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        亞低溫對腦出血后內(nèi)源性神經(jīng)干細(xì)胞增殖及遷移的影響

        2013-10-18 06:38:08解燕春關(guān)景霞梁靜靜曾艷平
        卒中與神經(jīng)疾病 2013年3期
        關(guān)鍵詞:研究

        解燕春 關(guān)景霞 周 琴 梁靜靜 曾艷平

        成年哺乳動物腦內(nèi)側(cè)腦室下區(qū)(subventricular zone,SVZ)和海馬齒狀回顆粒下層(subgranular zone,SGZ)存在神經(jīng)干細(xì)胞(neural stem cells,NSCs)[1]。近年來研究證實[2],腦出血能激活內(nèi)源性NSCs增殖,并遷移至血腫周圍,從而促進腦出血后的神經(jīng)修復(fù)。亞低溫能否促進腦出血后內(nèi)源性神經(jīng)再生尚不清楚,本實驗通過動態(tài)觀察腦出血在亞低溫干預(yù)后同側(cè)SVZ及血腫周圍NSCs,探討其對腦出血后內(nèi)源性NSCs的影響。

        1 材料與方法

        1.1 動物模型制作及分組

        健康雄性清潔級SD大鼠48只,體重(200±20)g。SD大鼠用1%戊巴比妥鈉(40 mg/kg)腹腔注射麻醉,固定于立體定位儀上,頭皮正中切開,剪開骨膜,暴露前囟,于顱骨背側(cè)前囟后0.2 mm,中線旁3mm處鉆一直徑為2 mm的孔。用固定于立體定位儀上30號無菌針頭沿針孔垂直進針,進針深度為5.8 mm(此為尾狀核的位置),注射溶有膠原酶0.4IU的生理鹽水2μl。隨機分為對照組和亞低溫組,每組又分為7、14、21、28 d四個亞組,每亞組6只大鼠。對照組肛溫保持在(37±0.5)℃,亞低溫組術(shù)后立即開始誘導(dǎo)亞低溫,且持續(xù)24 h。

        1.2 亞低溫處理

        亞低溫組予以冰袋加全身噴灑稀釋乙醇降溫,用電子溫度計 (歐姆龍大連有限公司)監(jiān)測深部肛溫(插入深度≥5 cm),每30 min測量一次肛溫,溫度控制在(34±1)℃,當(dāng)肛溫低于33℃時,用60 W白熾燈照射大鼠軀干部升溫,24 h后撤去冰塊及白熾燈,使體溫自然恢復(fù)正常。

        1.3 NSCs的標(biāo)記

        腦出血模型制作后腹腔注射細(xì)胞增殖特異性標(biāo)記物BrdU(10 mg/ml溶于生理鹽水,50 mg·kg-1·次-1)標(biāo)記處于增殖狀態(tài)的 NSCs,2次/d,直至在相應(yīng)的時間點處死大鼠。

        1.4 BrdU免疫組織化學(xué)染色

        各組動物在相應(yīng)的時間點經(jīng)心臟進行灌注,斷頭取腦,以注入針道為中心,冠狀切下組織塊,厚約4 mm,剩余部分棄去。組織塊放入4% 多聚甲醛內(nèi),后固定4 h,換入20%蔗糖溶液中過夜至組織塊沉底。標(biāo)本用恒溫冰凍切片機經(jīng)血腫中心作連續(xù)冠狀切片,片厚5μm,將切片置于50%甲酰胺2×SSC溶液中65℃溫水浴2 h,再置于2N HCl溶液中37℃溫水浴30 min進行DNA變性,再用0.1 mol/L硼酸漂洗10 min后以3%H2O2覆蓋30 min以封閉內(nèi)源性過氧化物酶;然后進行親和素-生物素法染色,一抗為小鼠抗大鼠BrdU,二抗為生物素化的馬抗小鼠抗體,DAB顯色后,進行水洗、脫水、透明、封片。

        1.5 圖像及統(tǒng)計學(xué)處理

        采用HPIAS圖像分析系統(tǒng)對同側(cè)SVZ及血腫周圍進行圖像分析,每張切片對應(yīng)部位隨機抽取8個不重復(fù)的高倍視野,進行陽性細(xì)胞計數(shù),數(shù)據(jù)用±s表示。BrdU染色以細(xì)胞核內(nèi)出現(xiàn)棕褐色顆粒為陽性。各組數(shù)據(jù)用SPSS軟件進行組間t比較,顯著性水平α=0.05,當(dāng)P<0.05時差異具有顯著性意義。

        2 結(jié) 果

        免疫組化方法標(biāo)記的BrdU陽性細(xì)胞呈棕黃色,形態(tài)多樣,呈圓形、橢圓形或梭形。正常腦細(xì)胞染成藍(lán)色。結(jié)果顯示腦出血后對照組大鼠同側(cè)SVZ和血腫周圍BrdU陽性細(xì)胞的表達(dá)在7 d時開始增加,14 d達(dá)到高峰,21 d后開始下降,直至28 d仍有表達(dá)。亞低溫組大鼠7 d,14 d,21 d及28 d同側(cè)SVZ和血腫周圍BrdU陽性細(xì)胞較對照組明顯增加,且增加的時間較對照組明顯延長(P<0.01),說明腦出血后亞低溫干預(yù)可以促進SVZ的NSCs增殖,并向血腫周圍遷移(圖1、2)。

        圖1 腦出血后同側(cè)SVZ的BrdU陽性細(xì)胞

        圖2 腦出血后血腫周圍的BrdU陽性細(xì)胞

        3 討 論

        腦出血是一種嚴(yán)重危害人類健康的腦卒中亞型,其死亡率和致殘率高。目前,腦出血的治療,如機械清除血腫、藥物預(yù)防腦水腫及降低顱內(nèi)壓,對腦出血患者功能恢復(fù)的作用非常有限。如何更好地促進腦出血患者神經(jīng)功能的恢復(fù),提高其生活質(zhì)量,是目前迫切需要解決的問題。

        成年哺乳動物腦內(nèi)NSCs存在于SVZ和SGZ。在生理條件下內(nèi)源性NSCs可活化增殖,SVZ增殖的NSCs經(jīng)吻側(cè)遷移流(rostral migratory stream,RMS)遷移到嗅球并分化為GABA能顆粒細(xì)胞和多巴胺能神經(jīng)元,參與嗅神經(jīng)的再生;而SGZ增殖的NSCs則遷移至顆粒細(xì)胞層后分化為顆粒細(xì)胞,參與海馬神經(jīng)元的再生。NSCs的發(fā)現(xiàn)為各種神經(jīng)系統(tǒng)疾病帶來新的希望。在各種病理狀態(tài)下,如缺血性卒中及腦外傷等可促進內(nèi)源性神經(jīng)再生,在一定程度上改善神經(jīng)功能。近年來,研究發(fā)現(xiàn)膠原酶誘導(dǎo)的腦出血可促進內(nèi)源性NSCs的增殖,新生的神經(jīng)元能遷移到血腫周圍,這為腦出血后神經(jīng)修復(fù)提供新的思路。本研究主要探討亞低溫能否促進腦出血后NSCs的增殖及遷移。

        BrdU是一種胸腺嘧啶脫氧核苷類似物,在細(xì)胞有絲分裂的S期,整合入新合成DNA。因此,BrdU陽性細(xì)胞可被看作是處于增殖狀態(tài)的NSCs。本研究結(jié)果顯示腦出血后對照組大鼠同側(cè)SVZ和血腫周圍BrdU陽性細(xì)胞的表達(dá)在7 d時開始增加,14 d達(dá)到高峰,21 d后開始下降,直至28 d仍有表達(dá)。亞低溫組大鼠各時間點SVZ和血腫周圍BrdU陽性細(xì)胞較對照組顯著增加,且增加的時間較對照組明顯延長,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義,說明腦出血后亞低溫干預(yù)可以促進SVZ的NSCs增殖,并向血腫周圍遷移。

        研究發(fā)現(xiàn)成體腦組織中神經(jīng)再生和血管新生緊密相連[3]。新生的血管分泌許多可溶性因子可以促進神經(jīng)干細(xì)胞增殖、分化[4]。而且新生的血管是神經(jīng)干細(xì)胞遷移的“腳手架”[5],指引它遷移到病灶周圍。研究進一步發(fā)現(xiàn)新生血管表達(dá)血管生成素1(Angiopoietin,Ang1),相鄰的 NSCs表達(dá)其受體Tie-2。給予Ang1可促進NSCs向病灶周圍遷移,而拮抗Tie-2則可抑制NSCs向病灶周圍遷移[6]。近年來研究發(fā)現(xiàn)腦出血能上調(diào)Ang1及其受體Tie-2的表達(dá)[7]。Zhou等研究發(fā)現(xiàn)凝血酶原能激活腦出血后大鼠血管新生[8]。Lei等研究發(fā)現(xiàn)高遷移率族蛋白1可通過促進腦出血后血管新生,從而促進其神經(jīng)再生及神經(jīng)功能恢復(fù)[9]。我們前期的研究發(fā)現(xiàn)亞低溫能促進腦梗死后血管新生[10]。因此,本研究推測亞低溫可能通過促進腦出血后血管新生從而促進內(nèi)源性NSCs的增殖、遷移,但其具體機制有待進一步研究。

        1 Gage FH.Mammalian neural stem cells.Science,2000,287(5457):1433-1438.

        2 Otero L,Zurita M,Bonilla C,et al.Endogenous neurogenesis after intracerebral hemorrhage.Histol Histopathol,2012,27(3):303-315.

        3 Alvarez-Buylla A,Lim DA.For the long run:maintaining germinal niches in the adult brain.Neuron,2004,41(5):683-686.

        4 Shang J,Deguchi K,Ohta Y,et al.Strong neurogenesis,angiogenesis,synaptogenesis, and antifibrosis of hepatocyte growth factor in rats brain after transient middle cerebral artery occlusion.J Neurosci Res,2011,89(1):86-95.

        5 del Zoppo GJ.The neurovascular unit,matrix proteases,and innate inflammation.Ann N Y Acad Sci,2010,1207:46-49.

        6 Ohab JJ,F(xiàn)leming S,Blesch A,et al.A neurovascular niche for neurogenesis after stroke.J Neurosci,2006,26(50):13007-13016.

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        8 Zhou HJ,Tang T,Cui HJ,et al.Thrombin-triggered angiogenesis in rat brains following experimental intracerebral hemorrhage.J Neurosurg,2012,117(5):920-928.

        9 Lei C,Lin S,Zhang C,et al.Effects of high-mobility group box1 on cerebral angiogenesis and neurogenesis after intracerebral hemorrhage.Neuroscience,2013,229:12-19.

        10 Xie YC,Li CY,Li T,et al.Effect of mild hypothermia on angiogenesis in rats with focal cerebral ischemia.Neurosci Lett,2007,422(2):87-90.

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