孫文,王瑩,孫葉帥,朱林,馬瑤,楊紅兵
(石河子大學化學化工學院/新疆兵團化工綠色過程重點實驗室/省部共建國家重點實驗室培育基地,石河子 832003)
自由基是有機化合物發(fā)生化學反應時產(chǎn)生的含有一個不成對電子的原子團,主要包括超氧陰離子自由基、羥基自由基、烷基自由基、脂質(zhì)過氧化自由基等[1]。自由基及其誘導的氧化反應是導致生物衰老和某些疾病如癌癥、糖尿病、心血管疾病的重要因素[2-3]。目前在醫(yī)療和食品領(lǐng)域中,使用較多的是合成抗氧化劑(如BHA,BHT,TBHQ等)來消除人體內(nèi)的自由基[4],近年來人們發(fā)現(xiàn)經(jīng)人工合成的抗氧化劑皆有一定的毒性[5],而傳統(tǒng)中草藥和天然植物中含有許多自由基清除劑(如黃酮類、酚類、生物堿類等),均有較強的抗氧化作用,且安全、健康、無毒[6]。因此,從植物中尋找和開發(fā)能夠清除自由基的天然抗氧化劑已成為當今的研究熱點。
叉毛蓬(Petrosimonia sibirica L.)為藜科(Chenopodiaceae)叉毛蓬屬(Petrosimonia Bunge)一年生草本植物,大多生長在干旱、鹽堿地區(qū),主要分布于新疆,是新疆的特色植物。叉毛蓬粗蛋白含量與禾草相近,具有一定的飼用價值,是荒漠草場中良好的牧草之一[7-9]。
藜科植物在我國分布廣泛,所含化學成分種類豐富,其生物活性的研究也越來越受到重視[10]。目前,國內(nèi)外對叉毛蓬的研究主要集中在遺傳學[11]和生態(tài)學[12]方面,有關(guān)其化學成分和活性研究的報道較少。據(jù)本課題組前期研究工作得知,叉毛蓬提取物具有良好的抗菌活性[13]。本文以叉毛蓬為研究對象,利用3三種不用的抗氧化性方法研究其抗氧化活性,以期為進一步追蹤分離叉毛蓬中的活性成分提供參考,也為新疆藜科植物的合理開發(fā)和利用積累科學依據(jù)。
叉毛蓬全株于2011年9月采自新疆瑪納斯,由石河子大學生命科學學院閆平教授鑒定。2,2-Diphenyl-1-picrylhydrazyl(DPPH),Tert-Butylhydroquinone (TBHQ) 購自 Sigma公司;2,4,6-Tris (2-pyridyl)-s-triazine(TPTZ),購自阿拉丁公司;抗壞血酸(AA),F(xiàn)eCl3·6H2O,F(xiàn)eSO4·7H2O,焦性沒食子酸,乙酸鈉,冰醋酸,甲醇等均為分析純。
Rotavapor R-220旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀,B-490型電熱恒溫水浴鍋,GZX-9030 MBE電熱鼓風干燥箱,SHZDⅢ型循環(huán)水真空泵,電子天平,紫外可見分光光度計,KDM型調(diào)溫電熱套。
配置0.1 mmol/L的DPPH甲醇溶液待用。在試管中分別加入2 mL不同濃度的待測液和2 mL的DPPH甲醇溶液,搖勻,避光靜置30 min,然后在波長517 nm處測其吸光度??箟难幔ˋA)和叔丁基對苯二酚(TBHQ)作陽性對照。按下式計算DPPH自由基清除率,
上式中:An為2 mL待測液與2 mL DPPH甲醇溶液混合后的吸光度值;Am為2 mL甲醇與2 mL DPPH甲醇溶液混合后的吸光度值。
2.3.1 鄰苯三酚自氧化速率的測定
量取 5 mL,pH 8.2的 50 mmol/L的 Tris-HCl緩沖液和2 mL雙蒸水,混勻后放于25℃水浴中恒溫20 min,然后立即加入在25℃下預熱過的3 mmol/L的鄰苯三酚0.5 mL(以10 mmol/L HCl配制,空白管用10 mmol/L HCl代替鄰苯三酚鹽酸溶液),迅速搖勻后在325 nm處每隔30 s,測其吸光度。
2.3.2 樣品活性的測定
按2.3.1中步驟進行測定,加鄰苯三酚前加入0.2 mL不同濃度的待測液,雙蒸水的量隨之減少??箟难幔ˋA)作陽性對照。按下式計算O2-·自由基清除率。
式(2)中:A0為鄰苯三酚自氧化吸光度值;A1為加入樣品溶液后鄰苯三酚自氧化吸光度值。
2.4.1 FRAP工作液的配置
凱安跟我說,學校的所有孩子都很羨慕他。上次,他跟同學說下課以后要趕緊回家把作業(yè)做完,這樣就能跟哥哥玩彈珠,同學們都對他說:“你好幸運哦!我們回家要是寫完作業(yè),爸爸媽媽會很高興。因為他們能夠給我們布置更多的家庭作業(yè),把我們累死了。所以,我們回家以后盡量拖拖拉拉寫作業(yè),為了避免做更多的作業(yè)?!?/p>
0.3 mol/L pH 3.6 的醋酸鹽緩沖液(a);10 mmol/L TPTZ溶液用 40 mmol/L的 HCl配置(b);20 mmol/L FeCl3溶液(c)。FRAP 工作液由 a∶b∶c=10∶1∶1 配置而成。
2.4.2 FeSO4標準曲線的繪制
吸取不同濃度的FeSO4標準溶液0.1 mL,然后各加入3.0 mL的FRAP工作液和0.3 mL蒸餾水,充分混勻后,37℃反應30 min,于593 nm處測其吸光度。根據(jù)FeSO4的濃度與吸光度值繪制標準曲線,得線性回歸方程:y=0.702x+0.084,R2=0.9942。
2.4.3 樣品活性的測定
按2.4.2中步驟進行測定。待測液的還原能力用FeSO4的當量(mmol/g)表示,即 1 g提取物的還原能力與多少mmol FeSO4的還原能力相當??箟难幔ˋA)和叔丁基對苯二酚(TBHQ)作陽性對照。
DPPH自由基是一種穩(wěn)定的自由基,其清除實驗是體外抗氧化活性評價方法中常用的一種[17]。樣品的DPPH自由基清除能力一般以半數(shù)抑制率IC50值表示,IC50值越小表明樣品的抗氧化能力越強[18]。
叉毛蓬提取物清除DPPH自由基的效果如圖1所示。圖1顯示:DPPH自由基的清除率均隨著提取物濃度的增加而增大,并且在一定濃度范圍內(nèi)存在量效關(guān)系。當濃度為1 mg/mL時,自由基清除率由大到小的排列順序為:乙酸乙酯提取物﹥氯仿提取物﹥正丁醇提取物﹥石油醚提取物﹥乙醇粗提,且它們的值分別為 96.68%、91.24%、90.41%、89.04%和79.25%。
由表1可知,叉毛蓬乙酸乙酯提取物及氯仿提取物的抗氧化能力較好,IC50值分別為69.69 μg/mL,78.91 μg/mL,但均低于陽性對照 AA(IC50=3.61 μg/mL)和 TBHQ(IC50=3.41 μg/mL)。
圖1 叉毛蓬不同提取物清除DPPH自由基的能力Fig.1 DPPH free radical scavenging activity of the different extracts of Petrosimonia sibirica
O2-自由基是一種活性氧,是機體內(nèi)壽命最長的自由基,通常作為自由基鏈式反應的引發(fā)劑,產(chǎn)生活性更強的自由基,進一步對機體造成傷害[19]。因此,對O2-·自由基的清除能力進行測定具有非常重要的意義。
由圖2可知,石油醚提取物、氯仿提取物、乙酸乙酯提取物和正丁醇提取物在整個濃度測定范圍內(nèi)都呈現(xiàn)了較好的量效關(guān)系,O2-·自由基清除率的變化范圍分別為 2.28%~32.07%、13.97%~73.43%、16.83%~84.88%以及26.74%~51.14%。
由表1可知:叉毛蓬乙酸乙酯提取物的抗氧化能力最好 (IC50=6.57 mg/mL),其次是氯仿提取物(IC50=7.59 mg/mL),但均弱于陽性對照AA (IC50=0.44 mg/mL)。
圖2 叉毛蓬不同提取物清除O2-·自由基的能力Fig.2 O2-free radical scavenging activity of the different extracts of Petrosimonia sibirica
鐵離子還原法是對總的抗氧化能力進行的評價,它是基于黃色的Fe3+-TPTZ絡合物可被還原性物質(zhì)還原為藍色Fe2+-TPTZ絡合物這一反應過程中顏色的變化。Fe2+-TPTZ在593 nm處有特征吸收,吸光度值越大,表明抗氧化劑的還原能力越強,則抗氧化性也越強[20]。
由表1可知,叉毛蓬不同溶劑提取物間的還原能力相差不大,提取物及陽性對照的抗氧化能力由強到弱的順序為:TBHQ﹥AA﹥氯仿提取物﹥乙酸乙酯提取物﹥正丁醇提取物﹥乙醇粗提物﹥石油醚提取物。
表1 叉毛蓬不同提取物的抗氧化活性Tab.1 Antioxidant activity of the different extracts of Petrosimonia sibirica
1)在采用DPPH和鄰苯三酚自氧化2種方法中,叉毛蓬提取物的抗氧化活性順序一致,具體表現(xiàn)為:乙酸乙酯提取物﹥氯仿提取物﹥正丁醇提取物﹥石油醚提取物﹥乙醇粗提物。
2)采用FRAP法,抗氧化活性順序為:氯仿提取物﹥乙酸乙酯提取物﹥正丁醇提取物﹥乙醇粗提物﹥石油醚提取物。
3)氯仿提取物和乙酸乙酯提取物的抗氧化活性最好,通常情況下氯仿或乙酸乙酯溶劑主要萃取游離生物堿、黃酮、有機酸等中等極性化合物,這表明叉毛蓬可能含有豐富的生物堿、黃酮等活性成分。
[1]黃曉昆,黃曉冬,卞美君.南方堿蓬葉黃酮類化合物含量及其體外抗氧化活性研究[J].安徽農(nóng)業(yè)科學,2010,38(3):1432-1434,1542.
[2]Ji X Y,Tan B K H,Zhu Y C,et al.Comparison of cardioprotective effects using ramipril and danshen for the treatment of acute myocardial infarction in rats[J].Life Sciences,2003,73(11):1413-1426.
[3]Enujiugha V N,Talabi J Y,Malomo S A,et al.DPPH radical scavenging capacity of phenolic extracts from African yam bean (Sphenostylis stenocarpa)[J].Food and Nutrition Sciences,2012,3(1):7-13.
[4]Shukla S,Mehta A,Bajpai V K,et al.In vitro antioxidant activity and total phenolic content of ethanolic leaf extract of Stevia rebaudiana Bert.[J].Food and Chemical Toxicology,2009,47(9):2338-2343.
[5]張亮亮,楊志偉,林益明.橄欖多酚抗氧化活性研究[J].食品工業(yè)科技,2008,29(4):57-59.
[6]葉懷莊,王明達,陳日萍.TOSC法對20種中草藥抗氧化能力的體外測定[J].浙江中醫(yī)雜志,2002,6(8):445-447.
[7]呂光輝.新疆克拉瑪依動植物名錄[M].烏魯木齊市:新疆人民出版社,2008:187.
[8]孔憲武,朱格麟,簡焯坡,等.中國藜科植物[J].植物分類學報,1978,16(1):99-123.
[9]孔憲武,簡焯坡.中國植物志 [M].北京:科學出版社,1979,25:190-194.
[10]杜華,周立剛,李春,等.藜科植物化學成分與生物活性的研究進展[J].天然產(chǎn)物研究與開發(fā),2007,19(5):884-889.
[11]王袆玲,閆桂琴,徐莉,等.新疆阜康荒漠地區(qū)叉毛蓬居群的遺傳結(jié)構(gòu)和分化[J].西北植物學報,2003,23(5):700-704.
[12]全杜鵑,魏巖,嚴成.4種一年生藜科植物幼苗的生長動態(tài)[J].新疆農(nóng)業(yè)大學學報,2011,34(6):465-468.
[13]楊紅兵,周亞明,劉浩,等.六種藜科植物提取物對植物病原菌的抑制活性 [J].天然產(chǎn)物研究與開發(fā),2009,21(5):744-747.
[14]Wu S B,Wu J,Yin Z W,et al.Bioactive and marker compounds from two edible dark-colored Myrciaria fruits and the synthesis of jaboticabin[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,2013,61(17):4035-4043.
[15]趙芳,王自軍,宋麗,等.蕁麻多酚抗氧化性質(zhì)的研究[J].石河子大學學報:自然科學版,2008,26(2):164-166.
[16]尹震花,王佳佳,顧海鵬,等.黑莓(薩尼)果實體外抗氧化活性研究[J].天然產(chǎn)物研究與開發(fā),2013,25(4):530-532.
[17]Ruan Z P,Zhang L L,Lin Y M.Evaluation of the antioxidant activity of Syzygium cumini leaves[J].Molecules,2008,13(10):2545-2556.
[18]Toure A,Xu X,Michel T,et al.In vitro antioxidant and radical scavenging of Guinean kinkeliba leaf(Combretum micranthum G.Don)extracts[J].Natural Product Research,2011,25(11):1025-1036.
[19]吳雪輝,張喜梅,李廷群,等.板栗花粗提物的抗氧化活性研究[J].現(xiàn)代食品科技,2008,24(1):14-19.
[20]趙芳,王自軍,宋麗,等.蕁麻多酚抗氧化性質(zhì)的研究[J].石河子大學學報:自然科學版,2008,26(2):164-166.