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        生長(zhǎng)分化因子-5及堿性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子誘導(dǎo)家兔椎間盤(pán)髓核細(xì)胞成骨作用的研究

        2014-01-04 03:05:16張長(zhǎng)春陸泉秀周新社鮑正齊胡建國(guó)周建生
        關(guān)鍵詞:骨鈣素成骨膠原

        張長(zhǎng)春 陸泉秀 周新社 鮑正齊 胡建國(guó) 丁 海 許 剛 周建生*

        (1安徽省蚌埠醫(yī)學(xué)院第一附屬醫(yī)院骨科,蚌埠233004;2安徽省組織移植重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,蚌埠233004)

        目前通過(guò)手術(shù)方式對(duì)滑脫椎體進(jìn)行復(fù)位和椎間融合是治療腰椎滑脫的最終方法。但國(guó)內(nèi)外有學(xué)者認(rèn)為[1,2],對(duì)于Ⅰ和Ⅱ度的腰椎滑脫只需要原位脊柱融合即可,對(duì)I度滑脫復(fù)位反而易引起并發(fā)癥。而手術(shù)進(jìn)行脊柱融合不僅創(chuàng)傷大,治療費(fèi)用高,而且術(shù)中使用的融合材料,包括自體骨、異體骨和人工骨等都存在著各種不足。臨床病例研究發(fā)現(xiàn)某些椎間盤(pán)組織鈣化,可以形成高密度的骨組織[3]。而通過(guò)微創(chuàng)技術(shù)人工誘導(dǎo)椎間盤(pán)組織使其鈣化,則有希望達(dá)到椎體融合的目的。因此,本研究通過(guò)建立家兔椎間盤(pán)髓核細(xì)胞的體外培養(yǎng)模型,研究重組人生長(zhǎng)分化因子-5(recombinant human growth differentiation factor-5,rh GDF-5)和堿性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子(basic fibroblast growth factor,bFGF)對(duì)髓核細(xì)胞成骨潛能的激發(fā)作用。

        材料和方法

        1.試劑與儀器

        rh GDF-5(Peprotech公司,美國(guó)),bFGF(Peprotech公司,美國(guó)),鼠抗人I型膠原抗體、鼠抗人Ⅱ型膠原抗體(Chemicon公司),Envissin+TM Peroxidase Rabbit(DAKO公司),MTT試劑盒(碧云天生物技術(shù)研究所),骨鈣素放射免疫檢測(cè)試劑盒(北京東亞免疫技術(shù)研究所),磷酸鹽緩沖液(武漢博士德生物技術(shù)有限公司)。

        2.髓核細(xì)胞的提取和培養(yǎng)

        取健康成年家兔4只,無(wú)菌條件下取出兔胸腰段脊柱,仔細(xì)分離出椎間盤(pán)髓核組織,剪碎至1 mm3,經(jīng)0.1%Ⅱ型膠原酶消化后離心、重懸兩次,得到髓核細(xì)胞后0.4%臺(tái)盼蘭染色并用血細(xì)胞計(jì)數(shù)板進(jìn)行計(jì)數(shù),計(jì)算細(xì)胞活力(細(xì)胞活力=未被染色活細(xì)胞數(shù)量÷細(xì)胞總數(shù)×100%),得到高成活率、成份均一的椎間盤(pán)髓核細(xì)胞。用差速貼壁法純化細(xì)胞,得到純度更高的髓核細(xì)胞。按1×105/ml密度將細(xì)胞分別接種于培養(yǎng)板和培養(yǎng)瓶中,培養(yǎng)基為含15%胎牛血清的DMEM,青霉素100 U/ml、鏈霉素100 U/l,待細(xì)胞貼壁后每3 d進(jìn)行傳代,收集,倒置顯微鏡觀察生長(zhǎng)情況。

        3.實(shí)驗(yàn)分組

        取上述第三代細(xì)胞,按細(xì)胞因子不同分為四個(gè)培養(yǎng)組:A組(對(duì)照組):DMEM/15%FBS培養(yǎng)基;B組(rh GDF-5):DMEM/15%FBS培養(yǎng)基+rh GDF-5(0.1μg/ml);C組(bFGF):DMEM/15%FBS培養(yǎng)基+bFGF(10 ng/ml);D 組(rh GDF-5+bFGF):DMEM/15%FBS培養(yǎng)基+rhGDF-5(0.1μg/ml)+bFGF(10 ng/ml)。

        4.Ⅰ、Ⅱ型膠原免疫組化染色

        取第三代細(xì)胞爬片后PBS洗片,4%多聚甲醛固定10 min后3%H2O2、10%正常山羊血清室溫依次孵育10min,傾去血清先后滴加一抗(4℃過(guò)夜),二抗,DBA顯色,沖洗后復(fù)染、封片。設(shè)置陰性對(duì)照(不加一抗,其余步驟相同)。

        各組細(xì)胞培養(yǎng)至第24 d分別行Ⅰ型、II型膠原蛋白免疫組化染色(按試劑盒步驟進(jìn)行)。前者用鼠抗人I型膠原抗體為一抗,后者用鼠抗人II型膠原抗體為一抗。

        5.Ⅰ型膠原免疫印跡(Western blot)

        將上述處理后的各組細(xì)胞,迅速冰上勻漿、沸煮10 min,超聲后BCA法測(cè)定細(xì)胞蛋白濃度。按照溴酚藍(lán):β-巰基乙醇=1∶3的比例充分混合、震蕩、煮沸10 min。將預(yù)染maker和各組樣品依次加入相應(yīng)泳道進(jìn)行電泳,待目的蛋白分離后、緩慢的由SDS-PAGE膠轉(zhuǎn)至NC膜上轉(zhuǎn)膜、3-5%脫脂奶粉室溫封閉30-60 min、一抗孵育(4℃過(guò)夜)、TBS漂洗3次×10 min、二抗室溫下避光孵育1-2 h、TBS漂洗3次×10 min,Odyssey顯色儀顯色分析。

        6.放射免疫技術(shù)測(cè)定骨鈣素表達(dá)

        各組細(xì)胞培養(yǎng)至24 d后取上清液,加入分離劑后,混勻室溫放置20 min,4℃3500 r/min離心20 min,吸棄上清液,檢測(cè)沉淀物放射劑量。由放射免疫γ計(jì)數(shù)器預(yù)先編制程序,直接給出標(biāo)準(zhǔn)曲線、相關(guān)參數(shù)及樣品濃度,單位以ng/ml表示。按表1依次進(jìn)行。

        表1 BGP放射免疫技術(shù)加液程序(μl)Table 1 Feeding program of BGP radio-immunity technology(μl)

        7.四環(huán)素標(biāo)記鈣結(jié)節(jié)及茜素紅染色比較鈣鹽沉積程度

        各組細(xì)胞培養(yǎng)至24 d時(shí),將其分別在含有1 mg/ml四環(huán)素的培養(yǎng)基中培養(yǎng)1 h,更換正常DMEM/15%FBS培養(yǎng)基再培養(yǎng)1 h,然后用PBS洗滌,95%乙醇脫水后熒光顯微鏡觀察;各組細(xì)胞培養(yǎng)至24 d時(shí),95%乙醇固定后,0.1%茜素紅染色,雙蒸水沖洗后,倒置顯微鏡觀察比較各組鈣鹽沉積情況。

        8.統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

        采用SPSS 17.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行處理,對(duì)各組總體方差進(jìn)行齊性檢驗(yàn),用單因素方差分析確定各組均數(shù)間是否有差異,以P<0.05為差異有顯著性,具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        結(jié) 果

        1.Ⅰ、Ⅱ型膠原免疫組化染色

        Ⅰ、Ⅱ型膠原免疫組化染色胞漿呈黃褐色定義為陽(yáng)性,結(jié)果顯示對(duì)照組和rhGDF-5組細(xì)胞分泌的Ⅰ型膠原免疫組化染色呈陰性(圖1A和B);bFGF組和rh GDF-5+bFGF組細(xì)胞分泌的Ⅰ型膠原免疫組化染色呈陽(yáng)性(圖1C和D)。四組細(xì)胞分泌的Ⅱ型膠原免疫組化染色均為陰性。

        2.Ⅰ型膠原免疫印跡(Western blot)

        免疫印跡結(jié)果顯示:對(duì)照組(Vector)和rh GDF-5組細(xì)胞分泌的Ⅰ型膠原蛋白的表達(dá)水平顯著低于bFGF組和rhGDF-5+bFGF組(P<0.05)(圖2)。

        圖2 各組細(xì)胞Ⅰ型膠原蛋白免疫印跡結(jié)果。A.對(duì)照組(Vector)和rh GDF-5組細(xì)胞Ⅰ型膠原蛋白的表達(dá)水平顯著低于bFGF組和rhGDF-5+bFGF組,DM1A(α-tublin)為內(nèi)參。B.Ⅰ型膠原蛋白/內(nèi)參DM1A后圖灰度值的統(tǒng)計(jì)圖(*P<0.05,**P<0.05和Vector組比較)。Fig.2 Result of CollagenⅠexpressed in each group.A.The expression level of CollagenⅠprotein in Vector and rh GDF-5 group is lower than that in bFGFand rhGDF-5+bFGFgroup.The levels of CollagenⅠwas standardized against the level of the DM1A (α-tublin)protein.B.Blot of CollagenⅠ/DM1A protein(*P<0.05,**P<0.05 versus Vector group).

        3.骨鈣素表達(dá)水平測(cè)定結(jié)果

        bFGF組細(xì)胞分泌的骨鈣素檢測(cè)結(jié)果與對(duì)照組相比較無(wú)顯著差異。rhGDF-5組和rhGDF-5+bFGF組細(xì)胞分泌的骨鈣素量均明顯高于對(duì)照組(表2)。

        表2 第24 d各組細(xì)胞上清液中骨鈣素測(cè)定結(jié)果(ng/ml)Table 2 Osteocalcin detection in the supernate after 24 days'cultivation

        4.四環(huán)素標(biāo)記鈣結(jié)節(jié)

        對(duì)照組和bFGF組均未見(jiàn)明顯熒光標(biāo)記的鈣結(jié)節(jié);rh GDF-5組和rh GDF-5+bFGF組可見(jiàn)明顯的熒光鈣結(jié)節(jié),形狀以圓形為主,伴有少數(shù)不規(guī)則形結(jié)節(jié)。rhGDF-5+bFGF組鈣結(jié)節(jié)的大小和數(shù)量均明顯高于GDF-5組的鈣結(jié)節(jié)(圖3)。

        5.茜素紅染色

        對(duì)照組未見(jiàn)鈣鹽沉積;rh GDF-5組鈣鹽沉積較A組明顯;bFGF組未見(jiàn)明顯的鈣結(jié)節(jié),提示無(wú)明顯鈣鹽沉積。實(shí)驗(yàn)組的鈣鹽沉積最為明顯,形成的鈣結(jié)節(jié)無(wú)論在大小和數(shù)量上均要高于其他三組(圖4)。

        討 論

        髓核細(xì)胞能特異性地合成和分泌大量的Ⅱ型膠原和聚合蛋白,并且堿性磷酸酶活性非常低[4]。由于長(zhǎng)期的缺氧環(huán)境,髓核細(xì)胞缺乏線粒體并富含糖原[5]。體外培養(yǎng)的髓核細(xì)胞有氧呼吸活動(dòng)增強(qiáng),在有或沒(méi)有誘導(dǎo)因子作用的情況下,其Ⅱ型膠原免疫組化染色均為陰性,并且細(xì)胞內(nèi)的糖原減少甚至消失、線粒體增多,這些都提示,髓核細(xì)胞出現(xiàn)了向成纖維細(xì)胞反分化的特征[6]。

        Ⅰ型膠原作為鈣鹽沉積的基礎(chǔ),是成骨細(xì)胞合成分泌的特異性膠原蛋白,當(dāng)椎間盤(pán)發(fā)生退變或鈣化時(shí),髓核細(xì)胞分泌的Ⅱ型膠原會(huì)減少,Ⅰ型膠原明顯增多[7]。而本實(shí)驗(yàn)中,在bFGF的誘導(dǎo)下髓核細(xì)胞Ⅰ型膠原免疫組化呈陽(yáng)性染色,提示髓核細(xì)胞在誘導(dǎo)因子bFGF的作用下出現(xiàn)了轉(zhuǎn)分化,即具有成骨分化的潛能。

        GDF-5屬于TGF-β超家族中的新成員,是機(jī)體生長(zhǎng)發(fā)育過(guò)程的重要生長(zhǎng)因子。很多研究顯示其在體內(nèi)、外均有較強(qiáng)的促進(jìn)髓核細(xì)胞成骨性分化、誘導(dǎo)異位成骨作用[8-11]。Zeng等[11]發(fā)現(xiàn) GDF-5誘導(dǎo)脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞使其表達(dá) OC、Cbfal、ALP和VEGF等增加。從而證實(shí)GDF-5的礦化作用能誘導(dǎo)脂肪間充質(zhì)干細(xì)胞成骨轉(zhuǎn)化。Rothamel等[12]研究發(fā)現(xiàn)GDF-5的復(fù)合材料,能促進(jìn)比格犬牙槽脊骨質(zhì)缺損部位的骨組織形成。這些均提示:GDF-5有顯著的礦化作用。

        骨鈣素是成骨細(xì)胞分化成熟及基質(zhì)礦化的特異性指標(biāo);Ⅰ型膠原是成骨細(xì)胞分泌的主要膠原蛋白,是成骨細(xì)胞分化的標(biāo)志;鈣鹽沉積則是細(xì)胞礦化作用的主要表 現(xiàn)[13,14]。本實(shí)驗(yàn) 中 B 組 (rh GDF-5)細(xì)胞不論是上清液中骨鈣素表達(dá)還是茜素紅染色顯示鈣鹽的沉積,均要比A組強(qiáng),且明顯抑制髓核細(xì)胞的增殖,提示rhGDF-5通過(guò)抑制體外培養(yǎng)的髓核細(xì)胞的增殖,而誘導(dǎo)其成骨作用;但其并不影響Ⅰ型膠原的表達(dá)。

        bFGF具有促進(jìn)細(xì)胞有絲分裂、促進(jìn)軟骨和骨組織損傷修復(fù)及行成、促進(jìn)血管形成等多種生物學(xué)作用[15]。Riew 等[16]發(fā)現(xiàn)bFGF能促使細(xì)胞合成DNA,促進(jìn)細(xì)胞從靜止期進(jìn)入增殖期,從而能促進(jìn)大多數(shù)源于中胚葉和神經(jīng)外胚葉的細(xì)胞增殖。研究發(fā)現(xiàn)敲除bFGF基因可引起骨密度降低,骨成長(zhǎng)遲緩,導(dǎo)致成骨障礙[17]。本實(shí)驗(yàn)中C(bFGF)組細(xì)胞的增殖速度較對(duì)照組rhGDF-5組明顯加快,Ⅰ型膠原的表達(dá)明顯增強(qiáng),但骨鈣素表達(dá)較A組細(xì)胞無(wú)顯著差異,茜素紅和四環(huán)素?zé)晒庖参匆?jiàn)明顯的鈣結(jié)節(jié),故可以推測(cè),bFGF的主要作用是促進(jìn)細(xì)胞增殖,在誘導(dǎo)細(xì)胞骨化方面并不如rhGDF-5作用明顯。

        成骨誘導(dǎo)和骨形成是一個(gè)復(fù)雜而又連續(xù)的過(guò)程,許多細(xì)胞因子通過(guò)不同方式在不同環(huán)節(jié)上影響不同時(shí)期的成骨細(xì)胞生長(zhǎng)和代謝[18,19]。GDF-5和bFGF通過(guò)不同的途徑和不同的機(jī)理作用于椎間盤(pán)髓核細(xì)胞,誘導(dǎo)髓核細(xì)胞成骨分化。GDF-5可誘導(dǎo)髓核細(xì)胞成骨分化,促進(jìn)鈣鹽沉積形成鈣結(jié)節(jié),但同時(shí)阻礙了細(xì)胞的增殖。bFGF能使細(xì)胞DNA合成量增加,促進(jìn)細(xì)胞有絲分裂,從而促進(jìn)細(xì)胞的增殖。但其誘導(dǎo)髓核細(xì)胞成骨能力明顯不足。所以,當(dāng)聯(lián)合使用GDF-5和bFGF時(shí),GDF-5誘導(dǎo)細(xì)胞成骨后,為bFGF提供了大量的靶細(xì)胞,進(jìn)而促進(jìn)成骨細(xì)胞的增殖分化。bFGF彌補(bǔ)了DGF-5促細(xì)胞增殖能力上的不足,而GDF-5彌補(bǔ)了bFGF成骨誘導(dǎo)活性底下的缺點(diǎn),使兩者在誘導(dǎo)髓核細(xì)胞成骨的生物學(xué)功能上形成互補(bǔ),加速了成骨誘導(dǎo)和骨形成的過(guò)程。本實(shí)驗(yàn)中rh GDF-5+bFGF組的骨鈣素表達(dá)最高、Ⅰ型膠原免疫組化的強(qiáng)陽(yáng)性、明顯的鈣鹽沉積都說(shuō)明了GDF-5和bFGF有協(xié)同誘導(dǎo)髓核細(xì)胞成骨的能力。

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        圖 版 說(shuō) 明

        圖1 髓核細(xì)胞Ⅰ型膠原免疫組化陰性(A,B)和陽(yáng)性(C,D箭頭所示)染色(×100)(A:A組;B:B組;C:C組;D:D組)。

        圖3 四環(huán)素標(biāo)記的鈣鹽陰性(A,C)和陽(yáng)性(B,D箭頭所示)沉積(×200)。A:A組;B:B組;C:C組;D:D組。

        圖4 茜素紅染色的鈣鹽(A,C)和陽(yáng)性(B,D箭頭所示)沉積(×200)。A:A組;B:B組;C:C組;D:D組。

        EXPLANATION OF FIGURES

        Fig.1 Negative(A,B)and positive(C,D)staining of typeⅠcollagen in the nucleus pulposus cells in each group by immunohistochemistry staining(×100)(A:group A;B:group B;C:group C;D:group D).

        Fig.3 Negative(A and C)and positive(B and D)calcium deposition in each group by tetracycline marker staning(×200).A:group A;B:group B;C:group C;D:group D.

        Fig.4 Negative(A,C)and positive(B,D)calcium deposition in each group by alizarin red staining(×200).A:group A;B:group B;C:group C;D:group D.

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