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        siRNA沉默WT1對(duì)小鼠足細(xì)胞Wnt/β-catenin和nephrin表達(dá)的影響*

        2013-11-07 06:02:54袁偉杰謝院生陳香美
        中國病理生理雜志 2013年2期
        關(guān)鍵詞:小鼠水平影響

        周 靜, 袁偉杰△, 謝院生, 陳香美

        流行病學(xué)調(diào)查顯示,與1988~1994年間相比,2005~2010年間美國慢性腎臟病(chronic kidney disease,CKD)的患病率由 12.3% 增加至 14.0%;與2009年相比,2010年末美國發(fā)生終末期腎臟病(endstage renal disease,ESRD)的患者年發(fā)生率增加了約4%[1]。蛋白尿是 CKD患者的常見臨床表現(xiàn)。其中,腎小球?yàn)V過屏障受損尤其是裂孔隔膜受損是蛋白尿發(fā)生的主要原因。Nephrin作為免疫球蛋白超家族的跨膜成分,是腎小球裂孔隔膜的重要組成部分。損傷性刺激如糖代謝紊亂等可抑制腎小球nephrin的表達(dá)并誘導(dǎo)蛋白尿的發(fā)生,而維持足細(xì)胞nephrin的正常表達(dá)則可阻斷糖尿病腎病的進(jìn)展[2-3]。有證據(jù)表明,Wnt/β-catenin通路異常激活可誘導(dǎo)足細(xì)胞nephrin分子表達(dá)下調(diào)和蛋白尿的發(fā)生,阻斷該通路的表達(dá)則會(huì)減輕足細(xì)胞損傷[4]。新近研究發(fā)現(xiàn),Wnt/β-catenin通路的表達(dá)變化主要由WT1的負(fù)調(diào)控作用所致[5]。因此,本研究旨在進(jìn)一步探討WT1與Wnt/β-catenin通路在足細(xì)胞損傷中的作用及關(guān)系。

        材料和方法

        1 細(xì)胞

        條件永生化小鼠足細(xì)胞是從H-2Kb-tsA58轉(zhuǎn)基因小鼠腎臟中分離后建立的細(xì)胞系,由美國Mount Sinai醫(yī)學(xué)院Mundel教授贈(zèng)送。

        2 主要試劑

        RPMI-1640培養(yǎng)液(Gibco),胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS;Gibco),I型膠原蛋白(Sigma),小鼠重組干擾素 γ(interferon-γ,IFN-γ;PeproTech),JetPRIMETM轉(zhuǎn)染試劑 (Polyplus),兔抗小鼠單克隆WT1抗體(Abcam),siRNA靶序列和siRNA對(duì)照序列(上海吉瑪),羊抗小鼠多克隆nephrin抗體(RD),兔抗小鼠單克隆Wnt1抗體(嘉美生物),小鼠抗人多克隆β-catenin抗體 (Santa Cruz),兔抗小鼠單克隆 p-βcatenin抗體 (Cell Signaling),辣根過氧化物酶標(biāo)記的山羊抗兔IgG、山羊抗小鼠IgG和驢抗山羊IgG(上海碧云天生物技術(shù)有限公司),Trizol試劑(Invitrogen)。

        3 主要方法

        3.1 足細(xì)胞培養(yǎng) 足細(xì)胞培養(yǎng)方法參照文獻(xiàn)[6]。用含10%FBS的RPMI-1640培養(yǎng)基(添加小鼠重組IFN-γ)33℃條件下傳代培養(yǎng)足細(xì)胞,以含10%FBS的RPMI-1640培養(yǎng)基(不含IFN-γ)在37℃條件下誘導(dǎo)足細(xì)胞分化。

        3.2 足細(xì)胞轉(zhuǎn)染及分組 轉(zhuǎn)染W(wǎng)T1 siRNA:將足細(xì)胞接種于25 cm2的培養(yǎng)瓶中,當(dāng)細(xì)胞融合度達(dá)到50%~60%時(shí)進(jìn)行轉(zhuǎn)染。足細(xì)胞分成以下3組:未轉(zhuǎn)染組:未經(jīng)任何處理的足細(xì)胞;陰性對(duì)照組:轉(zhuǎn)染negative control組;轉(zhuǎn)染組:轉(zhuǎn)染W(wǎng)T1 siRNA組。利用JetPRIMETM進(jìn)行轉(zhuǎn)染。轉(zhuǎn)染方法參照J(rèn)etPRIMETM轉(zhuǎn)染試劑的說明書。轉(zhuǎn)染24 h及48 h后,分別采用real-time qRT-PCR和Western blotting法檢測(cè)WT1 mRNA和蛋白的表達(dá)情況,從而明確WT1 siRNA的轉(zhuǎn)染效率。陰性對(duì)照序列:正義鏈 5'-UUCUCCGAACGUGUCACGUTT-3',反 義 鏈 5'-ACGUGACACGUUCGGAGAATT-3';WT1 siRNA的序列:正義鏈 5'-CUACAGCAGUGACAAUUUATT-3',反義鏈 5'-UAAAUUGUCACUGCUGUAGTT-3',均由上海吉瑪公司負(fù)責(zé)合成。

        3.3 Real-time qRT-PCR 用Trizol試劑(Invitrogen)抽提細(xì)胞總RNA,用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(Promega)進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng)合成cDNA,以此cDNA為模板,進(jìn)行擴(kuò)增。采用熒光染料法,按照說明書進(jìn)行操作,以GAPDH為內(nèi)參照。引物設(shè)計(jì)參照GenBank中的mRNA序列,由北京賽百盛基因技術(shù)有限公司合成見表1。采用ΔΔCt法進(jìn)行相對(duì)定量。

        表1 引物序列Table 1.Sequences of the primers

        3.4 Western blotting RIPA裂解液裂解細(xì)胞,4℃12 000×g離心30 min,提取細(xì)胞總蛋白。BCA試劑盒測(cè)定蛋白濃度,每組取60 μg蛋白上樣于10%SDS-PAGE電泳分離,電轉(zhuǎn)至PVDF膜,1×casein封閉約 1 h,分別加入 I抗(WT1、Wnt1、β-catenin、p-βcatenin及nephrin),4℃過夜。辣根過氧化物酶標(biāo)記的II抗37℃孵育1 h。利用UVP化學(xué)熒光成像系統(tǒng)(ChemiDoc-ItTM600 Imaging System)進(jìn)行化學(xué)發(fā)光顯影,以β-actin作為內(nèi)參校正。

        3.5 MTT檢測(cè)細(xì)胞活力 收集對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞,按4 400 cells/well接種于96孔板,各組干預(yù)方法同上述實(shí)驗(yàn)。培養(yǎng)板充分吸盡上清后,每孔加入10 μL MTT溶液,繼續(xù)培養(yǎng)4 h后終止培養(yǎng)。每孔加入100 μL二甲基亞砜,置搖床上低溫振蕩10 min,酶標(biāo)儀測(cè)量各孔A490。

        4 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

        計(jì)量資料采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示,組間比較采用單因素方差分析。采用 SPSS 13.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)處理,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        結(jié) 果

        1 WT1 siRNA轉(zhuǎn)染足細(xì)胞的效率

        轉(zhuǎn)染12 h后,與未轉(zhuǎn)染組和對(duì)照組細(xì)胞相比,siRNA沉默WT1基因組細(xì)胞內(nèi)mRNA水平顯著下降(P<0.05),轉(zhuǎn)染陰性對(duì)照組和未轉(zhuǎn)染組的胞內(nèi)WT1 mRNA的水平無顯著差異。與未轉(zhuǎn)染組細(xì)胞相比,WT1 mRNA 下降了約 69.6%(P <0.05),見圖 1;轉(zhuǎn)染24 h后,siRNA沉默WT1基因組細(xì)胞內(nèi)WT1蛋白表達(dá)水平與未轉(zhuǎn)染組和陰性對(duì)照組相比顯著下降(P<0.05),轉(zhuǎn)染陰性對(duì)照組和未轉(zhuǎn)染組的胞內(nèi)WT1蛋白表達(dá)水平無明顯差異。與未轉(zhuǎn)染組細(xì)胞相比,轉(zhuǎn)染組細(xì)胞WT1蛋白的表達(dá)水平下降了約61%(P<0.05),見圖 1、2。

        Figure 1.Effect of RNA interference on WT1 mRNA expression detected by real-time qRT-PCR.Mean±SD.n=3.*P <0.05 vs non-transfection.圖1 轉(zhuǎn)染siRNA對(duì)WT1 mRNA表達(dá)的影響

        Figure 2.Effect of RNA interference on WT1 protein expression detected by Western blotting.1:non-transfection;2:negative control;3:siRNA transfection.Mean±SD.n=3.*P <0.05 vs 1.圖2 轉(zhuǎn)染siRNA對(duì)WT1蛋白表達(dá)的影響

        2 siRNA沉默對(duì)胞內(nèi)Wnt1水平的影響

        未轉(zhuǎn)染組、陰性對(duì)照組和siRNA轉(zhuǎn)染組的小鼠足細(xì)胞轉(zhuǎn)染36 h后,Wnt1 mRNA表達(dá)水平較未轉(zhuǎn)染組細(xì)胞有顯著增加(P<0.05);轉(zhuǎn)染48 h后,Wnt1蛋白表達(dá)水平較未轉(zhuǎn)染組細(xì)胞有顯著增多(P<0.05),見圖3、4。

        Figure 3.Effect of RNA interference on Wnt1 mRNA expression detected by real-time qRT-PCR.Mean±SD.n=3.*P <0.05 vs non-transfection.圖3 WT1沉默對(duì)足細(xì)胞Wnt1 mRNA水平的影響

        Figure 4.Effect of RNA interference on Wnt1 protein expression detected by Western blotting.1:non-transfection;2:negative control;3:siRNA transfection.Mean±SD.n=3.*P <0.05 vs 1.圖4 WT1沉默對(duì)Wnt1蛋白水平的影響

        3 siRNA沉默WT1基因?qū)Π麅?nèi)β-catenin水平的影響

        未轉(zhuǎn)染組、陰性對(duì)照組和siRNA轉(zhuǎn)染組的小鼠足細(xì)胞轉(zhuǎn)染36 h后,β-catenin mRNA表達(dá)水平無明顯改變;轉(zhuǎn)染48 h后,p-β-catenin蛋白的表達(dá)水平較未轉(zhuǎn)染組細(xì)胞有顯著下降(P<0.05),見圖5~7。

        4 siRNA沉默對(duì)足細(xì)胞活力的影響

        siRNA沉默WT1基因的小鼠足細(xì)胞在轉(zhuǎn)染24 h后,siRNA轉(zhuǎn)染組與未轉(zhuǎn)染組相比,細(xì)胞活力無明顯變化;在轉(zhuǎn)染48 h后,與未轉(zhuǎn)染組細(xì)胞相比,轉(zhuǎn)染組細(xì)胞活力明顯下降(P<0.05),見表2。

        5 WT1沉默對(duì)小鼠足細(xì)胞nephrin mRNA的影響

        siRNA沉默WT1基因的小鼠足細(xì)胞在轉(zhuǎn)染36 h后,nephrin mRNA表達(dá)水平較未轉(zhuǎn)染組細(xì)胞有顯著下降(P <0.05),見圖8。

        6 WT1沉默對(duì)nephrin蛋白水平的影響

        siRNA沉默WT1基因的小鼠足細(xì)胞在轉(zhuǎn)染48 h后,nephrin蛋白表達(dá)水平較未轉(zhuǎn)染組細(xì)胞有顯著下降(P <0.05),見圖9。

        Figure 5.Effect of RNA interference on β-catenin mRNA expression detected by real-time qRT-PCR.Mean±SD.n=3.圖5 WT1沉默對(duì)足細(xì)胞β-catenin mRNA水平的影響

        Figure 6.Effect of RNA interference on β-catenin protein expression detected by Western blotting.1:non-transfection;2:negative control;3:siRNA transfection.Mean±SD.n=3.圖6 WT1沉默對(duì)足細(xì)胞β-catenin蛋白水平的影響

        Figure 7.Effect of RNA interference on p-β-catenin protein expression detected by Western blotting.1:non-transfection;2:negative control;3:siRNA transfection.Mean±SD.n=3.*P <0.05 vs 1.圖7 WT1沉默對(duì)足細(xì)胞p-β-catenin蛋白水平的影響

        表2 MTT法檢測(cè)WT1沉默后足細(xì)胞的活力Table 2.Effects of WT1 siRNA on podocyte vitality detected by MTT assay(mean±SD.n=3)

        Figure 8.Effect of RNA interference on nephrin mRNA expression in mouse podocytes detected by real-time qRTPCR.Mean±SD.n=3.*P <0.05 vs non-transfection.圖8 WT1沉默對(duì)足細(xì)胞nephrin mRNA水平的影響

        Figure 9.Effect of RNA interference on nephrin protein expression detected by Western blotting.1:non-transfection;2:negative control;3:siRNA transfection.Mean±SD.n=3.*P <0.05 vs 1.圖9 WT1沉默對(duì)足細(xì)胞nephrin蛋白水平的影響

        討 論

        足細(xì)胞受損是慢性腎臟病發(fā)生發(fā)展的主要原因,其損傷程度可作為判斷慢性腎臟病預(yù)后的重要指標(biāo)。由于對(duì)其損傷機(jī)制研究的有限性,我們目前對(duì)于足細(xì)胞的靶向治療仍處于探索階段?,F(xiàn)今臨床常用治療方案并不能阻止腎臟疾病的進(jìn)展。因此,闡明足細(xì)胞損傷修復(fù)的分子機(jī)制具有重要的臨床意義和實(shí)用價(jià)值。

        WT1基因是一種具有雙重作用的轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子,除參與腫瘤的發(fā)生外,其在足細(xì)胞發(fā)生發(fā)育及足細(xì)胞功能的維持上發(fā)揮重要作用[7]。研究發(fā)現(xiàn),WT1可通過負(fù)調(diào)控Wnt/β-catenin通路的表達(dá)發(fā)揮其病理生理作用[5]。Wnt/β-catenin通路作為一條比較保守的信號(hào)通路可參與腫瘤的發(fā)生[8]。近年來,其慢性腎臟病發(fā)生發(fā)展中的作用逐漸被人們所認(rèn)識(shí)。有證據(jù)表明,在糖尿病腎病或局灶階段性腎小球硬化的患者足細(xì)胞中可見Wnt1和β-catenin的高表達(dá),異常升高的Wnt1或β-catenin可抑制nephrin的表達(dá)誘導(dǎo)足細(xì)胞損傷[9-10]。本研究結(jié)果顯示,在沉默WT1的表達(dá)后,足細(xì)胞內(nèi)Wnt1分子表達(dá)明顯上調(diào),提示W(wǎng)nt/β-catenin通路可能處于激活狀態(tài)。

        既往人們對(duì)腎母細(xì)胞瘤的研究中發(fā)現(xiàn),WT1基因突變常伴有β-catenin在胞核內(nèi)的大量蓄積[11]。β-catenin作為Wnt/β-catenin通路的關(guān)鍵調(diào)控因子,其表達(dá)水平主要受胞漿內(nèi)破壞復(fù)合體(destruction complex)的調(diào)控。當(dāng)Wnt/β-catenin通路處于激活狀態(tài)時(shí),破壞復(fù)合體解離,β-catenin可在胞漿內(nèi)大量蓄積,啟動(dòng)下游基因的表達(dá)[12]。研究發(fā)現(xiàn),β-catenin在正常足細(xì)胞結(jié)構(gòu)與功能維持中發(fā)揮的作用較小,但其在介導(dǎo)阿霉素誘導(dǎo)小鼠足細(xì)胞損傷過程中至關(guān)重要[13]。在本實(shí)驗(yàn)中,與未轉(zhuǎn)染組細(xì)胞相比,siRNA干擾組細(xì)胞內(nèi) β-catenin水平無明顯變化,而 p-βcatenin水平降低,提示β-catenin的降解減少并在胞漿內(nèi)積聚并進(jìn)入細(xì)胞核調(diào)控下游基因的表達(dá),這一發(fā)現(xiàn)進(jìn)一步說明了足細(xì)胞內(nèi)Wnt/β-catenin信號(hào)通路在siRNA沉默WT1基因表達(dá)后處于激活狀態(tài)。為明確足細(xì)胞損傷程度,我們進(jìn)一步檢測(cè)了足細(xì)胞活力與裂孔隔膜相關(guān)分子nephrin的表達(dá)水平變化,結(jié)果表明,與未轉(zhuǎn)染組細(xì)胞相比,轉(zhuǎn)染組細(xì)胞活力明顯下降;同時(shí),其足細(xì)胞內(nèi)nephrin mRNA和蛋白的表達(dá)水平均明顯下調(diào)。如前文所述,Wnt/β-catenin通路激活后可誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞增殖,但本研究并未發(fā)現(xiàn)足細(xì)胞增殖能力增強(qiáng),可能與分化成熟的足細(xì)胞分裂增生能力有限或足細(xì)胞內(nèi)nephrin分子表達(dá)下調(diào)后其結(jié)構(gòu)或功能受損所致。因此,我們可以推測(cè),轉(zhuǎn)錄因子WT1可通過負(fù)調(diào)控Wnt/β-catenin通路的表達(dá)誘導(dǎo)足細(xì)胞損傷。

        綜上所述,通過siRNA沉默WT1基因的表達(dá)后會(huì)使其對(duì)Wnt/β-catenin通路的抑制作用減弱,誘導(dǎo)處于靜息狀態(tài)的Wnt/β-catenin通路異常激活從而導(dǎo)致足細(xì)胞損傷及裂孔隔膜分子nephrin的表達(dá)下降。這一發(fā)現(xiàn)為慢性腎臟病的早期診斷和治療開辟了新思路,同時(shí)也為新藥研發(fā)或有效信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)分子的干預(yù)研究提供了理論依據(jù)。

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