蘇仲春, 陳家勁, 王 圳, 陳志明, 王躍春
間充質干細胞(mesenchymal stem cells,MSCs)是來源于中胚層的一類多功能干細胞,可以分化成具有外胚層、中胚層或內胚層特征的細胞[1-2]。大量研究表明人臍帶間充質干細胞(mesenchymal stem cells derived from human umbilical cord,hUC-MSCs)能分化為成脂肪細胞、軟骨細胞、成骨細胞、神經細胞以及心肌細胞等。有文獻報道hUC-MSCs在一定條件下可分化為內胚層來源的胰島素分泌細胞(insulin-producing cells,IPCs)并在一定程度上可緩解糖尿病模型動物的癥狀[3-5]。目前誘導干細胞向IPCs分化的方法主要有3種:外源生物化學制劑誘導法、轉基因法和共培養(yǎng)法。Tang等[6]利用細胞因子誘導骨髓來源的干細胞(bone marrow-derived stem cells,BMDS cells)誘導向IPCs分化,雖然誘導6個月后檢測到IPCs可以分泌較高水平胰島素和C肽,但長期的體外培養(yǎng)導致BMDS自發(fā)轉化為腫瘤細胞,因此如何在短時間內進行有效的誘導仍然是亟待解決的問題。Chiou等[7]將MafA基因轉染到胎盤源性多能干細胞(placenta-derived multipotent stem cells,PDMSCs)中,發(fā)現MafA的過表達顯著上調了胰島發(fā)育相關基因的表達,同時有助于PDMSCs分化為胰島素陽性細胞;但目的基因轉染的穩(wěn)定性不高,且轉染基因的插入可能會影響細胞基因組的穩(wěn)定性,從而引起基因突變。Talavera-Adame等[8]將胚胎干細胞(embryonic stem cells,ESCs)與內皮細胞共培養(yǎng),發(fā)現共培養(yǎng)可以上調ESCs胰島發(fā)育相關基因的表達,并檢測到ESCs分泌胰島素原,但該方法存在誘導效率不高且誘導細胞不夠成熟等問題。
本實驗室在研究中找到了一種用單純生物化學制劑誘導hUC-MSCs向胰島樣細胞團(islet-like clusters,ILCs)分化的方案,這種方案的優(yōu)點在于其安全、快速和高效;但液相色譜分析和化學發(fā)光檢測都提示這種方案誘導的ILCs分泌的主要是胰島素原(proinsulin,PI)。PI雖然也有降低血糖的作用,但效率不及真胰島素(true insulin,TI)的 1/10[9]。從 PI向TI轉化,是一個內源性蛋白分解和加工的過程,需要激素原轉化酶(prohormone convertase,PC)1和PC2的介導[10],無論是缺乏 PC1或 PC2,都會使 TI合成受阻,導致TI分泌減少,所以檢測hUC-MSCs誘導前后這兩種關鍵酶的表達情況有助于確定其TI轉換障礙的原因并采取相應措施以促進其轉換,值得深入研究。因此,我們擬進一步通過生物化學制劑的不同組合尋找誘導hUC-MSCs向功能性ILCs分化的促成熟方案并探討其機制。
實驗所用臍帶均來自暨南大學第一附屬醫(yī)院婦產科健康產婦,胎兒無畸形,并征得產婦及家屬的同意。主要試劑如下:DMEM/F12培養(yǎng)基、IMDM培養(yǎng)基、澳洲胎牛血清(fetal calf serum,FCS)和膠原酶Ⅱ購自 Gibco,RT-PCR試劑盒購自 TaKaRa,ReverTra Ace qPCR RT Kit購自Toyobo,引物和Trizol購自Invitrogen,PC1與PC2Ⅰ抗和Ⅱ抗購自Santa Cruz,表皮生長因子(epidermal growth factor,EGF)和堿性成纖維細胞生長因子(basic fibroblast growth factor,bFGF)購自PeproTech,WesternBright ECL檢測試劑盒購自Advansta,細胞裂解液購自北京百泰克生物技術有限公司,尼克酰胺、肝細胞生長因子(hepatocyte growth factor,HGF)、瓊脂糖、二甲基亞砜、丙烯酰胺和甲叉雙丙烯酰胺購自Sigma。
2.1 hUC-MSCs的分離與純化 選擇足月剖宮產或自然產胎兒的臍帶,約4~6 cm長,無菌條件下抽凈臍帶血,4℃保存,4 h內進行分離。在超凈臺中將臍帶剪成1 cm小段,再縱向剪開,用PBS多次漂洗以去除血液;將臍帶剪成肉糜狀,移入50 mL離心管,加入10 mL經37℃預熱的0.1%膠原酶Ⅱ,于37℃水浴搖床中振蕩消化60 min,再加入0.25%胰蛋白酶10 mL繼續(xù)振蕩消化30 min,最后加入30 mL DMEM/F12,用滴管反復吹打,細胞篩過濾,濾液用500×g離心10 min,棄上清,將沉淀下來的細胞用含10%FBS的DMEM/F12按1×109/L的密度接種于T25培養(yǎng)瓶,在飽和濕度、37℃、5%CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。次日首次換液,棄去未貼壁細胞,以后每2~3 d換液1次。當細胞達80%融合后,用0.25%胰酶不完全消化進行傳代純化,傳代代數標記為P1、P2、P3等。P3之后用完全消化進行傳代。
2.2 流式細胞術檢測 將 P3的 hUC-MSCs用0.25%胰蛋白酶消化,PBS洗滌2次,制成1×106的細胞懸液,分為每管0.1 mL,設置陰性對照,加入鼠IgG-FITC,其它管各加入20 μL鼠抗人CD106-FITC、CD40-FITC、CD80-FITC、HLA-DR-FITC、CD45-FITC、CD34-FITC、CD29-FITC和CD44-FITC,在黑暗中孵化15 min。流式細胞儀計數5 000~10 000個細胞,用CellQuest軟件分析。
2.3 免疫細胞熒光染色 將P3代的hUC-MSCs接種在已用多聚賴氨酸包被的玻片上生長,3 d后去除培養(yǎng)基再用0.1 mol/L PBS洗滌3次,4%多聚甲醛固定20 min后,用含0.5%Triton X-100的PBS作用15 min,再用含有10%正常山羊血清(normal goat serum,NGS)的PBS封閉1 h。緊接著用兔抗人nestinⅠ抗(1∶200稀釋)4℃孵育過夜,再用含有熒光染料568羊抗兔Ⅱ抗(1∶200稀釋)37℃孵育1 h,用含有DAPI的封片劑進行封片,最后用熒光顯微鏡觀察和拍照。
2.4 體外誘導hUC-MSCs向ILCs分化 取P3代hUC-MSCs進行誘導。待hUC-MSCs達到80%以上融合時,用0.25%胰酶消化細胞,按1∶2的比例接種于25 cm2低黏附性培養(yǎng)瓶中。通過不同生物化學制劑組合,篩選出以下3種誘導方案進行比較。方案A:每瓶加5 mL誘導液 (IMDM培養(yǎng)液,含10 μg/L bFGF、10 μg/L EGF、10 mg/L 銀杏提取液及 2%FCS),持續(xù)誘導8 d,每2 d換液1次。方案B:每瓶加5 mL誘導液 (IMDM培養(yǎng)液,含10 μg/L bFGF、10 μg/L EGF、10 mg/L銀杏提取液及2%FCS),持續(xù)誘導4 d;第4 d在原誘導液加入10 μg/L尼克酰胺,再持續(xù)誘導4 d,每2 d換液1次。方案C:每瓶加5 mL誘導液 (IMDM 培養(yǎng)液,含 10 μg/L bFGF,10 μg/L EGF,10 mg/L銀杏提取液及2%FCS),持續(xù)誘導4 d;第4 d在原誘導液加入10 μg/L尼克酰胺和10 μg/L HGF,再持續(xù)誘導4 d,每2 d換液1次。顯微鏡下觀察。
2.5 RT-PCR 按照 Trizol說明書分別提取 P3、P6和P9代hUC-MSCs以及3種方案誘導后的ILCs的總RNA,UV分光光度計測定RNA濃度(g/L)并記錄A260/A280正常范圍1.8~2.0)。各組均用2.0 μg總RNA,按照 TaKaRa RT-PCR AMV 3.0 Kit說明書操作,合成cDNA,然后進行PCR,參數如下:94℃預變性2 min;94 ℃ 30 s,退火 30 s,72 ℃ 1 min,循環(huán)35次;72℃ 5 min。引物序列,退火溫度和預期片段大小見表1。PCR產物在1.5%瓊脂糖凝膠電泳,用Goldview核酸染料染色和紫外線透射拍攝。
表1 RT-PCR引物序列Table 1.Sequences of the primers for RT-PCR
2.6 qPCR 按上述方法提取3種方案誘導后的ILCs的總RNA,用ReverTra Ace qPCR RT Kit合成cDNA。PC1、PC2和β-actin的引物序列見表2。本實驗采用比較Ct法的相對定量策略,首先要證實PC1、PC2和β-actin的擴增效率一致。將逆轉錄成的cDNA 進行倍比稀釋:1、0.1、0.01、0.001和 0.0001并以此為模板,經KAPA SYBR FAST qPCR試劑盒來檢測兩者的擴增效率。以cDNA的log值作為橫坐標,ΔCt(Ct目的基因-Ct管家基因)作為縱坐標,以得到直線的斜率是否接近于0來說明目的基因與管家基因的擴增效率是否一致。為了減少組間差異,每一標本均設3個復孔,在95℃變性1 min后,共進行45個循環(huán)擴增,每一循環(huán)包括95℃ 15 s,63℃ 25 s,72℃50 s,讀板。隨后,以0.17℃/s變化速度,從65~95℃每隔2 s記錄1次熒光值,獲得熔解曲線。觀察擴增動力學曲線和熔解曲線,應用相對定量公式:2-ΔΔCt×100%,計算得出 PC1 和 PC2相對于 β-actin的量。
表2 qPCR引物序列Table 2.Sequences of the primers for qPCR
2.7 Western blotting 收集 3種方案誘導后的ILCs,用細胞裂解液進行裂解,提取細胞總蛋白,定量后用10%分離膠SDS-PAGE電泳,濕轉參數為:恒流110 mA,轉膜180 min;5%脫脂奶粉室溫封閉1 h,4℃孵育Ⅰ抗封閉過夜,再室溫孵育Ⅱ抗1 h。Ⅰ抗分別為兔抗人 β-actin(1∶2 000)、兔抗人 PC1(1∶2 000)和鼠抗人PC2(1∶2 000)。TBST洗滌,ECL顯色,化學發(fā)光拍照,對圖像進行灰度值分析。
應用SPSS 13.0軟件對各組數據統(tǒng)計分析,數據用均數±標準差(mean±SD)表示。組間均數比較采用單因素方差分析。以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
鏡下觀察原代接種24 h后可見大量細胞貼壁,細胞不均一,呈圓形、纖維樣或內皮細胞樣,有少數細胞形成漩渦狀生長的集落,見圖1A;經過不完全消化法逐漸純化的P3 hUC-MSCs外觀上比較均一,呈長梭型,排列規(guī)則,呈漩渦狀生長,見圖1B。
Figure 1.Morphology of hUC-MSCs(×40).A:primary hUCMSCs;B:passage 3.圖1hUC-MSCs的形態(tài)
流式細胞術檢測結果顯示P3 hUC-MSCs強表達CD29和CD44,低表達內皮細胞的標志CD106,不表達造血細胞標志 CD34、CO40、CD45和 CD80,見圖2A。RT-PCR結果表明P3、P6和P9的hUC-MSCs均可有干細胞標志物Oct4、Nanog和 nestin mRNA表達,見圖2B。細胞免疫熒光染色則顯示 P3 hUCMSCs中的nestin蛋白在胞漿中有普遍表達,見圖2C。
P3 hUC-MSCs經過3種方案誘導后都有逐漸變圓并聚集成團的趨勢,方案A中hUC-MSCs發(fā)生聚集,但成團現象不明顯,有較多細胞懸浮,見圖3A;方案B中則有ILCs出現,細胞懸浮的情況較輕,見圖3B;方案C可誘導出更多的ILCs,見圖3C。
4.1 RT-PCR結果 檢測多種參與胰島β細胞的發(fā)育相關基因在3種誘導方案的表達情況,發(fā)現方案A有葡萄糖轉運子2(glucose transporter 2,Glut-2)和v-maf肌腱膜纖維肉瘤癌基因同源物A(v-maf musculoaponeuroticfibrosarcoma oncogene homologue A,MafA)mRNA表達;方案 B有 Glut-2、MafA、NK6轉錄因子相關基因座1(NK6 transcription factor-related,locus 1,Nkx6.1)和PC2 mRNA表達;方案C有Glut-2、MafA、Nkx6.1、PC2、神經元素 3(neurogenin 3,Ngn3)、胰腺十二指腸同源框蛋白1(pancreatic and duodenal homeobox protein 1,Pdx1)、PC1 和 insulin mRNA表達,可見A、B和C 3種方案誘導的ILCs呈逐漸成熟的趨勢,見圖4。
Figure 2.Identification of hUC-MSCs.A:cell surface markers tested by flow cytometry;B:stem cell-specific mRNA expression detected by RT-PCR;C:cytoplasmic expression of nestin detected by immunocytofluorescent staining(×400).圖2hUC-MSCs的鑒定
Figure 3.The morphological changes of hUC-MSCs after the induction by different protocols(×200).A:protocol A;B:protocol B;C:protocol C.圖3 hUC-MSCs在3種方案誘導后的形態(tài)變化
Figure 4.RT-PCR results.1:pancreas;2:hUC-MSCs;3:protocol A;4:protocol B;5:protocol C.圖4RT-PCR結果
4.2 qPCR結果 PC1和PC2 mRNA得到的直線斜率分別為0.068和0.082,都接近于0,說明PC1和PC2與 β-actin 的擴增效率一致,可用公式 2-ΔΔCt×100%進行結果分析。結果顯示:PC1 mRNA在hUCMSCs、方案A與方案B誘導的ILCs中均無表達,方案C的2-ΔΔCt×100%=0.050 ±0.030;PC2 mRNA 在hUC-MSCs和方案A誘導的ILCs中無表達,在方案B和方案C的2-ΔΔCt×100%分別為1.000±0.113和1.944±0.355,且方案C誘導的細胞PC2 mRNA的表達量顯著高于方案B(P<0.01),見圖5。
PC1蛋白只在方案C中有表達(PC1/β-actin=0.126±0.011),ProPC2與PC2蛋白在方案 B和方案C中有表達(方案 B:ProPC2/β-actin=0.557±0.012,PC2/β-actin =0.427 ± 0.044;方 案 C:ProPC2/β-actin=0.894 ± 0.028, PC2/β-actin=0.704±0.028),且ProPC2與PC2蛋白在方案C中的表達均顯著高于方案B(P<0.01),見圖6。
Figure 5.qPCR results of PC2 mRNA expression.Mean±SD.n=3.**P <0.01 vs protocol B.圖5 qPCR結果
Figure 6.Western blotting results.Mean ± SD.n=3.**P <0.01 vs protocol B.圖6 Western blotting結果
已有大量文獻報道了hUC-MSCs在來源廣泛、操作簡便、無倫理學爭論、有免疫調節(jié)特性和可多向分化等方面的優(yōu)勢,本研究發(fā)現hUC-MSCs在誘導前能穩(wěn)定表達干細胞特異標志物Oct4、Nanog和nestin,同時也微弱表達Isl1。Oct4和Nanog已被證明是維持干細胞的多能性和自我更新的轉錄因子[11]。Nestin屬于第6類中間絲蛋白,主要表達于神經系統(tǒng)發(fā)育中的神經干細胞和祖細胞,可作為神經干細胞和祖細胞的特異性標記物;但從成人胰島中分離出的胰島前體細胞也表達nestin,這種nestin+細胞可分化為內分泌部與外分泌部的胰腺細胞[12];Zhang等[13]的實驗證實了人胎兒胰腺nestin+前體細胞誘導分化來的胰腺內分泌細胞可下調糖尿病小鼠的血糖。Joanette等[14]的研究還表明胰腺內分泌細胞的發(fā)育與胰腺內的前體細胞nestin陽性率呈正相關關系,進一步強調了胰腺nestin+前體細胞在胰島新生中的重要性。此外,ESCs本身不表達nestin,但在誘導ESCs向IPCs分化的研究中,多數誘導方法是將ESCs先誘導成nestin+細胞,再將nestin+細胞進一步誘導成IPCs。本實驗中分離、純化的hUC-MSCs本身就表達nestin,提示hUC-MSCs可越過先誘導成nestin+細胞的中間步驟而直接向IPCs分化。Isl1是一種胰島發(fā)育早期表達的、能結合胰島素基因上特異性增強子元件基因的轉錄因子[15],本實驗中hUC-MSCs能輕微表達Isl1,可推測hUC-MSCs具有向胰腺干細胞或胰腺細胞分化的潛能。
體外研究表明,單純生物化學制劑誘導干細胞向ILCs分化普遍存在分化效率低,ILCs不夠成熟等問題,主要表現在ILCs分泌的PI異常升高,PI向TI轉化存在障礙;由于PI的生理作用僅為胰島素的1/10,因而ILCs能否分化成熟以分泌TI決定了干細胞能否有效治療糖尿病。體內由PI轉化為TI,必須有PC1、PC2等酶的參與,而這些酶又必須在嚴格的內環(huán)境條件下才能發(fā)揮其正常作用。本研究基于現有的研究條件,通過多次組合和不斷篩選,發(fā)現無論在基因水平還是蛋白質水平,方案A基礎上增加尼克酰胺(方案B)能誘導hUC-MSCs表達PC2,而在方案B基礎上增加HGF(方案C)能夠誘導hUC-MSCs表達PC1和上調PC2,表明了方案C更具有誘導hUCMSCs向功能性胰島素分泌細胞分化的能力。尼克酰胺作為誘導劑已被應用于促進干細胞向胰島β細胞分化,體內實驗也證實了尼克酰胺的抗糖尿病作用,但具體機制尚不清楚[16]。在方案B中,加入尼克酰胺誘導,有PC2 mRNA表達,且具有促進不成熟的PC2蛋白向成熟轉化的能力。PC2蛋白起初是以分子量為75 kD的ProPC2酶原形式存在,必須與一種專門的伴侶蛋白7B2結合才能成熟;故推測尼克酰胺可能具有促進 ProPC2與7B2結合的能力。HGF來源于肝細胞間質,可促進肝損傷后肝細胞的再生。研究發(fā)現HGF對體外培養(yǎng)的胎胰及成年胰島均有很強的促有絲分裂及促胰島素分泌作用[17];為了探討局部HGF過度表達能否引起胰島數量和功能的提高,研究人員構建了一種在RIP調控下過度表達HGF的小鼠模型,結果發(fā)現該小鼠的胰島增大,β細胞數量增多,原因主要是由于HGF促進了細胞分化[18]。本實驗中方案C與其它兩種方案比較,在誘導PC1和PC2表達的優(yōu)勢上可見HGF在促進hUC-MSCs向ILCs分化成熟起一定作用。
本實驗通過添加尼克酰胺和HGF等促進ILCs表達PC1和PC2,在一定程度上促進了ILCs的成熟,雖然在ILCs的培養(yǎng)上清液中檢測到較高水平的免疫反應活性胰島素,但C肽水平卻很低。C肽為胰島素原轉化為胰島素過程中的一個片段,生理情況下C肽與胰島素以等物質的量從β細胞中分泌,所以各方案誘導的PC1和PC2尚不能滿足PI向TI轉化的要求。在體胰島β細胞中胰島素原的生物合成是由血糖刺激的,并且高血糖加速了PI向TI的轉化[19];機體可以提供細胞進一步分化和成熟的三維空間和復雜的內環(huán)境,而誘導的細胞最終要移植到體內發(fā)揮作用,因此,下一步我們準備將經方案C誘導的初步成熟的ILCs移植到糖尿病模型體內作進一步研究。
[1] 李杏肖,李曉紅,林秋雄,等.轉染isl1基因促進骨髓間充質干細胞向心肌樣細胞分化[J].中國病理生理雜志,2012,28(1):131-135.
[2] 王舒陽,韓 瑞,張廣宇,等.Oct3/4在體外誘導大鼠骨髓間質干細胞神經分化中的作用[J].中國病理生理雜志,2012,28(3):385-392.
[3] Conconi MT,Burra P,Di Liddo R,et al.CD105(+)cells from Wharton’s jelly show in vitro and in vivo myogenic differentiative potential[J].Int J Mol Med,2006,18(6):1089-1096.
[4] Nishiyama N,Miyoshi S,Hida N,et al.The significant cardiomyogenic potential of human umbilical cord bloodderived mesenchymal stem cells in vitro[J].Stem Cells,2007,25(8):2017-2024.
[5] Karahuseyinoglu S,Cinar O,Kilic E,et al.Biology of stem cells in human umbilical cord stroma:in situ and in vitro surveys[J].Stem Cells,2007,25(2):319-331.
[6] Tang DQ,Wang Q,Burkhardt BR,et al.In vitro generation of functional insulin-producing cells from human bone marrow-derived stem cells,but long-term culture running risk of malignant transformation[J].Am J Stem Cells,2012,1(2):114-127.
[7] Chiou SH,Chen SJ,Chang YL,et al.MafA promotes the reprogramming of placenta-derived multipotent stem cells into pancreatic islets-like and insulin+cells[J].J Cell Mol Med,2011,15(3):612-624.
[8] Talavera-Adame D,Wu G,He Y,et al.Endothelial cells in co-culture enhance embryonic stem cell differentiation to pancreatic progenitors and insulin-producing cells through BMP signaling[J].Stem Cell Rev,2011,7(3):532-543.
[9] Malaguarnera R,Sacco A,Voci C,et al.Proinsulin binds with high affinity the insulin receptor isoform A and predominantly activates the mitogenic pathway[J].Endocrinology,2012,153(5):2152-2163.
[10] Borjesson A,Carlsson C.Altered proinsulin conversion in rat pancreatic islets exposed long-term to various glucose concentrations or interleukin-1beta[J].J Endocrinol,2007,192(2):381-387.
[11] LohYH,Wu Q,Chew JL,et al.The Oct4 and Nanog transcription network regulates pluripotency in mouse embryonic stem cells[J].Nat Genet,2006,38(4):431-440.
[12] Zulewski H,Abraham EJ,Gerlach MJ,et al.Multipotential nestin-positive stem cells isolated from adult pancreatic islets differentiate ex vivo into pancreatic endocrine,exocrine and hepatic phenotypes[J].Diabetes,2001,50(3):521-533.
[13] Zhang L,Hong TP,Hu J,et al.Nestin-positive progenitor cells isolated from human fetal pancreas have phenotypic markers identical to mesenchymal stem cells[J].World J Gastroenterol,2005,11(19):2906-2911.
[14] Joanette EA,Reusens B,Arany E,et al.Low-protein diet during early life causes a reduction in the frequency of cells immunopositive for nestin and CD34 in both pancreatic ducts and islets in the rat[J].Endocrinology,2004,145(6):3004-3013.
[15] Granata R,Settanni F,Gallo D,et al.Obestatin promotes survival of pancreatic beta-cells and human islets and induces expression of genes involved in the regulation of beta-cell mass and function [J].Diabetes,2008,57(4):967-979.
[16]Segev H,Fishman B,Ziskind A,et al.Differentiation of human embryonic stem cells into insulin-producing clusters[J].Stem Cells,2004,22(3):265-274.
[17] Wang R,Yashpal N,Bacchus F,et al.Hepatocyte growth factor regulates proliferation and differentiation of epithelial monolayers derived from islets of postnatal rat pancreas[J].J Endocrinol,2004,183(1):163-171.
[18] Garcia-Ocana A,Takane KK,Syed MA,et al.Hepatocyte growth factor overexpression in the islet of transgenic mice increases beta cell proliferation,enhances islet mass,and induces mild hypoglycemia[J].J Biol Chem,2000,275(2):1226-1232.
[19] Derosa G,Ragonesi PD,Carbone A,et al.Vildagliptin added to metformin on β-cell function after a euglycemic hyperinsulinemic and hyperglycemic clamp in type 2 diabetes patients[J].Diabetes Technol Ther,2012,14(6):475-484.