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        葡聚糖凝膠過濾-HPLC法測(cè)定阿苯達(dá)唑前體膠束的包封率

        2014-07-13 01:34:20王建華
        關(guān)鍵詞:阿苯達(dá)唑葡聚糖前體

        陳 跡, 王建華

        (新疆醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院藥學(xué)部, 烏魯木齊 830054)

        阿苯達(dá)唑被廣泛應(yīng)用于臨床治療鉤蟲病、蛔蟲病、鞭蟲病、蟯蟲病、旋毛蟲病、絳蟲病、囊蟲病等寄生蟲病,臨床療效良好。國內(nèi)外學(xué)者研究證實(shí)阿苯達(dá)唑也是一種較為有效的治療包蟲病的藥物[1]。但由于阿苯達(dá)唑?qū)儆陔y溶性藥物,口服后腸道吸收差,生物利用度相對(duì)較低,治療包蟲病病灶局部藥物濃度低,長期用藥則毒副作用增加[2],在一定程度上影響了阿苯達(dá)唑的抗包蟲的作用。本研究將阿苯達(dá)唑制成前體膠束制劑(ZL200610200344.2),通過增加阿苯達(dá)唑的溶解度來提高阿苯達(dá)唑的體內(nèi)吸收,增加其生物利用度,并利用其納米特性使其具有一定的靶向性。阿苯達(dá)唑前體膠束在使用前為一無水的均勻混合物,由于使用前不是以膠束形式存在,只在使用或口服時(shí)才形成膠束,因而不存在微粒給藥劑型普遍存在的物理穩(wěn)定性問題。阿苯達(dá)唑前體膠束水化后的包封率是阿苯達(dá)唑前體膠束質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)中比較重要一項(xiàng)內(nèi)容。但目前還沒有一種比較公認(rèn)行之有效的測(cè)定前體膠束水化后的包封率方法,本研究采用葡聚糖凝膠過濾法分離膠束與游離藥物,使用HPLC法測(cè)定阿苯達(dá)唑前體膠束的包封率,獲得了較好效果,現(xiàn)報(bào)道如下。

        1儀器與試劑UV-2550島津紫外可見分光光度計(jì)(日本),BP211D Sarturius電子天平(美國),Waters Alliance2695/2487高效液相色譜系統(tǒng)(美國),電熱恒溫干燥箱(上海躍進(jìn)醫(yī)療器械廠),高速自動(dòng)平衡離心機(jī)(北京醫(yī)用離心機(jī)廠)。阿苯達(dá)唑前體膠束(實(shí)驗(yàn)室自制批號(hào):060530-1、060530-2、060530-3),阿苯達(dá)唑原料藥(廣西桂林制藥廠,批號(hào):20040301),阿苯達(dá)就唑標(biāo)準(zhǔn)品 (中國藥品生物制品檢定所,批號(hào):100373-200301),sephdexG-50(中國醫(yī)藥上?;瘜W(xué)試劑公司,粒度100~300 μm),硝酸鉀、冰乙酸、無水乙醇、三乙胺、磷酸均為分析醇,甲醇、乙腈均為色譜醇,水為重蒸餾水。

        2實(shí)驗(yàn)方法

        2.1含量測(cè)定方法的建立

        2.1.1 色譜條件 色譜柱ODS C18柱(150 mm×3.9 mm,5 μm),流動(dòng)相為甲醇∶乙腈∶三乙胺-磷酸緩沖液(24∶20∶56),檢測(cè)波長295 nm,流速1.0 mL/min,柱溫30℃,進(jìn)樣量20 μL。

        2.1.2 三乙胺-磷酸緩沖液的配制 精密吸取三乙胺35.68 mL,加入1 600 mL重蒸水,用磷酸調(diào)節(jié)pH值至3.0,置2 000 mL容量瓶中,加水稀釋至刻度,備用。

        2.1.3 貯備液的配制 精密稱取阿苯達(dá)唑標(biāo)準(zhǔn)品4 mg置2 mL 容量瓶中,加入冰乙酸溶解,用甲醇稀釋至刻度,得到2 mg/mL的貯備液。

        2.1.4 標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制 精密吸取阿苯達(dá)唑貯備液0.02、0.04、0.06、0.08、0.10 mL分別置于10 mL容量瓶中,用甲醇稀釋至刻度,配制濃度為4、8、12、16、20 μg/mL系列標(biāo)準(zhǔn)液,分別進(jìn)樣,記錄色譜峰面積,以峰面積對(duì)濃度回歸,得回歸方程:A=48 259C+1 249.3,r2=0.999 8,線性范圍:4~20 μg/mL,4、12、20 μg/mL的RSD值分別為3.9%、0.85%、2.5%(n=5)。

        2.1.5 回收率試驗(yàn) 按處方劑量配制空白前體膠束,精密稱取樣品量的空白前體膠束于10 mL容量瓶中,加冰乙酸溶解,加甲醇稀釋至刻度,再吸取0.1 mL溶液置10 mL容量瓶中,分別加入0.02、0.06、0.1 mL貯備液,加甲醇稀釋至刻度,搖勻,得4、12 、20 μg/mL的含輔料標(biāo)準(zhǔn)液,分別進(jìn)樣20 μL,測(cè)峰面積,代入標(biāo)準(zhǔn)曲線換算成實(shí)際測(cè)定濃度,計(jì)算回收率,結(jié)果回收率分別為95.75%、98.11%、97.62%,RSD分別為3.27%、0.30%、1.49%(n=5)。

        2.2阿苯達(dá)唑前體膠束包封率的測(cè)定

        2.2.1 葡聚糖凝膠的洗脫曲線測(cè)定 取12 h被溶脹的sephdexG-50裝柱10 cm,上樣量為0.5 mL,流速為1 mL/min,用水洗脫。以1 mL為1個(gè)流份,收集前20 mL,共計(jì)20個(gè)流份。從收集的樣品中分別吸取0.5 mL加1 mL冰醋酸再加3 mL甲醇稀釋。采用HPLC法測(cè)定其含量,繪制阿苯達(dá)唑膠束洗脫曲線,見圖1。

        圖1 阿苯達(dá)唑膠束洗脫曲線

        2.2.2 阿苯達(dá)唑膠束溶液、阿苯達(dá)唑水飽和溶液通過葡聚糖凝膠的情況比較 分別配制含有相同含量的阿苯達(dá)唑膠束水化溶液、阿苯達(dá)唑水溶液。分別吸取0.5 mL上柱(高度為10 cm),用水洗脫,流速為1 mL/min。以1 mL流份為1個(gè)點(diǎn),收集前15 mL。然后從每一份中吸取0.2 mL加1 mL冰醋酸加3 mL甲醇稀釋,采用HPLC法測(cè)定其含量。

        由于阿苯達(dá)唑前體膠束水化溶液中含有包裹藥物的膠束、以分子形式存在的游離的阿苯達(dá)唑 以及可能析出的阿苯達(dá)唑顆粒,而阿苯達(dá)唑水溶液中含有分子形式存在的游離的阿苯達(dá)唑以及阿苯達(dá)唑顆粒。由阿苯達(dá)唑前體膠束水化溶液、阿苯達(dá)唑水溶液洗脫曲線可以看出阿苯達(dá)唑水溶液中游離的阿苯達(dá)唑被葡聚糖凝膠吸附,阿苯達(dá)唑顆粒被葡聚糖凝膠阻擋都無法通過葡聚糖凝膠柱,洗脫曲線基本為1條直線。而阿苯達(dá)唑前體膠束水化溶液中的阿苯達(dá)唑膠束可以通過葡聚糖凝膠柱,在前10 mL流份就可以基本洗脫完全,阿苯達(dá)唑膠束和游離的阿苯達(dá)唑得到很好分離(圖2)。

        2.2.3 阿苯達(dá)唑前體膠束包封率的測(cè)定方法的確定 根據(jù)以上實(shí)驗(yàn)初步確定葡聚糖凝膠法測(cè)定阿苯達(dá)唑前體膠束方法為:稱取適量阿苯達(dá)唑前體膠束于100 mL容量瓶中,配制阿苯達(dá)唑濃度為0.05 mg/mL水化液作為樣品,取水化液0.1 mL于10 mL容量瓶中,2 mL冰醋酸溶解,甲醇定容,采用HPLC法測(cè)定其含量,計(jì)算濃度C0。另取0.5 mL水化液樣品上柱,用水洗脫,流速控制為3 mL/min;接取10 mL洗脫液,取2 mL于10 mL容量瓶中,2 mL冰醋酸溶解,甲醇定容,采用HPLC法測(cè)定其含量,計(jì)算濃度C1,按公式包封率 (%)= (經(jīng)柱分離的膠束含藥量/總藥量)×100%計(jì)算包封率,即包封率(%)=(C1/C0)×100%。

        圖2 阿苯達(dá)唑洗脫曲線

        2.2.4 阿苯達(dá)唑前體膠束包封率測(cè)定 按“2.2.3”項(xiàng)下方法測(cè)定3批前體膠束(060530-1、 060530-2、060530-3)的包封率,結(jié)果包封率為76.38%~81.08%, RSD=6.81%,回收率為(92.23±3.57)%,見表1。

        表1 阿苯達(dá)唑前體膠束水化后的包封率(n=3)

        2.3包封率測(cè)定方法的回收率測(cè)定稱取適量阿苯達(dá)唑前體膠束于100 mL容量瓶中,配制阿苯達(dá)唑濃度為0.05 mg/mL水化液作為樣品,取0.5 mL水化液樣品上柱,用水洗脫,流速控制為1 mL/min;接取10 mL洗脫液,作為去除了游離藥物的膠束,精密吸取2 mL于10 mL容量瓶中,2 mL冰醋酸溶解,甲醇定容,用HPLC來測(cè)定其含量,計(jì)算濃度C1。另取洗脫液(即去除了游離藥物的膠束)2 mL上柱,用水洗脫,流速控制為1 mL/min;接取10 mL洗脫液,從中精密吸取2 mL于10 mL容量瓶中,2 mL冰醋酸溶解,甲醇定容,用HPLC來測(cè)定其含量,計(jì)算濃度C2。計(jì)算回收率/%=(C2/C1)×100%,實(shí)驗(yàn)結(jié)果見表2。

        表2 方法回收率(%, n=3)

        3討論

        目前關(guān)于包封率測(cè)定方法很多,主要有凝膠過濾法[3]、透析法[4]、超速離心法[5]、超濾法[6]及離子交換樹脂法[7]等??紤]到阿苯達(dá)唑前體膠束水化液中游離藥物以微粒形式存在,超速離心法和超濾法在超速離心過程中會(huì)使游離藥物和膠束同時(shí)沉淀出來,分離不開。同時(shí)采用離心法測(cè)定阿苯達(dá)唑前體膠束的包封率,離心法測(cè)定的包封率的結(jié)果較葡聚糖凝膠過濾法偏高,也驗(yàn)證了這種推測(cè)。若用透析法進(jìn)行測(cè)定,由于在大量透析液中膠束的結(jié)構(gòu)可能發(fā)生改變,導(dǎo)致藥物的泄漏,從而影響包封率。高曉黎等[3]研究顯示,粒徑為100~300 μm的Sephadex G-50最適于脂質(zhì)體包封率的測(cè)定。本研究前期預(yù)實(shí)驗(yàn)采用100~300 μm 的Sephadex G-50及粒徑較小的Sephadex G-20葡聚糖凝膠將游離阿苯達(dá)唑和阿苯達(dá)唑膠束分離,Sephadex G-50的分離效果較佳,再采用HPLC法測(cè)定阿苯達(dá)唑前體膠束的包封率可以有效去除輔料的干擾,方法可行,重復(fù)性較好,結(jié)果準(zhǔn)確,可以作為阿苯達(dá)唑前體膠束質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)控制的辦法。

        在實(shí)驗(yàn)過程中,洗脫曲線上僅明顯有1個(gè)峰,此峰為阿苯達(dá)唑膠束峰。游離藥物被葡聚糖凝膠吸附,較難被洗脫下來。所以葡聚糖凝膠在使用3~5次后就該更換,否則對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果會(huì)產(chǎn)生影響。

        參考文獻(xiàn):

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        [4] 馬晶, 鄧樹海.順鉑前體脂質(zhì)體的制備及包封率測(cè)定[J].中國醫(yī)院藥學(xué)雜志,2006,26(4):416-418.

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