
在高含腐殖質(zhì)的沉積物DNA提取過程中,腐殖酸、酚類物質(zhì)、雜蛋白等難以去除干凈,一般通過檢測(cè) OD260/OD230和 OD260/OD280比值來評(píng)價(jià)DNA樣品的純度。腐殖酸在230 nm和260 nm處有吸收峰,OD260/OD230比值高(>2)表示DNA較純,而比值低表明腐殖酸污染多;蛋白質(zhì)在280 nm處有吸收峰,OD260/OD280比值高(>1.7)表示DNA較純,而比值低表明蛋白質(zhì)污染多[3]。
從表1中可以看出,方法1、2所得DNA樣品的OD260/OD230和OD260/OD280比值相對(duì)較小,說明其中蛋白質(zhì)、腐殖酸等雜質(zhì)成分較多,也可以看出方法2比方法1 DNA純度要高些,說明沉積物樣品經(jīng)過預(yù)處理后,對(duì)提取高質(zhì)量的DNA有好處,同時(shí)也能增加 DNA的提取量;方法3、4所得DNA樣品的OD260/OD230和OD260/OD280比值相對(duì)較高,說明其中蛋白質(zhì)、腐殖酸等雜質(zhì)成分較少,也可以看出方法3比方法4所得DNA的純度更高,說明DNA重沉淀對(duì)除去腐殖酸、蛋白質(zhì)等雜質(zhì)作用顯著,但DNA重沉淀會(huì)導(dǎo)致DNA的大量損失,即便DNA有大量損失,還是比試劑盒提取的量要大;從表1中也可以看出,同一種方法不同沉積物樣品所得DNA純度和產(chǎn)量也不一樣,修河河口沉積物含有腐殖質(zhì)最多,最不容易去除,贛江河口沉積物的腐殖質(zhì)要少一些,饒河河口沉積物的腐殖質(zhì)最少,基本為沙子為主,不用對(duì)沉積物樣品進(jìn)行預(yù)處理就能提取質(zhì)量相對(duì)較高的DNA,但由于以沙子為主的沉積物營(yíng)養(yǎng)少,微生物含量也就少,最終提取的DNA產(chǎn)量也相對(duì)較少,但是用試劑盒提取方法中,饒河河口沉積物所得到的DNA量最多,推測(cè)是與DNA競(jìng)爭(zhēng)吸附柱的腐殖酸少的原故。腐殖酸與DNA有相似的物理化學(xué)性質(zhì),在使用柱子進(jìn)行純化時(shí)腐殖酸與DNA競(jìng)爭(zhēng)性地結(jié)合吸附位點(diǎn)[7]。
如圖2所示,泳道3、6、9、12能夠清晰的看到PCR擴(kuò)增16S rDNA得到約1 380 bp的目的片斷,說明饒河河口沉積物用這4種方法都可以提取到質(zhì)量能滿足PCR擴(kuò)增要求的DNA,因?yàn)樵摌悠匪迟|(zhì)少。泳道1、4、10都沒有PCR擴(kuò)增的目的片斷,只有泳道7有PCR擴(kuò)增的目的片斷,說明方法1、2、4提取的修河河口沉積物的DNA質(zhì)量不能滿足PCR擴(kuò)增條件,含有的雜質(zhì)太多,而方法3進(jìn)行了重沉淀DNA,去除了大量的DNA中的雜質(zhì),使其達(dá)到了PCR擴(kuò)增的要求。泳道2、5沒有PCR擴(kuò)增的目的片斷,泳道8、11有PCR擴(kuò)增的目的片斷,說明方法1、2提取的贛江河口沉積物DNA質(zhì)量達(dá)不到PCR擴(kuò)增的要求,方法3、4提取的符合PCR擴(kuò)增要求。從DNA樣品上看,方法1提取的修河、贛江河口沉積物總DNA樣品顯褐色,方法2提取修河、贛江河口沉積物總DNA樣品顯黃色,方法4提取的修河河口沉積物總DNA樣品顯淺黃色,DNA樣品顏色的深淺代表含腐殖酸的多少,這些腐殖酸通過鰲合Mg2+抑制PCR關(guān)鍵酶Taq聚合酶的活性[8]。這與實(shí)驗(yàn)結(jié)果相吻合,如圖2中的泳道1、2、4、5、10所示。
表1 4種方法提取的3種河口沉積物總DNA的純度和產(chǎn)量比較
結(jié)合表1數(shù)據(jù),得出4種方法提取沉積物DNA的質(zhì)量由高到低的順序:方法3>方法4>方法2>方法1。
圖2 沉積物總DNA的16S rDNA PCR擴(kuò)增結(jié)果
通常提取DNA的方法主要包括兩大步驟:一是細(xì)胞裂解,二是DNA分離。但是對(duì)于土壤和沉積物提取DNA來說,只有細(xì)胞裂解和DNA分離這兩步還遠(yuǎn)遠(yuǎn)不夠,因?yàn)橥寥乐泻写罅康母乘?,污染腐殖酸的DNA不能進(jìn)行后續(xù)的分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)。本文在沉積物總DNA提取方法中最常用且相對(duì)有效的CTAB-SDS-凍融法的基礎(chǔ)上,增加和改進(jìn)了去除DNA中腐殖酸的步驟。土壤樣品中的腐殖酸一般常用PVP和CTAB去除[9],方法2用PVP去除沉積物樣品中的腐殖酸,結(jié)果比方法1沒有用PVP的效果要好,當(dāng)然CTAB也有很好的去除腐殖酸作用。但是,對(duì)于腐殖酸含量高的沉積物樣品來說,雖然沉積物樣品經(jīng)過預(yù)處理去除腐殖酸,其最后提取的DNA質(zhì)量仍然不高,達(dá)不到分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)的要求。因此,方法2所提取的DNA還必須經(jīng)過進(jìn)一步純化來去除腐殖酸。DNA純化最常用的方法為瓊脂糖凝膠電泳純化法和直接DNA吸附柱純化法[10],這2種方法成本都比較高,瓊脂凝膠電泳純化法雖然效果好,但操作相對(duì)繁瑣,直接DNA吸附柱純化法腐殖酸會(huì)也與DNA競(jìng)爭(zhēng)吸附柱的吸附位點(diǎn),純化效果也不理想。本文方法3純化DNA的方法是對(duì)DNA進(jìn)行重新沉淀,雖然會(huì)導(dǎo)致DNA的大量損失,但是比試劑盒法提取沉積物總DNA所得到的DNA產(chǎn)量更多、質(zhì)量更好。
綜上所述,河口沉積物總 DNA提取前,用PVP預(yù)處理沉積物樣品可以除去部分腐殖酸,對(duì)于含有大量腐殖質(zhì)的沉積物所提取的DNA還必須進(jìn)行純化,異丙醇重沉淀DNA的純化方法雖然會(huì)損失大量DNA,但是操作簡(jiǎn)單、價(jià)格低廉,最重要的是可以獲得高質(zhì)量的DNA,為后續(xù)的分子學(xué)實(shí)驗(yàn)奠定基礎(chǔ)。
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