屈新輝 劉春發(fā) 胡建新 何 丹 項(xiàng)正兵 吳曉牧
1.江西省人民醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科,江西南昌 330006;2.江西省神經(jīng)病學(xué)研究所,江西南昌 330006;3.南昌大學(xué)醫(yī)學(xué)院,江西南昌 330006;4.江西省人民醫(yī)院藥劑科,江西南昌 330006
免疫學(xué)是現(xiàn)代醫(yī)學(xué)發(fā)展極為迅速的學(xué)科之一,疾病發(fā)生發(fā)展很多都與免疫功能有關(guān),某些腫瘤患者在放療、化療后或一些病毒感染后致免疫性力低下,但臨床增強(qiáng)免疫力有明顯臨床療效的藥物卻不多見。祖國醫(yī)學(xué)認(rèn)為“正虛邪擾”,疾病與人體的抵抗力密切相關(guān),并且臨床處方運(yùn)用扶正祛邪的法則治療疾病,臨床觀察亦有療效,許多學(xué)者研究了多種單味藥對免疫功能的調(diào)節(jié)作用,嘗試發(fā)現(xiàn)、提取、合成能調(diào)節(jié)免疫的化合物,本實(shí)驗(yàn)旨在從細(xì)胞及分子水平出發(fā),探求中藥復(fù)方對免疫功能增強(qiáng)的作用及效能,在扶正固本、活血益氣的中藥中遴選出有廣闊應(yīng)用前景的促進(jìn)免疫的中藥復(fù)方。
1.1.1 中藥的制備
復(fù)方中藥(由西洋參、黃芪、枸杞、當(dāng)歸等多味藥)組成,按總量400 g(西洋參96 g、黃芪96 g、枸杞128 g、當(dāng)歸80 g)稱取處方各藥(由江西省人民醫(yī)院藥劑科供應(yīng)),加蒸餾水400 mL,浸泡24 h,隔水煮1 h,濾過藥液,藥渣再加蒸餾水適量,煮1 h,濾出藥液,合并兩次藥液,隔水濃縮至400 mL,即每1 mL相當(dāng)于1 g生藥的原液,滅菌封存?zhèn)溆谩?/p>
1.1.2 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物
6 周齡昆明小鼠 50 只,體重(20±2)g,雌雄各半,均購自江西中醫(yī)學(xué)院。動(dòng)物自由飲食、飲水,動(dòng)物質(zhì)量合格證號(hào):JIDW NO.2012-0041。試驗(yàn)過程中對動(dòng)物的處置符合2006年科技部關(guān)于對試驗(yàn)動(dòng)物的有關(guān)規(guī)定[1]。
1.1.3 試劑與儀器
免疫抑制劑環(huán)磷酰胺(江蘇恒瑞醫(yī)藥股份有限公司,批號(hào):12030625),為 200 mg/支的粉針劑;小鼠IgG和補(bǔ)體C3的ELISA檢測試劑盒為西唐生物公司進(jìn)口分裝產(chǎn)品(批號(hào)分別為:1208061、1208201);Anti-MouseCD3(PE-Cy5)、Anti-MouseCD4(FITC)、Anti-Mouse CD8 (PE)、Anti-Mouse CD19 (PE)、Anti-MouseCD49(FITC)、Anti-MouseIL-2(PE)、Anti-MouseIFN-γ(FITC)熒光抗體 (購于eBioscience Inc.San Diego,CA公司,批 號(hào) 分 別 為 E06065-1630、E00077-1630、E01036-1633、E01047-1630、E00752-1630、E02060-1630、E00862-1631);BECKMAN COULTER流式細(xì)胞儀;酶標(biāo)儀(550 型);倒置顯微鏡(Leica);光學(xué)顯微鏡(OLYMPUS);紅細(xì)胞裂解液(實(shí)驗(yàn)室制自備);PBS緩沖液(實(shí)驗(yàn)室制自備);16號(hào)小鼠灌胃針;Allegra 64R低速冷凍離心機(jī) (BECKMAN COULTER,rmax=204 mm);HC電子天平(0.1 g)、sarrorious 電子天平(0.001 g),300目金屬篩網(wǎng)。
1.2.1 藥物急性毒理試驗(yàn)
該復(fù)方中藥各組份臨床應(yīng)用廣泛,未見明顯毒副作用,因此用小鼠灌胃最大容量0.4 mL/10 g[2]來檢查藥物的LD50,取20只小鼠,每次灌胃復(fù)方中藥0.8 mL,2次/d,觀察 15 d,無一死亡,可見 LD50> 0.4 mL/10 g。
1.2.2 實(shí)驗(yàn)分組
應(yīng)用隨機(jī)數(shù)字表法進(jìn)行隨機(jī)將動(dòng)物分為5組:正常對照組、模型對照組、低劑量中藥組、中劑量中藥組、高劑量中藥組。每組10只,雌雄各半。將需隨機(jī)分組的雌雄性小鼠分別稱重,按序編號(hào)記錄體重結(jié)果,給每只小鼠鼠分配一個(gè)隨機(jī)數(shù),按隨機(jī)數(shù)字大小升序排序,按排序后的順序依次將小鼠分入各個(gè)劑量組 。各組體重均值再做F檢驗(yàn)(單因素方差分析),需滿足P>0.05,如果條件不能滿足,則重復(fù)以上過程,直到滿足為止。隨機(jī)分組結(jié)束后,分別按各組的原始編號(hào)編上實(shí)驗(yàn)編號(hào)。
1.2.3 小鼠免疫抑制模型
建立小鼠免疫抑制模型一次性腹腔注射環(huán)磷酰胺200 mg/kg,造模完成[3],正常對照組注射環(huán)磷酰胺溶劑生理鹽水4 mL/kg。
1.2.4 給藥方法
中藥治療組于環(huán)磷酰胺造模后第2天開始用中藥按小鼠體重灌胃,高劑量中藥組灌中藥0.04 mL/g,中劑量中藥組灌中藥0.02 mL/g+蒸餾水0.02 mL/g,低劑量中藥組灌中藥0.01 mL/g+蒸餾水0.03 mL/g,正常對照組、模型對照組均灌蒸餾水0.04 mL/g,喂服14 d。
1.2.5 實(shí)驗(yàn)指標(biāo)的檢測
1.2.5.1 體重和脾臟指數(shù) 各組小鼠稱量體重,于試驗(yàn)結(jié)束后斷頸處死,取脾臟,用電子天平稱濕重,計(jì)算脾指數(shù),脾臟指數(shù)=100%脾臟質(zhì)量/體質(zhì)量(g/g)。
1.2.5.2 IgG和補(bǔ)體C3的檢測 于試驗(yàn)第14天摘取眼球取血,室溫放置2 h后3000 r/min離心10 min將血清和紅細(xì)胞迅速小心地分離,離心得血清后嚴(yán)格按照ELISA試劑盒說明書方法檢測小鼠血清IgG和補(bǔ)體C3水平。
1.2.5.3 脾淋巴細(xì)胞 CD3、CD4、CD8、CD19、CD49b NK細(xì)胞、細(xì)胞因子IL-2、IFN-γ檢測 第14天取小鼠脾臟研磨成單細(xì)胞懸液經(jīng)篩網(wǎng)過濾于離心管中離心,棄上清再加入紅細(xì)胞裂解液離心,棄上清后加入PBS定容至1 mL,用倒置相差顯微鏡進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù),調(diào)節(jié)細(xì)胞數(shù)為 1×107~10×107個(gè), 加入標(biāo)記抗小鼠 CD3、CD4、CD8、CD19、CD49b NK 細(xì)胞、 細(xì)胞因子 IL-2、IFN-γ熒光抗體抗體,4℃避光孵育30 min,PBS洗滌2次,流式細(xì)胞儀檢測淋巴細(xì)胞和細(xì)胞因子指標(biāo)的變化。
采用SPSS 19.0統(tǒng)計(jì)分析軟件分析,所有計(jì)量資料數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(x±s)表示,采用t檢驗(yàn)。將資料進(jìn)行正態(tài)性分析和Levene法方差齊性檢驗(yàn),行兩獨(dú)立樣本t檢驗(yàn),多組間比較采用單因素方差分析,方差齊性采用LSD-t檢驗(yàn),方差不齊采用Tamhane法檢驗(yàn)。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
正常對照組和模型對照組與各治療組第1天的體重均值比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.216>0.05),表明隨機(jī)分組成功。第14天的體重模型對照組比正常對照組減輕,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.020<0.05),而模型對照組與各治療組體重比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.126、0.904、0.796,均 P > 0.05),表明小鼠免疫抑制后引起體重減輕,而各復(fù)方中藥治療組對免疫抑制小鼠體重?zé)o影響。脾指數(shù)模型對照組比正常對照組降低(P=0.0001<0.05),而模型對照組與各治療組比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.967、0.255、0.941 > 0.05),表明小鼠免疫抑制后引起脾指數(shù)降低,而各復(fù)方中藥治療組對免疫抑制小鼠脾指數(shù)無影響。見表1。
表1 各組體重和脾指數(shù)比較(x±s)
模型對照組比正常對照組IgG顯著增高(P=0.002<0.01),C3顯著降低(正態(tài)分布方差不齊t檢驗(yàn),P=0.011<0.05),而低劑量中藥組與模型對照組比較,差異有高度統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.001<0.01),表明低劑量中藥組能顯著降低免疫抑制小鼠抗體IgG的濃度,升高免疫抑制小鼠補(bǔ)體C3濃度。見表2。
表2 抗體、補(bǔ)體及B淋巴細(xì)胞表面抗原CD19結(jié)果比較(x±s)
CD3+、CD4+、CD8+模型對照組均值均低于正常對照組 (P < 0.05),CD3+、CD4+、CD8+、CD4+/CD8+模型對照組水平與低劑量中藥組、中劑量中藥組、高劑量中藥組水平比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),顯示復(fù)方中藥對特異性T淋巴細(xì)胞和B淋巴細(xì)胞免疫無促進(jìn)作用。見表3。
表3 T淋巴細(xì)胞表面抗原結(jié)果比較(x±s)
CD49b+、IL-2、IFN-γ 模型對照組水平均低于正常對照組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05或P<0.01),低劑量中藥組、中劑量中藥組、高劑量中藥組均值均增高,但僅低劑量中藥組CD49b+與模型對照組比較,差異有高度統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.008<0.01),表明小劑量復(fù)方中藥對免疫抑制小鼠非特異性免疫NK細(xì)胞有免疫促進(jìn)作用。IL-2、IFN-γ低劑量中藥組、中劑量中藥組與模型對照組比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(IL-2:P=0.004、P=0.039;IFN-γ:P=0.026、P=0.024,P < 0.05或P<0.01),表明小劑量、中劑量復(fù)方中藥對免疫抑制小鼠非特異性免疫細(xì)胞因子IL-2及IFN-γ有免疫促進(jìn)作用。見表4。
表4 各組NK細(xì)胞及細(xì)胞因子比較(%,x±s)
機(jī)體的免疫功能主要與T淋巴細(xì)胞和B淋巴細(xì)胞、單核巨噬細(xì)胞、NK自然殺傷細(xì)胞等免疫細(xì)胞及抗體、補(bǔ)體、免疫細(xì)胞產(chǎn)生的細(xì)胞因子有關(guān)。特異性免疫與T淋巴細(xì)胞、B淋巴細(xì)胞及B淋巴細(xì)胞活化產(chǎn)生的抗體有關(guān),非特異性免疫與單核巨噬細(xì)胞、NK自然殺傷有關(guān),而補(bǔ)體及細(xì)胞因子廣泛參與特異性免疫與非特異性免疫。根據(jù)中醫(yī)藥理論和現(xiàn)代藥理研究表明:西洋參補(bǔ)氣養(yǎng)陰,清熱生津,主要活性成分為皂苷類、多糖類和氨基酸類等,其中的活性多糖可以通過激活網(wǎng)狀內(nèi)皮系統(tǒng)、補(bǔ)體、激活巨噬細(xì)胞和T、B淋巴細(xì)胞,誘生多種免疫因子等途徑對機(jī)體免疫產(chǎn)生廣泛的影響,從而提高機(jī)體免疫力[4];黃芪益氣固表,能調(diào)節(jié)免疫功能,可治療氣虛感冒;枸杞滋補(bǔ)肝腎,能提高機(jī)體免疫功能,延緩抗衰老,長期服用可增強(qiáng)免疫功能;當(dāng)歸補(bǔ)血活血,具有抗炎和改善血管功能的作用[5]。本文以常用補(bǔ)益劑西洋參、黃芪、當(dāng)歸、枸杞組成的復(fù)方中藥湯劑為研究對象,全方具有補(bǔ)氣活血、滋補(bǔ)肝腎,滋陰益陽作用,觀察其對免疫器官、免疫細(xì)胞、抗體、補(bǔ)體、細(xì)胞因子等不同層面免疫功能的影響,探求其增強(qiáng)免疫的機(jī)制。
正常對照組和模型對照組與各治療組第1天的體重均值比較差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),表明隨機(jī)分組成功。環(huán)磷酰胺為常有免疫抑制劑,為細(xì)胞周期非特異性細(xì)胞毒藥物,其免疫抑制機(jī)制為對骨髓強(qiáng)大抑制作用,致T、B淋巴細(xì)胞絕對數(shù)量減少,并抑制淋巴細(xì)胞受特異性抗原刺激后母細(xì)胞的轉(zhuǎn)化[6]。本實(shí)驗(yàn)采用其制作免疫抑制動(dòng)物模型,實(shí)驗(yàn)結(jié)束后觀察到體重、脾指數(shù)、CD3+、CD4+、CD8+、CD19+、NK 細(xì)胞、補(bǔ)體C3、細(xì)胞因子IL-2、IFN-γ均降低,且差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),表明建立免疫抑制動(dòng)物模型成功。模型對照組與各治療組體重和脾指數(shù)無差異(P>0.05),各復(fù)方中藥治療組對免疫抑制小鼠體重和脾指數(shù)無影響,表明其在免疫器官層面無顯著性作用。脾指數(shù)模型對照組比正常對照組降低(P=0.0001),可能與促進(jìn)免疫器官的生長作用因環(huán)磷酰胺對機(jī)體抑制作用過強(qiáng)而顯現(xiàn)不出來有關(guān)。
本實(shí)驗(yàn)觀察復(fù)方中藥各劑量組與模型組比較對CD3+、CD4+、CD8+、CD4+/CD8+、CD19+均無差異,因此未能證實(shí)其對特異性細(xì)胞免疫及體液免疫有促進(jìn)作用。以往有報(bào)道西洋參多糖對60℃射線照射致免疫抑制模型小鼠可增強(qiáng)Con A誘導(dǎo)的小鼠脾T淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化能力,增強(qiáng)小鼠遲發(fā)型變態(tài)反應(yīng)能力[7];黃芪多糖對正常小鼠可增強(qiáng)Con A誘導(dǎo)的小鼠脾T淋巴細(xì)胞轉(zhuǎn)化能力[8];當(dāng)歸多糖明顯促進(jìn)健康人外周血T淋巴細(xì)胞增殖[9];枸杞多糖明顯增強(qiáng)植物凝集素PHA活化的人外周血淋淋巴細(xì)胞的增殖[10]。復(fù)方中藥中四種單味藥均可促進(jìn)T淋巴細(xì)胞免疫力,而組成的復(fù)方反而未得出促進(jìn)T淋巴細(xì)胞免疫的結(jié)論,這可能與免疫模型不同引起藥物對機(jī)體敏感性不同有關(guān),還與觀察T淋巴細(xì)胞指標(biāo)不同及檢測方法不同有關(guān)。
補(bǔ)體是存在于血清和組織液中經(jīng)活化后具有酶活性的蛋白質(zhì),補(bǔ)體成分可與多種免疫細(xì)胞相互作用,調(diào)節(jié)細(xì)胞增殖、分化,補(bǔ)體C3等可參與固定抗原,使抗原易被APC處理與遞呈,參與免疫應(yīng)答的誘導(dǎo),并參與清除免疫復(fù)合物及免疫記憶,補(bǔ)體系統(tǒng)是具有重要生物學(xué)作用的效應(yīng)級(jí)聯(lián)放大系統(tǒng)。補(bǔ)體途徑分為經(jīng)典、替代和外源凝集素途徑[11],補(bǔ)體C3是補(bǔ)體激活的三個(gè)級(jí)聯(lián)的一個(gè)關(guān)鍵組成部分[12],因此本實(shí)驗(yàn)選擇補(bǔ)體C3指標(biāo)作為觀察補(bǔ)體系統(tǒng)功能。低劑量中藥組與模型對照組比較補(bǔ)體C3顯著升高(P=0.0001<0.01),表明低劑量中藥組能顯著升高免疫抑制小鼠補(bǔ)體C3濃度,顯著促進(jìn)免疫抑制小鼠補(bǔ)體系統(tǒng)的功能。
本實(shí)驗(yàn)免疫抑制模型對照組與正常對照組比較抗體IgG是升高的,差異有高度統(tǒng)計(jì)意義(P=0.002),而高劑量中藥組、中劑量中藥組、低劑量中藥組IgG均值依次降低,且低劑量中藥組與模型對照組比較,差異顯著(P值=0.001),表明低劑量中藥組能顯著降低免疫抑制小鼠抗體IgG的濃度。機(jī)體抗原免疫后血清中的抗體其中IgM檢出時(shí)間最早,IgG檢出時(shí)間較晚但存留時(shí)間最長,IgA檢出時(shí)間最晚[13]。本實(shí)驗(yàn)B淋巴細(xì)胞抗原CD19+在免疫抑制后下降,因IgG產(chǎn)生時(shí)間較晚但存留時(shí)間最長,在實(shí)驗(yàn)14 d的時(shí)間節(jié)點(diǎn)上,IgG主要是造模前存留的,因此理論上模型組與正常對照組應(yīng)無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異。通常抗原與抗體結(jié)合,在補(bǔ)體的參與下,抗原與抗體結(jié)合產(chǎn)生幾何級(jí)聯(lián)放大效應(yīng),清除抗原的同時(shí)消耗了抗體,補(bǔ)體升高會(huì)導(dǎo)致抗體降低,補(bǔ)體降低也會(huì)導(dǎo)致抗體升高。本實(shí)驗(yàn)免疫抑制后對補(bǔ)體也造成了強(qiáng)大的抑制,因而出現(xiàn)正常對照組IgG抗體低,模型組IgG抗體升高。本實(shí)驗(yàn)B淋巴細(xì)胞抗原CD19+各中藥治療組與模型組無差異,其一定程度上反映了機(jī)體體液免疫功能,體液免疫產(chǎn)生的抗體理論上亦無差異,因此認(rèn)為低劑量中藥組IgG降低是因?yàn)榈蛣┝繌?fù)方中藥可顯著升高補(bǔ)體所引起的。
NK自然殺傷細(xì)胞對病原體無嚴(yán)格選擇性,能識(shí)別多種病原體的共有成分,對多種病原體均有吞噬、殺傷作用。NK細(xì)胞是產(chǎn)生細(xì)胞因子IFN-γ主要的先天免疫細(xì)胞,NK細(xì)胞不需要事先暴露于抗原發(fā)揮其功能,通過自然的細(xì)胞毒性和的分泌細(xì)胞因子發(fā)揮防止微生物的侵襲和傳播的重要的免疫效應(yīng),NK細(xì)胞是天然免疫和獲得性免疫功能之間的橋梁,先天第一線防御癌癥和病原體的入侵的關(guān)鍵[14]。CD49是小鼠NK細(xì)胞主要標(biāo)志物,本實(shí)驗(yàn)選用其作為觀察NK細(xì)胞的功能指標(biāo)。復(fù)方中藥低劑量組與模型組比較可顯著升高CD49(P=0.008<0.01),顯示低劑量復(fù)方中藥能有效促進(jìn)NK自然殺傷細(xì)胞數(shù)量。在此需要說明的是復(fù)方中藥表現(xiàn)出的對機(jī)體免疫促進(jìn)作用并不是由于中和環(huán)磷酰胺的藥效而引起的,因?yàn)榄h(huán)磷酰胺的半衰期為4 h,24 h后已經(jīng)過了6個(gè)半衰期,機(jī)體環(huán)磷酰胺的血藥濃度僅有1/64,因此24 h后喂服中藥不存在中和環(huán)磷酰胺的藥效,表明小劑量復(fù)方中藥對免疫抑制小鼠非特異性免疫NK細(xì)胞有免疫促進(jìn)作用。
輔助性Th1細(xì)胞受抗原刺激分泌細(xì)胞因子IL-2和IFN-γ,IL-2刺激CTL細(xì)胞增殖與分化,IFN-γ可誘導(dǎo)單核細(xì)胞、巨噬細(xì)胞、樹突狀細(xì)胞、皮膚成纖維細(xì)胞、血管內(nèi)皮細(xì)胞、星狀細(xì)胞等MHCⅡ類抗原的表達(dá),使其參與抗原提呈和特異性免疫的識(shí)別過程;IFN-γ還能增強(qiáng)巨噬細(xì)胞表面受體Fc的表達(dá),促進(jìn)巨噬細(xì)胞吞噬免疫復(fù)合物、抗體包被的病原體和腫瘤細(xì)胞[15];IL-2和IFN-γ都可以增強(qiáng)NK細(xì)胞細(xì)胞毒活性。因此IL-2和IFN-γ是反映機(jī)體免疫功能的重要指標(biāo)。本實(shí)驗(yàn)中劑量中藥組及低劑量中藥組與模型組比較均能升高IL-2和IFN-γ(P<0.05),表明一定劑量范圍的復(fù)方中藥對免疫細(xì)胞因子有促進(jìn)作用。
本實(shí)驗(yàn)復(fù)方中藥藥理毒理試驗(yàn)未發(fā)現(xiàn)明顯毒副作用,但高劑量中藥組對所有免疫指標(biāo)均無促進(jìn)作用,說明藥物劑量過大對機(jī)體還是有一定的不利影響,中藥中既使補(bǔ)益藥,也有一定的副作用。雖然都是補(bǔ)氣養(yǎng)陰活血的補(bǔ)益藥,正應(yīng)了中醫(yī)理論有“氣有余便是火”,補(bǔ)氣有余易產(chǎn)生火邪。
因此,復(fù)方中藥(由西洋參、黃芪、枸杞、當(dāng)歸等多味藥組成)在一定劑量范圍內(nèi),雖然還未能證實(shí)對機(jī)體特異性細(xì)胞免疫和體液免疫有促進(jìn)作用,但對非特異性細(xì)胞免疫及體液免疫有顯著促進(jìn)作用。
[1]科技部.關(guān)于善待實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的指導(dǎo)性意見[S].2006-9-13.
[2]趙鈞銘,應(yīng)紅光,李長虹,等.振明正生對人腫瘤細(xì)胞裸鼠移植瘤的抑制作用及其急性毒性試驗(yàn)[J].現(xiàn)代腫瘤醫(yī)學(xué),2009,17(4):631-633.
[3]高璟春,張金超,陳瑤,等.補(bǔ)中益氣湯的LC-MS分析及其對免疫抑制小鼠的調(diào)節(jié)作用[J].中草藥,2006,37(8):1134-1137.
[4]王階,林洪生,李勇,等.免疫2號(hào)方對艾滋病免疫重建不全患者臨床癥狀、體征的影響[J].中醫(yī)雜志,2012,53(11):923-926.
[5]韓潔,岳文鵬,何光志,等.八種中藥多糖對小鼠巨噬細(xì)胞釋放細(xì)胞因子的影響[J].現(xiàn)代免疫學(xué),2011,31(6):495-498.
[6]包晶晶,林海霞,馬璟.CFSE示蹤與流式細(xì)胞儀檢測法研究環(huán)磷酰胺對T淋巴細(xì)胞增殖的影響[J].中國藥理學(xué)通報(bào),2010,26(6):828-831.
[7]于永超,張佳麗,林兵,等.西洋參多糖對鈷-60輻照小鼠的免疫調(diào)節(jié)作用[J].現(xiàn)代預(yù)防醫(yī)學(xué),2012,39(11):2685-2687.
[8]郭曦,王繼宏,肖雪珍,等.4種中藥多糖對小鼠脾淋巴細(xì)胞增殖的影響[J].中國獸醫(yī)雜志,2011,47(8):56-59.
[9]耿衛(wèi)樸,徐曼,羅祎,等.靈芝多糖和當(dāng)歸多糖促進(jìn)人外周血T淋巴細(xì)胞增殖和分泌IFN-γ[J].中國藥理學(xué)通報(bào),2012,28(5):655-658.
[10]董永杰,單鐵英,岳峰,等.枸杞多糖對淋巴細(xì)胞功能的影響[J].現(xiàn)代中西醫(yī)結(jié)合雜志,2010,19(19):2362-2363.
[11]Schwab J,Hammerschmidt C,Richter D,et al.Borrelia valaisiana Resist Complement-Mediated Killing Independently of the Recruitment of Immune Regulators and Inactivation of Complement Components[J].PLoS One,2013,8(1):e53659.
[12]Mogilenko DA,Kudriavtsev IV,Shavva VS,et al.PeroxisomeProliferator-activatedReceptorαPositivelyRegulates Complement C3 Expression but Inhibits Tumor Necrosis Factor α-mediated Activation of C3 Gene in Mammalian Hepatic-derived Cells[J].J Biol Chem,2013,288(3):1726-1738.
[13]齊雪峰,程安春,汪銘書,等.鴨瘟弱毒疫苗誘導(dǎo)IgA、IgM和IgG產(chǎn)生規(guī)律的研究[J].中國農(nóng)業(yè)科學(xué),2008,41(10):3305-3310.
[14]Klezovich BM,Corre JP,Jusforgues SH,et al.Mechanisms of NK cell-macrophage Bacillus anthracis crosstalk:a balance between stimulation by spores and differential disruption by toxins[J].PLoS Pathog,2012,8(1):e1002481.
[15]劉英姿,羅有梁,周鐵忠.原花青素A-1調(diào)節(jié)ConA刺激小鼠脾細(xì)胞分泌Th1/Th2細(xì)胞因子的影響[J].免疫學(xué)雜志,2012,28(11):942-945.