閔紅巍,劉克敏,王安慶,韓新祚,顧蕊
股骨頭壞死(osteonecrosis of the femoral head,ONFH)高發(fā)于30~50歲人群,治療困難且致殘率高,是臨床骨科急待解決的重大課題。激素性ONFH是非創(chuàng)傷性ONFH的主要原因之一,確切的發(fā)病機制尚不明確,其病變晚期不可逆。目前,ONFH研究的一個重點是早期診斷,希望通過中西藥物、體外震波、自體骨髓干細胞移植等方法使早期的ONFH逆轉,有極大的臨床價值。而研究早期診斷的主要方法是建立早期的ONFH的動物模型。本實驗通過改良激素法有效地復制出接近臨床的早期ONFH動物模型,適用于ONFH發(fā)病機制及早期診斷等方面的研究。
健康雄性比格犬20只,由首都醫(yī)科大學動物中心提供,體重(6.0±0.5)kg,適應性飼養(yǎng)1周后編號,用隨機數(shù)字表法將其分為實驗組和對照組,每組各10只。飼養(yǎng)溫度(22±3)℃,濕度(50±20)%,分籠在相同條件下喂養(yǎng)。
實驗組肌注脂多糖(美國SIGMA公司)10 μg/kg,然后連續(xù)3 d肌注甲基潑尼松龍(美國普強藥廠產(chǎn)品)20 mg/kg;對照組肌注等量生理鹽水。
1.3.1 一般行為學觀察 連續(xù)4個月對各組比格犬進行一般狀態(tài)的觀察,包括精神狀態(tài)、毛色、姿勢、體重等。
1.3.2 血液學檢查 兩組動物注射藥物前和注射藥物后24 h抽靜脈全血2 ml進行凝血功能測定(ACL200全自動血凝分析儀,美國貝克曼-庫兒特公司),包括血漿凝血酶原時間(PT)、活化部分凝血酶時間(APTT)、抗凝血酶-Ⅲ(AT-Ⅲ)。
1.3.3 MRI檢查 全部犬在注射藥物后2個月、4個月分別行股骨頭軸位、冠狀位掃描。掃描采用1.5 T超導型磁共振機(Philips)。速眠新(長春軍事醫(yī)學科學院軍事獸醫(yī)研究所)0.2 ml/kg肌肉注射麻醉后,將比格犬仰臥位置于髖關節(jié)線圈內(nèi),髖關節(jié)及膝關節(jié)彎曲成適當角度后固定于線圈上,采用SE序列T1WI(TR/TE=358/18 ms)、 T2WI(TR/TE=1015/1000 ms)進 行 掃 描 ,層厚4 mm,間隔4 mm,F(xiàn)OV 210,矩陣256×256,掃描范圍130 mm。MRI均由兩位放射診斷科醫(yī)師閱片,觀察有無軟骨及軟骨下骨質(zhì)形態(tài)和信號改變。
1.3.4 組織形態(tài)學觀察 注射藥物后2個月、4個月,兩組各處死5只動物。速眠新麻醉效果滿意后,取髖關節(jié)后外側切口,逐層切開組織顯露髖關節(jié),顯露出股骨上端,用電鋸行股骨上端截骨,取下股骨頭,大體標本觀察包括股骨頭外形改變和關節(jié)軟骨面的改變。
標本沿冠狀面切開后置于10%福爾馬林溶液中固定2周,10%硝酸脫鈣1周,沖水過夜后,按常規(guī)方法沿股骨頭冠狀面切片,層厚1.0 μm,進行HE染色。由兩位病理科醫(yī)師于顯微鏡(Olympus)下觀察股骨頭區(qū)骨髓水腫情況、血管改變(壓跡、血栓等)、髓腔造血細胞和脂肪細胞的數(shù)量變化、壞死情況,骨細胞壞死情況、空陷窩數(shù)、骨小梁數(shù)量和周圍成骨情況,以及軟骨面塌陷和軟骨下骨板情況。
采用SPSS 13.0統(tǒng)計軟件對用藥前后兩組動物的凝血參數(shù)進行配對t檢驗。顯著性水平α=0.05。
動物形態(tài):兩組動物形態(tài)未見明顯改變,無消瘦、腹脹、四肢變細等,實驗期間無動物出現(xiàn)死亡。
股骨外形:股骨頭形態(tài)正常,軟骨面光滑,無塌陷,切面肉眼觀察未見明確的壞死灶。
對照組10只動物的20個股骨頭在用藥后2個月、4個月時,可見軟骨細胞排列整齊,軟骨下血管豐富,骨小梁整齊清晰,排列規(guī)則,骨小梁中的骨細胞清晰可見,周圍成骨細胞豐富,空陷窩少見,髓腔內(nèi)造血細胞豐富,形態(tài)正常。見圖1。
實驗組用藥后2個月,5只動物有4髖出現(xiàn)ONFH,表現(xiàn)為脂肪細胞肥大,髓腔造血細胞減少,骨小梁變細,間距增大,結構紊亂,部分有斷裂現(xiàn)象,骨小梁內(nèi)骨細胞核固縮,胞核小,空陷窩數(shù)增多。骨髓表現(xiàn)為片狀壞死。見圖2。
實驗組用藥后4個月,5只動物有6髖出現(xiàn)ONFH,表現(xiàn)為骨髓造血細胞極少,充滿脂肪細胞,骨小梁中斷,空陷窩增多,壞死骨小梁周圍可見少量成骨細胞,壞死灶可見炎細胞和少量新生血管,部分壞死灶周圍見纖維血管組織修復。見圖3。
對照組應用藥物后2個月和4個月,10只犬的20個股骨頭形態(tài)正常,T1WI表現(xiàn)為高信號,T2WI表現(xiàn)為低或中等信號,MRI未見異常信號改變。見圖4。實驗組應用藥物后2個月和4個月后,10只犬的20個股骨頭形態(tài)正常,MRI未見異常信號改變。見圖4。
圖1 對照組正常病理圖(HE染色)
圖2 實驗組用藥2個月后(HE染色)
圖3 實驗組用藥4個月后(HE染色)
圖4 兩組MRI(股骨頭形態(tài)均正常,未見異常信號)
用藥前,兩組間PT、APTT、AT-Ⅲ均無顯著性差異(P>0.05)。注射后,實驗組PT、APTT、AT-Ⅲ均顯著縮短(P<0.001),且顯著短于對照組(P<0.001)。見表1~表3。
表1 兩組用藥前后PT比較(s)
表2 兩組用藥前后APPT比較(s)
表3 兩組用藥前后AT-Ⅲ比較(s)
ONFH是一種常見的致殘率較高的骨科疾病。1957年,Pietrogrand等首次報道糖皮質(zhì)激素易引起ONFH,但到目前為止人們還沒完全弄清楚其發(fā)病機制[1]。因此,建立理想的成人ONFH的動物模型,是研究成人ONFH病因及發(fā)病機制十分重要的手段,也是進行治療的基礎。目前ONFH的造模方法主要有:創(chuàng)傷法(損傷股骨頸骨膜、髖關節(jié)脫位并且切斷圓韌帶[2-4]);物理法(如液氮冷凍[5]、微波[6]等);化學法(股骨頭內(nèi)注射乙醇[7]);非創(chuàng)傷法(激素、內(nèi)毒素或血管內(nèi)皮細胞生長因子受體抗體誘導[8-12])。實驗動物大多為四足動物和兩足動物。前者主要包括鼠、兔、犬、豬、綿羊、山羊及馬,后者包括雞、鵝、鴯鹋。
長期使用或短期內(nèi)間斷大量使用糖皮質(zhì)激素可引起ONFH,已為臨床和實驗研究證實,人和動物對皮質(zhì)激素的反應是一致的[13]。但激素應用劑量、時間與骨壞死產(chǎn)生的關系仍不確切;同樣應用激素治療,而ONFH的發(fā)生率及病變范圍卻有差異。曾有人認為在健康的動物單純應用激素可能不引起骨壞死,但從目前的文獻報道來看,這種推測比較武斷。也有學者認為并不是單純激素不能導致骨壞死,而是激素應用的劑量、次數(shù)、應用方式(沖擊或持續(xù)應用)以及動物個體對激素的耐受性不同。
臨床上,腎病綜合征、感染性休克、妊娠并發(fā)癥、惡性腫瘤、系統(tǒng)性紅斑狼瘡等是應用激素較多且較易出現(xiàn)ONFH的疾病,而這些疾病有一個共同特點,即在使用激素前就已經(jīng)存在前凝血狀況。因此,利用施瓦茲曼反應(Schwartzman reaction)首先造成動物的前凝血狀況,繼而使用大劑量激素造成ONFH模型是符合臨床要求的。由于利用施瓦茲曼反應處理的動物死亡率較高,因此在本實驗中,我們采用改良施瓦茲曼反應,在大動物體內(nèi)單次注射大腸桿菌內(nèi)毒素聯(lián)合應用甲基潑尼松龍,用藥后2個月和4個月,病理結果顯示有4髖和6髖發(fā)生ONFH,并且無一例動物死亡。說明改良施瓦茲曼反應可以引起ONFH,且死亡率低。
雖然目前ONFH研究已達到分子及基因水平,但其確切的發(fā)病機制仍不十分清楚。1992年,Jones正式提出非創(chuàng)傷性骨壞死血管內(nèi)凝血學說,并在隨后的研究中不斷加以完善。越來越多的研究表明ONFH的發(fā)生與凝血功能異常有關[14-16]。本研究結果顯示,應用內(nèi)毒素和激素后,血漿PT、APTT、AT-Ⅲ明顯降低,表明血液處于高凝低纖溶狀態(tài)。由于血栓前狀態(tài)的存在,形成骨內(nèi)微血栓,從而引起一系列的病理變化。血栓形成后,一方面可損害動脈灌注,并且更為嚴重地損害靜脈引流,導致骨內(nèi)間隔綜合征,使骨內(nèi)靜脈壓升高,灌注減少,進而加重了股骨頭的缺血并導致骨壞死。另一方面,被激活的凝血瀑布反應可誘發(fā)組織的炎性反應,加劇局部病變。
雖然說成人ONFH的病因及發(fā)病機制尚不完全清楚,但對其病理過程已有較清楚的認識。一般認為,無論什么原因引起成人ONFH,其病理改變都是相似的[17],即先有細胞壞死,隨后通過血管再生,新骨形成和死骨(小梁)吸收進行修復。由于骨組織對缺血持續(xù)的時間、缺血的范圍、缺血的程度以及骨組織對缺血反應能力和狀態(tài)的不同,其病理變化的進程也有所不同;ONFH的病理改變主要是脂肪及水含量的變化,因此MRI診斷骨壞死具有很強的特異性和敏感性。盡管如此,還必須認識到。MRI信號改變?nèi)匀皇枪菈乃啦±碜兓M展到相當程度的影像表現(xiàn)。因此,若MRI正常,也不能完全排除ONFH[18]。相信隨著磁共振技術的發(fā)展,其在ONFH診斷中的應用會越來越廣泛。
在本研究中,實驗組用藥后2個月4髖發(fā)生ONFH,其病理變化表現(xiàn)為脂肪細胞肥大,骨小梁變細,部分有斷裂現(xiàn)象,骨小梁內(nèi)骨細胞核固縮,胞核小,空陷窩數(shù)增多。未見明顯修復反應,表明骨壞死處于早期階段。實驗組用藥后4個月有6髖發(fā)生ONFH,其病理變化表現(xiàn)為骨小梁中斷,空陷窩增多,壞死骨小梁周圍可見少量成骨細胞,壞死灶可見漿細胞和少量新生血管,部分壞死灶周圍見纖維血管組織修復。實驗組用藥后2個月和4個月MRI未見異常信號,這可能是因為壞死尚處于早期階段,同時壞死的范圍較小、修復反應比較局限。
本研究也存在著一些不足。一方面研究的樣本量相對較少,進行統(tǒng)計分析時說服力較弱;另一方面實驗組觀察的時間點較少,不利于動態(tài)觀察早期ONFH的病理和影像學變化。此外,四足動物造模的最大限制在于其不能正常負重。因為動物在患肢疼痛情況下常采取保護性肢體回縮,這與人髖關節(jié)負重模式有很大的不同。這也是本模型難以造成股骨頭晚期塌陷的原因之一。
總之,改良激素法可建立早期ONFH模型,其具有創(chuàng)傷小、造模方法簡單、成模時間短、動物死亡率低、其病理特點貼近人ONFH病理演變規(guī)律等優(yōu)點,是一種比較理想的造模方式。
[1]Jones LC,Hungerford DS.The pathogenesis of osteonecrosis[J].Instr Course Lect,2007,56:179-196.
[2]Peled E,Bejar J,Barak M,et al.Core decompression and alendronate treatment of the osteonecrotic rat femoral head:computer-assisted analysis[J].Int J Exp Pathol,2013,94(3):212-216.
[3]Peled E,Bejar J,Zinman C,et al.Prevention of distortion of vascular deprivation-induced osteonecrosis of the rat femoral head by treatment with alendronate[J].Arch Orthop Trauma Surg,2009,129(2):275-279.
[4]Peled E,Davis M,Axelman E,et al.Heparanase role in the treatment of avascular necrosis of femur head[J].Thromb Res,2013,131(1):94-98.
[5]Vélez R,Soldado F,Hernández A,et al.A new preclinical femoral head osteonecrosis model in sheep[J].Arch Orthop Trauma Surg,2011,131(1):5-9.
[6]Li Y,Han R,Geng C,et al.A new osteonecrosis animal model of the femoral head induced by microwave heating and repaired with tissue engineered bone[J].Int Orthop,2009,33(2):573-580.
[7]Zhu ZH,Gao YS,Luo SH,et al.An animal model of femoral head osteonecrosis induced by a single injection of absolute alcohol:an experimental study[J].Med Sci Monit,2011,17(4):BR97-BR102.
[8]Noa M,Más R,Valle M,et al.Effect of D-003,a mixture of high molecular weight aliphatic acids,on glucocorticoid-and lipopolysaccharides(LPS)-induced osteonecrosis[J].Iran J Pharm Res,2012,11(4):1201-1208.
[9]Noa M,Valle M,Mendoza S,et al.Effects of D-003 on lipopolysaccharides-induced osteonecrosis in rabbits[J].Indian J Pharm Sci,2011,73(5):537-542.
[10]Wang L,Wang N,Li M,et al.To investigate the role of the nervous system of bone in steroid-induced osteonecrosis in rabbits[J].Osteoporos Int,2010,21(12):2057-2066.
[11]Han N,Yan Z,Guo CA,et al.Effects of p-glycoprotein on steroid-induced osteonecrosis of the femoral head[J].Calcif Tissue Int,2010,87(3):246-253.
[12]Gao YS,Wang HF,Ding H,et al.A novel rat model of osteonecrosis of the femoral head induced by periarticular injection of vascular endothelial growth factor receptor 2 antibody[J].J Surg Res,2013,183(1):e1-e5.
[13]Seamon J,Keller T,Saleh J,et al.The pathogenesis of nontraumatic osteonecrosis[J].Arthritis,2012,2012:601763.
[14]Guan XY,Han D.Role of hypercoagulability in steroid-induced femoral head necrosis in rabbits[J].J Orthop Sci,2010,15(3):365-370.
[15]Cenni E,Fotia C,Rustemi E,et al.Idiopathic and secondary osteonecrosis of the femoral head show different thrombophilic changes and normal or higher levels of platelet growth factors[J].Acta Orthop,2011,82(1):42-49.
[16]Chotanaphuti T,Heebthamai D,Chuwong M,et al.The prevalence of thrombophilia in idiopathic osteonecrosis of the hip[J].J MedAssoc Thai,2009,92(Suppl 6):S141-S146.
[17]Jackson SM,Major NM.Pathologic conditions mimicking osteonecrosis[J].Orthop Clin NorthAm,2004,35(3):315-320.
[18]Karantanas AH,Drakonaki EE.The role of MR imaging in avascular necrosis of the femoral head[J].Semin Musculoskelet Radiol,2011,15(3):281-300.