王國麗 大寶貴嗣 山崎和生 Stefania Danko 鈴木裕＊

（1中國醫(yī)科大學生物化學與分子生物學教研室，沈陽110001；2旭川醫(yī)科大學生物化學講座，日本 旭川078－8501）

SERCA1a是肌漿網內質網鈣離子轉運ATP酶 （sarco－endoplasmic calcium transporting ATPase，SERCA）的成人骨骼肌型，通過主動轉運鈣離子入肌漿網，維持細胞正常的鈣離子濃度及梯度，保證肌肉收縮舒張的正常進行［1］。在應用突變法研究SERCA1a結構及功能關系時，有些變異型SERCA1a在真核細胞內表達后，無法提取足夠的微粒體蛋白進行后續(xù)實驗。為尋找SERCA1a表達的最適條件，解決這類蛋白質獲取不足問題，本文通過比較COS1表達的外源性SERCA1a表達量及酶活性的檢測結果，對細胞培養(yǎng)溫度、時間、轉染試劑用量以及攜帶兔SERCA1a cDNA的p MT2質粒的轉染用量等可能影響SERCA1a表達的因素進行了評估。

材料和方法

1.一般材料

非洲綠猴腎細胞COS1細胞購自ATCC。DMEM、FBS、Lipofactamine、plus reagent購自Invitrogen。p MT2載體和p MT2－SERCA1a質粒獲贈于加拿大多倫多大學D.H.Mac Lennan教授。其余試劑分別購自日本和光株式會社和Sigma公司。

2.細胞培養(yǎng)及轉染

COS1細胞在10 cm培養(yǎng)皿中培養(yǎng)。培養(yǎng)基為含10%FBS的DMEM，無抗生素。培養(yǎng)箱設置100%濕度、5%CO2，常規(guī)培養(yǎng)溫度為37℃。

細胞融合度70%左右進行轉染。轉染過程中使用無血清DMEM。常規(guī)每皿加入p MT2空質粒或p MT2－SERCA1a質粒 DNA 8μg、lipofactamine 60μl、plus reagent 40μl混合物孵育5 h。更換含血清的DMEM后，于37℃或者降低至34℃、31℃繼續(xù)培養(yǎng)2至5 d。每皿DNA 4μg或lipofactamine 30μl、plus reagent 20μl的常規(guī)半量轉染亦分別進行，轉染后培養(yǎng)與常規(guī)全量轉染后培養(yǎng)相同。

3.微粒體制備

將10 cm培養(yǎng)皿內貼壁生長的COS1細胞用5 ml PBS洗2次后收集至2 ml含5 mmol／l EDTA的PBS液，再用5 ml PBS洗1次。加2 ml低滲液（10 mmol／l Tris－HCl、p H 7.5、0.5 mmol／l MgCl2），10 min后加入蛋白酶抑制劑aprotinin 200μ和100 mmol／l PMSF 20μl，使用Dounce玻璃勻漿器勻漿40下。加入2 ml溶液A（蔗糖0.5 mol／l、β巰基乙醇6 mmol／l、CaCl240μmol／l、KCI 300 mmol／l、Tris－HCl 10 mmol／l，p H 7.5），繼續(xù)勻漿20下，10000 g離心20 min。將上清與2.5 mol／l KCl 0.9 ml混勻，150000 g離心10 min（Himac CS 100FX，Hitachi）。微粒體沉淀用100μl溶液B混懸，零下80℃保存。溶液B成分為蔗糖0.25 mol／l、β巰基乙醇3 mmol／l、CaCl220μ mol／l、KCI 150 mmol／l、Tris－HCl 10 mmol／l，p H 7.5。離心在4℃進行，其它步驟均在低溫實驗室內冰上完成。

4.蛋白質定量

微粒體蛋白濃度的檢測應用Lowry法，每樣本或標準品設4平行孔，變異系數(shù)低于2%。

微粒體中的SERCA1a蛋白由雙抗體夾心ELISA法定量。固相抗體為羊抗兔SERCA1a IgG，一抗為鼠SERCA1a單克隆抗體（MA3－911，Affinity Bioreagents），二抗為辣根過氧化物酶標記的羊抗鼠抗體IgG，底物為TMB（Life Technologies）。加入0.2 N硫酸終止顯色反應，450 nm測吸光度。每個樣本或每個濃度標準品均設5個平行孔。

5.SERCA1a蛋白特異的的Ca2＋－ATP酶活性檢測

應用同位素法對SERCA1a水解ATP的酶活性進行檢測。ATP水解的速率在25℃測定。反應體系為50μl，含10μg／ml微粒體蛋白、50 mmol／l MOPS／Tris（p H 7.0）、0.1 mol／l KCl、7 mmol／l MgCl2、0.55 mmol／l CaCl2、0.5mmol／l EGTA、1μmol／l A23187、0.1 mmol／l［γ－32P］ATP。反應時間為5、10、15、20 min。萃取游離磷酸，進行β閃爍計數(shù)。其時間放射性曲線為直線，斜率即單位時間內被0.5μg微粒體蛋白水解的ATP量。上述ATP酶活性需減去非鈣離子依賴的ATP酶活性，方為Ca2＋依賴的ATP酶活性。非鈣離子依賴的ATP酶活性檢測體系含5 mmol／l EGTA，但不加CaCl2，其余同上。計算過表達的外源SERCA1a蛋白特異的Ca2＋－ATP酶活性，還需要減去由p MT2空質粒轉染細胞制備的對照微粒體蛋白的Ca2＋－ATP酶活性本底，該本底為COS1細胞內源蛋白的Ca2＋－ATP酶活性，低于外源性SERCA1a蛋白Ca2＋－ATP酶活性的3%。

6.SERCA1a蛋白的EP生成量測定

EP生成量在0℃測定。反應體積為50μl，含50 μg／ml微粒體蛋白、50 mmol／l MOPS／Tris （p H 7.0）、0.1 mol／l KCl、7 mmol／l MgCl2、0.55 mmol／l CaCl2、0.5mmol／l EGTA、1 μmol／l A23187、0.01 mmol／l［γ－32P］ATP。反應10 s，加入15%TCA 及0.3 mol／l Pi。離心，5%SDS－PAGE分離沉淀蛋白質后，與標準品同時進行放射自顯影定量。空質粒轉染細胞的微粒體蛋白EP生成量做為本底被減去，其EP生成量低于含外源SERCA1a的微粒體蛋白的EP生成量的5%。

7.統(tǒng)計學分析

結 果

1.SERCA1a蛋白表達量檢測

p MT2－SERCA1a質粒DNA轉染細胞提取的微粒體蛋白含外源DNA過度表達的野生型SERCA1a（wild type，wt），而p MT2空質粒轉染細胞提取的微粒體蛋白僅含內源性鈣離子ATP酶SER－CA，故作為分析和計算的對照或本底（control，ct）。37℃培養(yǎng)的細胞微粒體蛋白的產量約為0.1 mg／皿，而其中SERCA1a的含量大致為1－2%。

質粒DNA轉染用量、培養(yǎng)溫度、培養(yǎng)時間對微粒體蛋白表達量及SERCA1a表達量的影響分別參見表1和圖1。37℃培養(yǎng)的結果與34℃培養(yǎng)接近，不同條件的常規(guī)全量轉染試劑轉染的微粒體蛋白及SERCA1a定量結果與半量試劑轉染結果無明顯差異，故本文圖表未列出37℃培養(yǎng)及常規(guī)全量試劑轉染的具體數(shù)據(jù)。

Lowry定量結果（表1）表明，微粒體蛋白表達量在培養(yǎng)3至4 d達到高峰，培養(yǎng)溫度變化對其無顯著影響。培養(yǎng)1 d微粒體蛋白量隨著培養(yǎng)溫度升高而增長，符合細胞生長增殖與溫度的正相關關系。培養(yǎng)5 d，4μg DNA轉染細胞微粒體蛋白量明顯高于8μg DNA轉染細胞（P＜0.01）。

表1 Lowry法微粒體蛋白定量結果Table 1 Detection of microsomal proteins by Lowry method

ELISA檢測結果（圖1）顯示降低細胞培養(yǎng)溫度及提高DNA轉染用量，可一定程度提高SERCA1a表達量。SERCA1a表達量在8μg DNA轉染細胞31℃培養(yǎng)3 d最高，顯著高于其他轉染及培養(yǎng)條件下的SERCA1a表達量（P＜0.01）。其他轉染及培養(yǎng)條件均在4 d達到高峰。

圖1 微粒體蛋白中SERCA1a濃度的ELISA檢測結果Fig.1 Detection of SERCA1a in microsomal proteins by ELISA

2.SERCA1a酶活性評估

34℃表達的SERCA1a的ATP酶活性顯著高于31℃表達的SERCA1a（P＜0.01，圖2），但仍明顯低于37℃表達的SERCA1a水解ATP的速度3.36±0.03 mol／min／mg（P＜0.05）［2］。31℃表達的SERCA1a的ATP酶活性隨著細胞培養(yǎng)時間延長而增加（P＜0.01），此變化趨勢在34℃不典型。37℃SERCA1a的ATP酶活性在細胞培養(yǎng)2至5 d期間無明顯變化，亦不受其他轉染及培養(yǎng)條件影響。

圖2 SERCA特異性的鈣離子ATP酶活性Fig.2 Specific Ca2＋ATPase of SERCA

EP定量結果與ATP酶活性的結果的變化趨勢基本一致（圖3）。37℃表達的SERCA1a生成EP總量為3.31±0.41 nmol／mg2，顯著高于31℃表達的SERCA1a（P＜0.01），但是僅略高于34℃表達的SERCA1a，甚至略低于34℃培養(yǎng)5 d的細胞表達的SERCA1a。

圖3 SERCA1a的磷酸化酶中間體EP的生成水平Fig.3 Phosphorylation level of SERCA1a

討 論

檢測結果表明：微粒體蛋白量在細胞培養(yǎng)3至4 d達到高峰，改變轉染及細胞培養(yǎng)條件，未見明顯變化；降低細胞培養(yǎng)溫度及提高DNA轉染用量，可增加SERCA1a表達量，SERCA1a表達量在8μg DNA轉染細胞31℃培養(yǎng)3 d達到最高；降低細胞培養(yǎng)溫度后，SERCA1a的ATP酶活性及EP生成量也隨之下降，并且ATP酶活性比EP生成量的下降幅度更大。在最低的細胞培養(yǎng)溫度31℃，SERCA1a的ATP酶活性及EP生成量隨著細胞培養(yǎng)時間延長而增加，而此趨勢在34℃和37℃表達的SERCA1a卻不明顯。

通過一系列實驗，可以確定瞬時轉染COS1細胞表達外源SERCA1a蛋白的最適條件為常規(guī)的半量轉染試劑、全量DNA、37℃培養(yǎng)3至4 d。不過全量DNA轉染與半量DNA轉染相比，SERCA1a表達量雖然最高可增至1.5倍，在質粒DNA量不十分充足時，增加培養(yǎng)皿的數(shù)目比單皿DNA用量加倍可收獲更多SERCA1a蛋白。而應用常規(guī)半量轉染試劑的優(yōu)勢則十分突出，比使用全量轉染試劑經濟，又在不減少SERCA1a產量的前提下，降低轉染試劑對細胞的毒性。

我們的結果與Muerhoff AS.的報道接近，提示瞬時轉染細胞在37℃培養(yǎng)3至4 d，細胞生長增殖達及外源蛋白的表達均達到高平臺期［3］。然而在我們的實驗中，發(fā)現(xiàn)了值得特別注意的現(xiàn)象，那就是降低細胞培養(yǎng)溫度可以提高外源蛋白的產量，但是這些過度表達的SERCA1a的EP生成量降低，ATP酶活性的降低更加顯著。在SERCA1a水解ATP轉運鈣離子的5步反應循環(huán)中［2］，SERCA1a先被ATP磷酸化形成磷酸化的酶中間體EP，然后EP被水解釋放有機磷酸，才能全部完成ATP水解成ADP和磷酸的反應（圖4）。因此，低溫表達的SERCA1a表達量增加，EP生成量降低，ATP酶活性的降低更多，可以用低溫條件下蛋白錯誤折疊增加而蛋白降解相關蛋白的活性下降解釋［4－6］。在31℃，細胞內錯誤折疊的SERCA1a增加，而細胞降解錯誤折疊和衰老蛋白質的能力下降，所以定位在內質網膜的SERCA1a有一部分結構異常，這部分蛋白質可能無法形成EP，即使形成EP，這些EP可能無法水解生成無機磷酸或者水解速度減低。31℃表達的SERCA1a的ATP酶活性及EP生成量隨培養(yǎng)時間延長而的變化趨勢從另一個角度支持上述觀點。在31℃，蛋白正確折疊與蛋白降解相關蛋白的活性下降，然而隨培養(yǎng)時間的延長，正確折疊蛋白質的比例及應降解蛋白質的降解總量不斷增長，達到高平臺期的時間晚于37℃和34℃，所以呈現(xiàn)5 d內SERCA1a的ATP酶活性及4 d內EP生成量隨培養(yǎng)時間延長而增加的趨勢。

圖4 SERCA1a反應循環(huán)模式圖Fig.4 The reaction cycle of SERCA1a

綜上所述，增加外源SERCA1a蛋白在COS1細胞內的表達可通過提高DNA轉染用量實現(xiàn)。降低細胞培養(yǎng)溫度雖可增加SERCA1a表達量，但引起SERCA1a蛋白的ATP酶活性和EP生成量下降。為獲取足夠的目的蛋白進行研究，對瞬時表達系統(tǒng)的轉染及培養(yǎng)條件進行最適化是必要的。需要特別注意的是某些條件下部分過度表達的外源蛋白可能不具備正常的結構與功能。用蛋白定量替代蛋白的生物功能及生物效應監(jiān)測的場合，需要謹慎地進行結論推斷。

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